Grap2-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Grap2-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-03230

品系全称

C57BL/6JCya-Grap2em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-17444-Grap2-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Grap2-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-03230) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
GRB2-related adaptor protein 2
基因别称
GRAP-2,GRB2L,GRBLG,GRID,Gads,GrbX,Grf40,GrpL,Mona,P38
染色体号
Chr 15 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_010815.3 | Ensembl: ENSMUST00000043149
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 2~3
敲除长度
~5.5 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1333842Mice homozygous for disruptions in this gene are grossly healthy but display abnormal T cell development.
基因GRAP2,也称为GRB2相关适配蛋白2或GADS(生长因子受体结合蛋白2相关蛋白),是一种在免疫系统中发挥重要作用的适配蛋白。GRAP2主要在淋巴组织中表达,尤其在T淋巴细胞中表达丰富。该蛋白包含一个独特的120氨基酸谷氨酰胺和脯氨酸丰富的结构域,位于SH2和C端SH3结构域之间。GRAP2在信号传导中发挥重要作用,通过与多种蛋白质相互作用,将细胞表面受体信号传递到细胞内,从而调节免疫细胞的活化和功能。

GRAP2的表达和功能与多种疾病的发生发展密切相关。研究表明,GRAP2在肺癌、乳腺癌、淋巴瘤等恶性肿瘤中发挥重要作用。例如,在肺腺癌中,GRAP2的表达水平与患者的预后相关。GRAP2低表达与较差的总生存期、病理分期、T分期、N分期和一线治疗结果相关。此外,GRAP2的表达水平与多种免疫细胞浸润水平呈正相关,提示GRAP2可能参与调节免疫微环境。GRAP2的表达水平还与多种免疫标记物、趋化因子、趋化因子受体和MHC分子呈正相关,进一步支持其在免疫调节中的作用[1]。

GRAP2的表达受到多种转录因子的调控。研究表明,Ets家族成员Spi-1和Spi-B在B细胞中控制GRAP2基因的表达。Spi-1和Spi-B的缺陷会导致B细胞增殖减少和T细胞依赖性免疫反应受损。GRAP2的表达受损在Spi-1+/- SpiB+/-和Spi-1+/- SpiB-/- B淋巴细胞中被观察到。进一步的研究发现,Spi-1和Spi-B DNA结合元件位于GRAP2基因的下游启动子中。这些数据表明,Spi-1和Spi-B直接调节GRAP2的表达,而GRAP2的功能是调节B细胞受体信号传导[2]。

除了在恶性肿瘤中的表达,GRAP2还与自身免疫性疾病相关。研究表明,GRAP2的下游蛋白GCIP(GRAP2 cyclin D interacting protein)在类风湿性关节炎中发挥重要作用。GCIP是一种ID样螺旋-环-螺旋蛋白,可以与cAMP反应元件结合蛋白(CBP)相互作用。GCIP通过抑制CBP与RNA聚合酶II复合物的结合,抑制CREB和NF-κB依赖性基因表达。GCIP的敲低可以增强成纤维细胞样滑膜细胞(FLS)的生长,而GCIP的稳定表达可以抑制293细胞的生长。此外,GCIP的敲低在FLS中诱导了细胞周期蛋白D1的表达,这是CREB的靶基因。这些结果表明,GCIP下调可能在FLS过度生长中发挥重要作用[3]。

GRAP2还与T细胞受体(TCR)信号通路相关。研究表明,在结外自然杀伤(NK)/T细胞淋巴瘤(ENKTL)中,GRAP2/GADS的表达水平在不同细胞谱系和免疫表型中存在差异。在T细胞谱系肿瘤中,GRAP2/GADS的表达率较高。此外,GRAP2/GADS阳性的NK细胞谱系肿瘤更频繁地表达DOK2,并且更常局限于鼻腔区域。这些结果表明,TCR信号通路可能在ENKTL中发挥作用,并且T细胞谱系和NK细胞谱系肿瘤可能具有不同的生理学特征[4]。

除了在恶性肿瘤和自身免疫性疾病中的表达,GRAP2还与T淋巴细胞的JNK信号通路相关。研究表明,GRAP2与造血祖细胞激酶1(HPK1)相互作用,激活T淋巴细胞中的JNK信号通路。GRAP2与HPK1的相互作用通过GRAP2的羧基末端SH3结构域与HPK1的第二个脯氨酸丰富基序介导。GRAP2和HPK1的共同表达不仅增加了细胞中HPK1的激酶活性,而且还对HPK1介导的JNK激活具有叠加效应。此外,GRAP2和HPK1的过表达诱导了JNK信号通路中c-Jun的显著转录激活和IL-2基因报告活性。这些数据表明,GRAP2和HPK1形成了一个信号复合物,介导T细胞中的JNK信号通路[5]。

GRAP2的表达还与乳腺导管原位癌(DCIS)的预后相关。研究表明,GRAP2的表达水平与DCIS病变的进展相关。在低级别和中级别的DCIS病变中,GRAP2的表达水平可以区分进展性和非进展性病变。此外,GRAP2的表达水平与乳腺癌的分子亚型和病理分级相关。这些结果表明,GRAP2可以作为乳腺导管原位癌的预后标志物[6]。

除了在肿瘤和自身免疫性疾病中的表达,GRAP2还与乳腺癌的cfDNA甲基化模式相关。研究表明,GRAP2基因在乳腺癌组织和血浆cfDNA中存在显著的甲基化差异。GRAP2基因的甲基化水平与乳腺癌的诊断效率相关。这些结果表明,GRAP2基因的甲基化可能作为血液中的分子标志物,用于乳腺癌的补充诊断[7]。

除了与转录因子和信号通路的相互作用,GRAP2还与其他蛋白质相互作用,调节基因表达和细胞功能。研究表明,GCIP和SIRT6可以协同抑制ITGAV基因的表达,通过调节c-Myc的转录活性。GCIP与c-Myc和SIRT6相互作用,在ITGAV启动子区域的E-box结合位点上发挥作用,从而抑制ITGAV的转录。这些发现揭示了GCIP在肿瘤发生中的作用,并确定了GCIP的一个新功能:它可以与c-Myc和SIRT6在ITGAV启动子区域的E-box结合位点上相互作用。这些数据共同揭示了一个涉及GCIP、SIRT6、c-Myc和ITGAV的调节网络,并表明SIRT6-GCIP复合物负调节c-Myc的致癌功能,影响细胞增殖和迁移[8]。

除了与蛋白质的相互作用,GRAP2还与miRNA相互作用,调节基因表达。研究表明,miR-27a-3p可以调节GRAP2的表达。甘草可以影响细胞的基因表达,而miR-27a-3p可能参与了甘草介导的CD28表达调节。这些结果表明,miR-27a-3p可能参与了甘草介导的CD28表达的调节[9]。

综上所述,基因GRAP2是一种在免疫系统中发挥重要作用的适配蛋白。GRAP2的表达和功能与多种疾病的发生发展密切相关,包括恶性肿瘤、自身免疫性疾病和炎症性疾病。GRAP2的表达受到多种转录因子的调控,并参与调节免疫细胞的活化和功能。GRAP2还与T细胞受体信号通路、JNK信号通路和miRNA相互作用,影响基因表达和细胞功能。GRAP2的研究有助于深入理解免疫系统中的信号传导和疾病发生机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Song, Shimao, Deng, Xinzhou, Jiang, Shan, Yan, Yutao, Luo, Zhiguo. 2022. GRAP2 is a prognostic biomarker and correlated with immune infiltration in lung adenocarcinoma. In Journal of clinical laboratory analysis, 36, e24662. doi:10.1002/jcla.24662. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36181310/
2. Garrett-Sinha, Lee Ann, Hou, Ping, Wang, Duncheng, Simon, M Celeste, Clark, Marcus R. . Spi-1 and Spi-B control the expression of the Grap2 gene in B cells. In Gene, 353, 134-46. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15936902/
3. Fujita, Hidetoshi, Aratani, Satoko, Nakajima, Toshihiro. 2021. Grap2 cyclin D interacting protein negatively regulates CREB‑binding protein, inhibiting fibroblast‑like synoviocyte growth. In Molecular medicine reports, 23, . doi:10.3892/mmr.2021.11916. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33576455/
4. Miyata-Takata, Tomoko, Chuang, Shih-Sung, Takata, Katsuyoshi, Sato, Yasuharu, Yoshino, Tadashi. 2018. Expression of T-cell receptor signalling pathway components in extranodal NK/T-cell lymphoma. In Histopathology, 73, 1030-1038. doi:10.1111/his.13728. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30102799/
5. Ma, W, Xia, C, Ling, P, Tan, T H, Liu, M. . Leukocyte-specific adaptor protein Grap2 interacts with hematopoietic progenitor kinase 1 (HPK1) to activate JNK signaling pathway in T lymphocytes. In Oncogene, 20, 1703-14. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11313918/
6. Geradts, Joseph, Groth, Jeffrey, Wu, Yuan, Jin, Genglin. 2016. Validation of an oligo-gene signature for the prognostic stratification of ductal carcinoma in situ (DCIS). In Breast cancer research and treatment, 157, 447-59. doi:10.1007/s10549-016-3838-4. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27250000/
7. Hu, Qin, Mao, Yu, Lan, Haomiao, Ye, Qiang, Che, Hongying. . Value of altered methylation patterns of genes RANBP3, LCP2 and GRAP2 in cfDNA in breast cancer diagnosis. In Journal of medical biochemistry, 43, 387-396. doi:10.5937/jomb0-47507. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39139156/
8. Huang, Yi-Ching, Yuan, Tien-Ming, Liu, Bang-Hung, Liu, Kai-Li, Chuang, Show-Mei. 2025. GCIP and SIRT6 Cooperatively Suppress ITGAV Gene Expression by Modulating c-Myc Transcription Ability. In The Journal of biological chemistry, , 108314. doi:10.1016/j.jbc.2025.108314. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39955062/
9. Feng, Gang, Liang, Guozheng, Zhang, Yaqian, Liu, Yan, Shao, Hongwei. 2022. Involvement of MicroRNA-27a-3p in the Licorice-Induced Alteration of Cd28 Expression in Mice. In Genes, 13, . doi:10.3390/genes13071143. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35885926/