Klc2-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Klc2-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-02799

品系全称

C57BL/6NCya-Klc2em1/Cya

品系背景

C57BL/6NCya

品系编号

KOCMP-16594-Klc2-B6N-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Klc2-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-02799) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
kinesin light chain 2
基因别称
8030455F02Rik,KLC 2,KLC-2
染色体号
Chr 19 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_008451 | Ensembl: ENSMUST00000116563
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 3~11
敲除长度
~4.0 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:107953Mice homozygous for a null allele display outer hair cell loss and hearing loss with age.
KLC2,即kinesin light chain-2,是细胞内重要的微管依赖性分子马达蛋白kinesin-1的轻链之一。KLC2与kinesin-1重链(KHC)结合,共同形成kinesin-1复合体,参与细胞内物质沿微管网络的运输。这种运输对于细胞内多种生命活动至关重要,包括细胞分裂、细胞器定位、信号转导和细胞骨架的维持。

KLC2的表达和功能受到多种因素的调控。例如,在人类肝细胞癌中,长链非编码RNA LINC00152通过海绵作用吸附miRNA,从而影响其靶基因的表达,包括KLC2。LINC00152与KLC2的共表达在人类肝细胞癌队列中被观察到,并且KLC2的高表达与患者生存期缩短相关。此外,KLC2在体外实验中被证实可以促进细胞增殖、集落形成和迁移。这些发现表明,LINC00152-miR-143a-3p-KLC2轴可能代表人类肝细胞癌的一个治疗靶点[1]。

在另一种重要的蚊媒疾病传播者——埃及伊蚊中,KLC2基因的启动子被证明可以驱动基因表达在同步核分裂胚和早期细胞胚阶段,这是一个发育阶段,使得遗传操作可以针对发育中的生殖细胞和胚胎的其余部分进行。此外,在转基因雄性睾丸中也观察到了意外表达的报告基因。这一发现为未来的遗传研究和在埃及伊蚊中的应用提供了新的启动子元件[2]。

在非小细胞肺癌中,KLC2的表达被发现与患者的预后相关。KLC2可以抑制p53蛋白的磷酸化,从而促进放射抗性。KLC2的mRNA被观察到与HuR结合,而HuR是一种mRNA稳定蛋白。KLC2的mRNA和蛋白表达在肺癌细胞中显著降低,当与siRNA-HuR结合使用时。有趣的是,KLC2过表达显著增加了HuR的表达。这些结果表明,HuR-KLC2形成一个正反馈回路,通过降低p53的磷酸化来减弱肺癌细胞的放射敏感性[3]。

SPOAN综合征是一种神经退行性疾病,主要特征为痉挛性截瘫、视神经萎缩和神经病。患者通常在15岁后需要轮椅,并伴有进行性关节挛缩和脊柱变形。SPOAN综合征患者的视神经萎缩导致视力下降。通过对SPOAN患者的样本进行下一代测序,发现KLC2基因上游非编码区域的同源216 bp缺失与KLC2的过表达有关。在斑马鱼中的敲低和过表达实验表明,KLC2的过表达导致轻度到严重的卷尾表型,提示可能存在神经肌肉疾病。这种由非编码区域小缺失引起的基因过表达是一种新的机制,在隐性条件下尚未见报道[4]。

碘化物转运缺陷(ITD)是一种罕见的导致甲状腺功能减退的先天性异常,由于SLC5A5基因的失功能突变导致甲状腺滤泡细胞中碘化物积累不足。一项研究发现,SLC5A5基因中的一个新型同源错义突变p.G561E导致NIS蛋白向质膜靶向减少,从而降低碘化物的摄取。生化分析表明,G561E突变损害了NIS成熟过程中对KLC2的识别,导致碘化物积累减少。结构生物信息学分析表明,G561E改变了无序的色氨酸-酸性基序的平衡,使其结构更稳定,无法被KLC2识别。在斑马鱼幼虫中敲低klc2导致甲状腺激素合成缺陷,导致甲状腺功能减退状态[5]。

LMTK2是一种被鉴定为前列腺癌易感基因的蛋白质。研究发现,LMTK2通过GSK3β磷酸化KLC2,从而释放KLC2上的货物。LMTK2通过蛋白磷酸酶-1C(PP1C)信号通路增加GSK3β在丝氨酸-9上的抑制性磷酸化,从而减少KLC2的磷酸化并促进Smad2的结合。Smad2在TGFβ受体刺激下信号转导到细胞核,并且KLC2对Smad2的运输是必需的。LMTK2的siRNA降低了Smad2与KLC2的结合,并抑制了TGFβ诱导的Smad2信号转导[6]。

在非小细胞肺癌中,KLC2蛋白的表达在细胞系和组织中上调,并且是老年非小细胞肺癌患者预后不良的独立预测因子。KLC2蛋白过表达显著增强了非小细胞肺癌细胞的侵袭和迁移能力。miR-125b抑制了KLC2 3'-非翻译区的荧光素酶活性和蛋白表达,并且与临床样本中KLC2的表达呈负相关。KLC2蛋白过表达几乎完全逆转了miR-125b对迁移和侵袭的抑制作用。KLC2蛋白过表达预示着老年非小细胞肺癌患者的预后不良[7]。

KLC2在睾丸中表达,但仅限于圆形和伸长的精子细胞,并在精子尾部存在。与KLC1和KLC2不同,KLC3在精子细胞中表达,而KLC1和KLC2在减数分裂前在睾丸中可以检测到。KLC3的克隆揭示了其在精子细胞中的独特和专门作用[8]。

在败血症相关脑病中,A-to-I RNA编辑在人类大脑中发生改变。研究发现,在败血症患者的大脑中,A-to-I RNA编辑的基因和编辑位点的数量少于对照组。在所有A-to-I RNA编辑位点中,42个基因的RNA编辑水平显著不同,其中23个在败血症中下调,19个上调。值得注意的是,超过50%的这些基因在脑中高度表达,并且可能与神经疾病有关。cis-调控分析显示,6个差异编辑基因的RNA编辑水平与基因表达显著相关,包括KLC2。此外,富集分析表明,与对照相比,败血症中编辑基因的基因功能和KEGG通路富集较少[9]。

疱疹单纯性病毒(HSV)和其他α疱疹病毒必须从感觉神经节中的病毒潜伏位点传播到周围组织,在那里病毒可以复制到更高的滴度,然后传播给其他宿主。这些病毒在神经轴突中通过沿着微管移动的kinesin马达传播。HSV颗粒在轴突中的前向运输有两种形式:(i)未包膜的衣壳,在到达轴突末端后变为包膜,(ii)在轴突内的膜囊泡中运输的包膜病毒。了解哪种kinesin促进轴突运输对于理解这种轴突运输至关重要。本研究发现,kinesin-1蛋白KIF5A、KIF5B和KIF5C以及它们的轻链KLC1和KLC2在轴突中促进HSV包膜病毒的前向运输,而kinesin-3蛋白的作用较小。此外,沉默kinesin-1蛋白KIF5A、KIF5B和KIF5C或轻链KLC1和KLC2抑制了HSV前向运输的大部分,而沉默KIF1A对HSV在轴突中的运输影响较小[10]。

综上所述,KLC2是一种重要的微管依赖性分子马达蛋白,参与细胞内物质运输和多种生物学过程。KLC2的表达和功能受到多种因素的调控,并在多种疾病中发挥重要作用。KLC2的研究有助于深入理解细胞内物质运输的生物学功能和疾病发生机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Pellegrino, Rossella, Castoldi, Mirco, Ticconi, Fabio, Costa, Ivan G, Longerich, Thomas. 2022. LINC00152 Drives a Competing Endogenous RNA Network in Human Hepatocellular Carcinoma. In Cells, 11, . doi:10.3390/cells11091528. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35563834/
2. Hu, Wanqi, Tu, Zhijian Jake. 2018. Functional analysis of the promoter of an early zygotic gene KLC2 in Aedes aegypti. In Parasites & vectors, 11, 655. doi:10.1186/s13071-018-3210-0. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30583735/
3. Qiao, Simiao, Jiang, Yuhang, Li, Na, Zhu, Xiaoxia. 2023. The kinesin light chain-2, a target of mRNA stabilizing protein HuR, inhibits p53 protein phosphorylation to promote radioresistance in NSCLC. In Thoracic cancer, 14, 1440-1450. doi:10.1111/1759-7714.14886. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37055376/
4. Melo, Uirá S, Macedo-Souza, Lucia I, Figueiredo, Thalita, Zatz, Mayana, Santos, Silvana. 2015. Overexpression of KLC2 due to a homozygous deletion in the non-coding region causes SPOAN syndrome. In Human molecular genetics, 24, 6877-85. doi:10.1093/hmg/ddv388. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26385635/
5. Martín, Mariano, Modenutti, Carlos Pablo, Gil Rosas, Mauco Lucas, Martí, Marcelo Adrián, Nicola, Juan Pablo. . A Novel SLC5A5 Variant Reveals the Crucial Role of Kinesin Light Chain 2 in Thyroid Hormonogenesis. In The Journal of clinical endocrinology and metabolism, 106, 1867-1881. doi:10.1210/clinem/dgab283. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33912899/
6. Manser, C, Guillot, F, Vagnoni, A, De Vos, K J, Miller, C C J. 2011. Lemur tyrosine kinase-2 signalling regulates kinesin-1 light chain-2 phosphorylation and binding of Smad2 cargo. In Oncogene, 31, 2773-82. doi:10.1038/onc.2011.437. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21996745/
7. Wang, M, Zhu, X, Sha, Z, Li, D, Chen, L. 2015. High expression of kinesin light chain-2, a novel target of miR-125b, is associated with poor clinical outcome of elderly non-small-cell lung cancer patients. In British journal of cancer, 112, 874-82. doi:10.1038/bjc.2015.3. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25668010/
8. Junco, A, Bhullar, B, Tarnasky, H A, van der Hoorn, F A. . Kinesin light-chain KLC3 expression in testis is restricted to spermatids. In Biology of reproduction, 64, 1320-30. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11319135/
9. Zhang, Jing-Qian, Pan, Jia-Qi, Wei, Zhi-Yuan, Lin, Kaisheng, Chen, Jian-Huan. 2022. Brain Epitranscriptomic Analysis Revealed Altered A-to-I RNA Editing in Septic Patients. In Frontiers in genetics, 13, 887001. doi:10.3389/fgene.2022.887001. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35559016/
10. DuRaine, Grayson, Wisner, Todd W, Howard, Paul, Johnson, David C. 2018. Kinesin-1 Proteins KIF5A, -5B, and -5C Promote Anterograde Transport of Herpes Simplex Virus Enveloped Virions in Axons. In Journal of virology, 92, . doi:10.1128/JVI.01269-18. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30068641/