Kif4-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Kif4-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-02788

品系全称

C57BL/6JCya-Kif4em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-16571-Kif4-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Kif4-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-02788) were purchased from Cyagen.
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基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
kinesin family member 4
基因别称
D330050K22Rik,Kns4
染色体号
Chr X (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_008446.2 | Ensembl: ENSMUST00000048962
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 3
敲除长度
~1.3 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:108389Male chimeras hemizygous for a gene trapped allele appear normal at E9.5.
KIF4基因编码的蛋白KIF4是Kinesin-4家族的成员,是一种微管依赖性分子马达。KIF4蛋白具有高度保守的结构,包括N端运动区、螺旋-卷曲区和C端装载区。KIF4在DNA修复和DNA复制中发挥重要作用,有助于维持遗传稳定性。此外,KIF4还参与有丝分裂和减数分裂的调控,与致密素I和TopoIIα协同作用,帮助染色体凝缩,并与许多细胞周期蛋白结合,调节纺锤体组织和细胞分裂。KIF4还在生殖细胞中发挥重要作用,如促进生殖细胞质聚集和辐射顺序。在神经细胞中,KIF4通过将底物P0和L1运输到适当的位置,促进适当的轴突生长。KIF4在多种癌症中异常表达,通常上调,但在某些癌症中也可能下调,这表明不同癌症具有不同的调控机制。KIF4在癌症中的作用包括促进耐药性或抑制细胞凋亡。抑制或增强KIF4的表达可以显著降低癌细胞增殖,因此KIF4具有作为癌症治疗靶点的潜力。此外,KIF4的失调与病毒感染和神经系统疾病(如阿尔茨海默病)相关。研究KIF4蛋白有助于开发更好的治疗方法[1]。

KIF4在哺乳动物卵母细胞减数分裂中发挥重要作用。KIF4在整个减数分裂I和II过程中定位于细胞质中,但也被观察到具有动态的亚细胞分布,与微管和着丝粒在不同的发育阶段相关联。共定位和邻近连接分析表明,着丝粒蛋白CENP-C和Ndc80是潜在的KIF4相互作用蛋白。通过反义敲低卵母细胞中的KIF4蛋白的功能分析表明,该蛋白对减数分裂I的完成不是必需的。然而,KIF4耗尽的卵母细胞表现出扩大的极体和异常的减数分裂II中期纺锤体,表明KIF4对于减数分裂I中正确的非对称细胞分裂至关重要。对减数分裂KIF4的磷酸化调节的进一步研究揭示了Aurora激酶和Cdk活性对于KIF4着丝粒定位和与Ndc80和CENP-C相互作用的重要性。最后,发现KIF4蛋白而非基因表达随着年龄的增长而上调,这表明该蛋白在卵母细胞质量随年龄下降中发挥作用[2]。

KIF4在单核细胞/巨噬细胞中的作用尚不清楚。为了增加对KIF4在单核细胞/巨噬细胞中的作用的理解,研究人员进行了全基因组表达微阵列分析,分析在用或不用KIF4 siRNA处理细胞后基因表达的变化。数据发现多个差异表达基因,这些基因富集在前5个生物学过程中,包括天然免疫反应、免疫反应、对干扰素-β的反应、免疫系统和细胞对干扰素-β的反应。已经确定了23个最显著的通路,富集的通路表明在过氧化物酶体、溶酶体、脂肪酸代谢、细胞粘附分子等方面富集。这项工作有助于了解KIF4在单核细胞/巨噬细胞中的作用,并为单核细胞/巨噬细胞的基础研究和功能提供有用的信息[3]。

KIF4除了在有丝分裂中发挥作用外,还在细胞间期维持大尺度染色质结构中发挥作用。KIF4与染色质广泛结合,其缺失导致染色质去凝缩和异染色质区域丢失。KIF4依赖的染色质去凝缩具有功能性后果,导致复制缺陷和基因表达程序的全球失调。KIF4通过调节核心和连接组蛋白的ADP-核糖化以及通过S期物理相互作用和招募染色质组装蛋白来发挥其功能,从而建立和维护更高阶的染色质结构。这些观察结果表明,分子马达蛋白在建立和维护高阶染色质结构中具有新的功能[4]。

KIF4还通过PI3K/Akt信号通路调节RAW264.7单核细胞/巨噬细胞中VEGFR1的表达。沉默KIF4抑制了VEGF mRNA的表达(P<0.01)和p-Akt(P<0.05)的水平;然而,与转染阴性对照siRNA的组相比,VEGF-A的水平升高(P<0.05)。沉默KIF4降低了VEGFR1 mRNA(P<0.05)、VEGFR1蛋白和细胞上清液中的sVEGFR1水平(P<0.01)。在Kif4 siRNA转染组中应用胰岛素样生长因子-1(100 ng/ml),PI3K/Akt的特异性激动剂,VEGFR1 mRNA水平(P<0.001)、VEGFR1蛋白水平和sVEGFR1水平(P<0.01)显著升高;然而,细胞上清液中的VEGF水平降低(P<0.05)。这些发现表明KIF4通过PI3K/Akt通路调节VEGFR1在RAW264.7细胞中的表达[5]。

KIF4还通过其尾端结构域与核糖体的主要蛋白成分P0直接相互作用。此外,在背根神经节神经元中,KIF4、P0以及其他核糖体成分在沿轴突和神经突尖端分布的簇中定位。RNA干扰抑制KIF4或表达缺乏尾端结构域或ATP结合位点突变的KIF4变体导致P0和其他核糖体蛋白在细胞体中积累,并从轴突中消失。这些结果还表明KIF4通过其Ezrin-Radixin-Moesin样结构域的第二个螺旋-卷曲区域与L1细胞粘附分子相互作用和运输。这些发现表明,KIF4通过与P0的尾端结构域结合并利用其马达活性,参与核糖体成分向轴突的前向运输,并通过与Ezrin-Radixin-Moesin样结构域相互作用,运输L1[6]。

KIF4在人类免疫缺陷病毒1型(HIV-1)Gag多蛋白的细胞内转运和稳定性中发挥重要作用。破坏KIF4的功能减慢了Gag通过其转运中间体的时间进程,并抑制了病毒样颗粒的产生。KIF4的敲低也导致Gag降解增加,导致细胞内Gag蛋白水平降低;这种表型可以通过重新引入KIF4来挽救。当KIF4功能被阻断时,Gag在离散的、近核的、非内吞的簇中暂时积累,这些簇与内源性KIF4、Ubc9(一种E2 SUMO-1连接酶)和SUMO共定位。这些研究确定了Gag在颗粒组装途径中通过的一个新的转运站,并突出了KIF4在调节HIV-1 Gag转运和稳定性中的重要性[7]。

KIF4及其结合伙伴PRC1在有序的中心纺锤体中段形成中发挥重要作用。研究发现,微管结合蛋白PRC1分别与三种马达蛋白KIF4、MKLP1和CENP-E结合,但不与着丝粒乘客蛋白结合。在KIF4缺陷细胞中,中心纺锤体无序,所有中段相关蛋白,包括PRC1,未能集中在中线,而是分散在中心纺锤体的松弛微管束上。这表明KIF4对中心纺锤体的组织和中段形成至关重要。在PRC1缺陷细胞中,没有形成中段,KIF4和CENP-E没有定位于断开的半纺锤体上,而MKLP1和着丝粒乘客蛋白定位于半纺锤体中靠近微管正端的离散亚域中。因此,PRC1对于两个半纺锤体的相互作用以及KIF4和CENP-E的定位是必需的。这些结果表明,KIF4及其结合伙伴PRC1在中心纺锤体的组织和中段形成中发挥重要作用[8]。

综上所述,KIF4是一种多功能蛋白,在DNA修复、DNA复制、有丝分裂、减数分裂、染色质结构和病毒蛋白转运等多个生物学过程中发挥重要作用。KIF4的失调与多种疾病相关,包括癌症、病毒感染和神经系统疾病。KIF4的研究有助于深入理解其生物学功能和疾病发生机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Sheng, Li, Hao, Shuang-Li, Yang, Wan-Xi, Sun, Yi. 2018. The multiple functions of kinesin-4 family motor protein KIF4 and its clinical potential. In Gene, 678, 90-99. doi:10.1016/j.gene.2018.08.005. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30081192/
2. Camlin, Nicole J, McLaughlin, Eileen A, Holt, Janet E. 2017. Kif4 Is Essential for Mouse Oocyte Meiosis. In PloS one, 12, e0170650. doi:10.1371/journal.pone.0170650. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28125646/
3. Luan, Y-J, Liu, S-H, Sun, Y-G, Xu, Y, Yang, P-S. . Whole genome expression microarray reveals novel roles for Kif4 in monocyte/macrophage cells. In European review for medical and pharmacological sciences, 23, 7016-7023. doi:10.26355/eurrev_201908_18743. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31486502/
4. Mazumdar, Manjari, Sung, Myong-Hee, Misteli, Tom. 2011. Chromatin maintenance by a molecular motor protein. In Nucleus (Austin, Tex.), 2, 591-600. doi:10.4161/nucl.2.6.18044. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22130187/
5. Xu, Yan, Luan, Yijun, Liu, Shaohua, Wei, Fengcai, Qu, Xun. 2017. Kif4 regulates the expression of VEGFR1 through the PI3K/Akt signaling pathway in RAW264.7 monocytes/macrophages. In International journal of molecular medicine, 39, 1285-1290. doi:10.3892/ijmm.2017.2936. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28350061/
6. Bisbal, Mariano, Wojnacki, José, Peretti, Diego, Jausoro, Ignacio, Cáceres, Alfredo. 2009. KIF4 mediates anterograde translocation and positioning of ribosomal constituents to axons. In The Journal of biological chemistry, 284, 9489-97. doi:10.1074/jbc.M808586200. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19158085/
7. Martinez, Nathaniel W, Xue, Xiaoxiao, Berro, Reem G, Kreitzer, Geri, Resh, Marilyn D. 2008. Kinesin KIF4 regulates intracellular trafficking and stability of the human immunodeficiency virus type 1 Gag polyprotein. In Journal of virology, 82, 9937-50. doi:10.1128/JVI.00819-08. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18684836/
8. Kurasawa, Yasuhiro, Earnshaw, William C, Mochizuki, Yuko, Dohmae, Naoshi, Todokoro, Kazuo. 2004. Essential roles of KIF4 and its binding partner PRC1 in organized central spindle midzone formation. In The EMBO journal, 23, 3237-48. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15297875/