Pkia-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Pkia-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-03680

品系全称

C57BL/6JCya-Pkiaem1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-18767-Pkia-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Pkia-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-03680) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
protein kinase inhibitor, alpha
基因别称
PKIalpha
染色体号
Chr 3 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_008862 | Ensembl: ENSMUST00000028999
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 2~3
敲除长度
~4.7 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:104747Homozygotes for a targeted null mutation exhibit decreased basal and isoproterenol-induced phosphoenolpyruvate carboxykinase expression in muscle, but are phenotypically normal.
PKIA,也称为cAMP依赖性蛋白激酶抑制剂α,是一种重要的蛋白质,在多种生物学过程中发挥关键作用。它是一种负调节因子,能够抑制cAMP依赖性蛋白激酶(PKA)的活性,从而调节细胞内的信号传导途径。PKIA通过与PKA的调节亚基结合,阻止其催化亚基的激活,从而抑制PKA的磷酸化活性。

PKIA在心脏疾病中具有重要作用。研究发现,在心肌肥厚(MH)的过程中,PKIA的表达水平会发生变化。Dronedarone是一种药物,已被报道能够减轻小鼠左心室肥厚。然而,Dronedarone在MH中的分子调控机制尚不清楚。一项研究表明,Angiotensin II(Ang II)处理能够诱导H9C2细胞的细胞肥大,并抑制SIRT1的表达。而Dronedarone能够逆转这些效应。此外,SIRT1的过表达或PKIA的过表达都能够增强Dronedarone介导的细胞肥大抑制。进一步的研究发现,SIRT1通过SIRT1介导的去乙酰化作用升高FOXO3的表达,而FOXO3通过与其启动子相互作用上调PKIA的表达。此外,SIRT1沉默会削弱Dronedarone介导的细胞肥大抑制,而PKIA的上调则消除了SIRT1沉默的影响。更为重要的是,Dronedarone通过影响SIRT1/FOXO3/PKIA轴来改善TAC手术诱导的大鼠MH和心脏功能障碍。这些研究结果表明,Dronedarone通过调节SIRT1/FOXO3/PKIA轴来减轻MH,为Dronedarone在MH治疗中的应用提供了更多证据[1]。

除了心脏疾病,PKIA在肺癌中也具有潜在的应用价值。一项研究发现,PKIA的DNA甲基化状态可以作为肺癌的潜在预后生物标志物和治疗方案。该研究通过分析肺癌患者的转录组数据和临床数据,发现了与肺癌预后相关的差异甲基化驱动基因。其中,PKIA的甲基化状态与肺癌患者的预后相关,高甲基化组患者的预后较差,而低甲基化组患者的预后较好。这表明PKIA的甲基化状态可以作为肺癌的预后指标和治疗靶点[2]。

PKIA在其他真菌中也存在。一项研究发现,在黑曲霉中,PKIA基因编码的蛋白与黑曲霉中丙酮酸激酶的蛋白具有高度同源性。该研究通过杂交方法克隆了黑曲霉的PKIA基因,并对其进行了序列分析和功能研究。结果表明,PKIA基因的转录水平与丙酮酸激酶的活性相关,并且PKIA基因的过表达可以增加丙酮酸激酶的活性[3]。

在Hepatitis B病毒(HBV)感染相关的肝细胞癌(HCC)中,PKIA也具有重要作用。一项研究发现,在HBV感染相关的HCC组织中,PKIA的表达与TPX2微管成核因子的表达相关。该研究通过分析HBV相关的TCGA-HCC队列中TPX2高表达和低表达组的差异表达lncRNA、miRNA和mRNA,发现了与HCC预后相关的TRHDE-AS1/miR-23b/PKIA ceRNA网络。此外,细胞定位分析和碱基-碱基相互作用分析表明,细胞质lncRNA TRHDE-AS1可以作为ceRNA来结合miR-23b,从而调节PKIA的表达。这些研究结果表明,PKIA在HBV感染相关的HCC中发挥重要作用,并与HCC的预后相关[4]。

此外,PKIA还在其他生物学过程中发挥作用。例如,在黑曲霉中,通过消除柠檬酸的积累和增强糖酵解通量,可以提高苹果酸的产生。一项研究发现,通过基因工程方法消除cexA基因的表达可以消除柠檬酸的积累,但会导致苹果酸产量的显著降低。进一步研究发现,cexA基因缺失菌株的葡萄糖转运和糖酵解途径相关基因的转录水平显著降低,相应的酶活性也低于对照菌株。通过过表达葡萄糖转运蛋白MstC和关键酶(己糖激酶HxkA、6-磷酸果糖-2-激酶PfkA和丙酮酸激酶PkiA),可以增加苹果酸的产生。这些研究结果为黑曲霉中苹果酸的产生提供了新的策略[5]。

在结直肠癌中,PKIA的表观遗传修饰也与疾病的发生和发展相关。一项研究发现,血清25-羟基维生素D(25(OH)D)水平与结直肠癌肿瘤的DNA甲基化状态相关。该研究通过全基因组DNA甲基化分析,发现了与25(OH)D水平相关的差异甲基化位点。其中,PKIA基因位点是维生素D相关的差异甲基化区域中最显著的位点之一。此外,还发现了与细胞粘附和细胞外基质、信号转导相关的通路。这些研究结果为结直肠癌的表观遗传调控提供了新的线索[6]。

在Trichoderma reesei中,PKIA基因的编码蛋白与黑曲霉和酿酒酵母中PKI的蛋白具有高度同源性。一项研究发现,通过杂交方法克隆了Trichoderma reesei的PKIA基因,并对其进行了序列分析和功能研究。结果表明,PKIA基因的编码序列包含一个与黑曲霉基因中内含子E位置相同的单内含子。此外,PKIA蛋白与黑曲霉和酿酒酵母中PKI的蛋白具有广泛同源性。这些研究结果为Trichoderma reesei中PKIA基因的功能研究提供了基础[7]。

在U87胶质瘤细胞中,葡萄糖剥夺会影响PKIA的表达。一项研究发现,葡萄糖剥夺会下调U87胶质瘤细胞中PKIA的表达,但上调PJA2的表达。此外,ERN1敲低会显著改变葡萄糖剥夺对PKIA和相关基因表达的影响。这些研究结果表明,葡萄糖剥夺会影响PKIA的表达,并且ERN1在葡萄糖剥夺对PKIA和相关基因表达的影响中发挥重要作用[8]。

在骨组织工程中,PKIA也具有重要作用。一项研究发现,具有沟槽的多孔羟基磷灰石(HAG)支架可以促进成骨分化和细胞迁移。该研究通过分析HAG支架介导的成骨分化过程中miRNA的表达,发现miR-129-5p的表达显著上调。进一步研究发现,miR-129-5p的过表达可以促进成骨分化和细胞迁移,而抑制miR-129-5p的表达会减弱HAG支架的促进效果。此外,miR-129-5p可以激活PKA,通过抑制PKIA来调节β-catenin和cAMP反应元件结合蛋白(CREB)的磷酸化,从而促进成骨标志物的表达。这些研究结果揭示了HAG支架通过调节PKA活性来促进成骨分化的机制[9]。

综上所述,PKIA在多种生物学过程中发挥重要作用。在心脏疾病中,PKIA通过调节SIRT1/FOXO3/PKIA轴来减轻心肌肥厚。在肺癌中,PKIA的DNA甲基化状态可以作为肺癌的预后指标和治疗靶点。在黑曲霉中,PKIA基因编码的蛋白与丙酮酸激酶的蛋白具有高度同源性。在HBV感染相关的HCC中,PKIA与HCC的预后相关。此外,PKIA还在其他真菌中存在,并在骨组织工程中发挥重要作用。PKIA的研究有助于深入理解其在不同生物学过程中的功能和作用机制,为相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Chen, Cheng, Hu, Song, Hu, Heng-Jing, Zou, Tao, Su, Hua. . Dronedarone Attenuates Ang II-Induced Myocardial Hypertrophy Through Regulating SIRT1/FOXO3/PKIA Axis. In Korean circulation journal, 54, 172-186. doi:10.4070/kcj.2023.0197. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38654563/
2. Xu, Bowen, Zhang, Jingang, Chen, Weigang, Cai, Wei. 2023. Exploring the methylation status of CFTR and PKIA genes as potential biomarkers for lung adenocarcinoma. In Orphanet journal of rare diseases, 18, 246. doi:10.1186/s13023-023-02807-1. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37644544/
3. de Graaff, L, van den Broeck, H, Visser, J. . Isolation and characterization of the Aspergillus niger pyruvate kinase gene. In Current genetics, 22, 21-7. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/1611667/
4. Li, Gaopeng, Wang, Zhuangqiang, Chen, Dong, Wang, Zhiming, Ma, Jun. 2022. Comprehensive analysis of a TPX2-related TRHDE-AS1/PKIA ceRNA network involving prognostic signatures in Hepatitis B virus-infected hepatocellular carcinoma. In Frontiers in cellular and infection microbiology, 12, 1025900. doi:10.3389/fcimb.2022.1025900. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36204642/
5. Xu, Yongxue, Zhou, Yutao, Cao, Wei, Liu, Hao. 2020. Improved Production of Malic Acid in Aspergillus niger by Abolishing Citric Acid Accumulation and Enhancing Glycolytic Flux. In ACS synthetic biology, 9, 1418-1425. doi:10.1021/acssynbio.0c00096. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32379964/
6. Boughanem, Hatim, Izquierdo, Andrea G, Hernández-Alonso, Pablo, Crujeiras, Ana B, Macias-Gonzalez, Manuel. 2021. An Epigenetic Signature is Associated with Serum 25-Hydroxyvitamin D in Colorectal Cancer Tumors. In Molecular nutrition & food research, 65, e2100125. doi:10.1002/mnfr.202100125. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34289228/
7. Schindler, M, Mach, R L, Vollenhofer, S K, De Graaff, L, Kubicek, C P. . Characterization of the pyruvate kinase-encoding gene (pki1) of Trichoderma reesei. In Gene, 130, 271-5. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8359694/
8. Ratushna, Oksana O. 2020. Glucose deprivation affects the expression of genes encoding cAMP-activated protein kinase and related proteins in U87 glioma cells in ERN1 dependent manner. In Endocrine regulations, 54, 244-254. doi:10.2478/enr-2020-0027. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33885249/
9. Deng, Li, Li, Xinlun, Ren, Xiaohua, Huang, Hao, Mu, Yandong. 2022. A grooved porous hydroxyapatite scaffold induces osteogenic differentiation via regulation of PKA activity by upregulating miR-129-5p expression. In Journal of periodontal research, 57, 1238-1255. doi:10.1111/jre.13060. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36222334/