Irf4-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Irf4-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-02677

品系全称

C57BL/6NCya-Irf4em1/Cya

品系背景

C57BL/6NCya

品系编号

KOCMP-16364-Irf4-B6N-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Irf4-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-02677) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
interferon regulatory factor 4
基因别称
IRF-4,LSIRF,NF-EM5,Spip
染色体号
Chr 13 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_013674 | Ensembl: ENSMUST00000021784
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 3~6
敲除长度
~3.6 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1096873Mice homozygous for disruptions in this gene display immune system abnormalities involving development of both T and B cells and affecting susceptibility to both bacterial and viral infections as well as impaired thermogenic gene expression and energy expenditure.
IRF4(干扰素调节因子4)是一种转录因子,在免疫细胞的发育和功能中起着关键作用。它是干扰素调节因子(IRF)家族的成员,通过转导来自不同受体的信号来激活或抑制基因表达。IRF4的表达是淋巴样、髓样和树突状细胞分化的关键调节因子,包括成熟B细胞分化成分泌抗体的浆细胞。此外,IRF4的表达与许多淋巴样恶性肿瘤有关,最近的研究表明它在多发性骨髓瘤(浆细胞恶性肿瘤)中发挥着重要作用。

多发性骨髓瘤是一种无法治愈的浆细胞恶性肿瘤,其转录网络受到IRF4的驱动。通过多组学方法,研究发现ARID1A(SWI/SNF染色质重塑复合物的一个成员)对于IRF4的表达和功能至关重要。ARID1A与IRF4蛋白在染色质上功能性地相关联。在活化的小鼠B细胞中删除Arid1a会破坏IRF4依赖性转录网络,并阻止浆细胞分化。靶向SWI/SNF活性会导致IRF4靶基因表达迅速丧失,并抑制MYC基因表达的全球扩增,导致多发性骨髓瘤细胞产生毒性。值得注意的是,具有侵袭性疾病的MM患者具有SWI/SNF活性的特征,并且SMARCA2/4抑制剂在IMiD耐药的MM细胞中仍然有效。此外,SWI/SNF和MEK抑制剂的组合对MM细胞显示出协同毒性,为复发/难治性疾病提供了有希望的策略[1]。

儿童大B细胞淋巴瘤(LBCL)具有与成人类型相似的形态和表型特征,但预后较好。LBCL中IRF4重排(LBCL-IRF4)的发生率较高,这表明可能存在一些年龄相关的生物学差异。研究发现,LBCL-IRF4具有频繁的IRF4和NF-κB通路基因(CARD11、CD79B和MYD88)突变,17p13缺失和染色体7、11q12.3-q25的获得。DLBCL,NOS主要是生发中心B细胞(GCB)亚型,携带与成人类似的基因突变(如SOCS1和KMT2D),获得2p16/REL,19p13/CD70缺失。HGBCL,NOS的一小部分显示Burkitt淋巴瘤相关基因(如MYC、ID3和DDX3X)的反复改变和9p21/CDKN2A的纯合子缺失,而其他病例在遗传上更接近GCB DLBCL。不良预后的相关因素包括年龄>18岁、激活的B细胞(ABC)DLBCL表型、HGBCL,NOS、高遗传复杂性、1q21-q44获得、2p16/REL获得/扩增、19p13/CD70纯合子缺失以及TP53和MYC突变[2]。

研究发现,IRF4中一个反复出现的杂合突变p.T95R会导致人类常染色体显性联合免疫缺陷(CID)。患者表现出对机会性感染(如Pneumocystis jirovecii)的严重易感性,并出现无丙种球蛋白血症。患者的B细胞显示出成熟受损、免疫球蛋白同种型转换减少和浆细胞分化缺陷,而T细胞中TH17和TFH群体减少,细胞因子产生减少。IRF4T95R突变体映射到转录因子的DNA结合域,改变其典型的DNA结合特异性,并导致IRF4的损失、增益和新功能的多种形态组合。尽管对DNA的结合亲和力增加,但IRF4T95R在IRF4典型基因上的转录活性降低,显示出低效性。同时,IRF4T95R通过结合非典型DNA位点来改变基因表达谱,包括仅由IRF4T95R诱导而不由IRF4WT诱导的基因的转录。这种先前未描述的多种形态的IRF4病理生理学破坏了正常的淋巴细胞生物学,导致人类疾病[3]。

慢性髓性白血病(CML)是一种骨髓增殖性肿瘤,其IRF4基因表达与预后和治疗反应相关。研究发现,在CML患者的酪氨酸激酶抑制剂(TKI)治疗过程中,IRF4的表达动力学与其疾病负担有关。IRF4表达与疾病负担的相关性在各个疾病阶段都观察到。国际规模(IS)与IRF4值之间的相关分析证实了这种密切关联。在TKI治疗3个月后,检测到显著增加。与未达到早期分子反应(EMR)目标的患者相比,达到EMR的患者在诊断和治疗后3个月的IRF4值更高。在监测期间,达到治疗无复发生存的患者没有显示IRF4波动,而在分子复发时出现IRF4表达降低。这些数据似乎证实了IRF4在CML发病机制中的相关性,表明其在疾病发生和CML过程中的预测价值[4]。

在淋巴瘤中,基因编码转录因子(TFs)的疾病相关突变可以影响TF与其同源DNA结合位点的相互作用。一个研究报道了一种在人类淋巴瘤中发生TF改变的独特机制,特别是在经典霍奇金淋巴瘤中。这是由于一个重复发生的错义突变c.295T>C(p.Cys99Arg;p.C99R)针对IRF4的DNA结合域的中心。IRF4-C99R从根本上改变了IRF4的DNA结合,失去了对典型IRF基序的结合,并获得了对典型和非典型IRF复合元件(CE)的结合。IRF4-C99R彻底改变了IRF4的功能,阻止了IRF4依赖性浆细胞诱导,并通过非典型激活蛋白-1(AP-1)-IRF-CE(AICE)依赖性方式上调疾病特异性基因。这些数据解释了单个突变如何导致TF特异性和基因调节的复杂转变,并为特异性阻断突变TF的表观DNA结合活性提供了视角[5]。

系统性红斑狼疮(SLE)和类风湿性关节炎(RA)等多种系统性自身免疫性疾病中观察到I型干扰素(IFN)特征的过度活化。自身免疫患者中IRGs的表达调控机制受损,包括IRFs,可能是这些发现的基础,并可能解释了这些疾病中的异质性。研究发现,RA患者中IRF4表达上调,而SLE患者中IRGs广泛活化。主成分分析(PCA)揭示了SLE和RA中IRF4和IRGs之间的不同关联,随后通过相关性和网络分析得到证实。聚类分析基于IRF4和IRGs的表达确定了3个基因表达特征,这些特征在SLE和RA患者中被差异化使用。SLE患者中,聚类III与疾病严重性的标记相关。RA中,以IRF4上调为特征的聚类II与临床阶段和轻度疾病过程相关。TNFα阻断导致IRF4和IRGs之间关联的变化,而IRF4表达增加与RA的良好的临床结果相关[6]。

基因表达谱分析确定了与IRF4表达相关的分子特征,包括在黑色素瘤中的过表达。此外,研究发现IRF4与一组重要基因相关,这些基因参与B细胞发育、致癌作用、细胞周期调节和细胞死亡,包括BATF、LIMD1、CFLAR、PIM2和CCND2。此外,还确定了IFI27、IFI44、GBP1、ARHGAP18和CFLAR等基因作为IRF4在EBV潜伏感染背景下的新靶点[7]。

总之,IRF4是一种重要的转录因子,在免疫细胞的发育和功能中发挥着关键作用。它在多种淋巴样和髓样恶性肿瘤中表达,并可能在多发性骨髓瘤的发病机制中发挥重要作用。IRF4的异常表达与免疫缺陷、自身免疫性疾病和恶性肿瘤的发生发展密切相关。通过深入研究IRF4的生物学功能和调节机制,可以更好地理解其在疾病中的作用,并为开发针对IRF4的治疗策略提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Bolomsky, Arnold, Ceribelli, Michele, Scheich, Sebastian, Muppidi, Jagan, Young, Ryan M. 2024. IRF4 requires ARID1A to establish plasma cell identity in multiple myeloma. In Cancer cell, 42, 1185-1201.e14. doi:10.1016/j.ccell.2024.05.026. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38906156/
2. Ramis-Zaldivar, Joan Enric, Gonzalez-Farré, Blanca, Balagué, Olga, Campo, Elías, Salaverria, Itziar. . Distinct molecular profile of IRF4-rearranged large B-cell lymphoma. In Blood, 135, 274-286. doi:10.1182/blood.2019002699. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31738823/
3. Fornes, Oriol, Jia, Alicia, Kuehn, Hye Sun, Turvey, Stuart E, Wang, Ji-Yang. 2023. A multimorphic mutation in IRF4 causes human autosomal dominant combined immunodeficiency. In Science immunology, 8, eade7953. doi:10.1126/sciimmunol.ade7953. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36662884/
4. Tarantini, Francesco, Cumbo, Cosimo, Parciante, Elisa, Musto, Pellegrino, Albano, Francesco. 2022. IRF4 Gene Expression on the Trail of Molecular Response: Looking at Chronic Myeloid Leukemia from Another Perspective. In Acta haematologica, 146, 37-43. doi:10.1159/000527173. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36195064/
5. Schleussner, Nikolai, Cauchy, Pierre, Franke, Vedran, Bonifer, Constanze, Mathas, Stephan. 2023. Transcriptional reprogramming by mutated IRF4 in lymphoma. In Nature communications, 14, 6947. doi:10.1038/s41467-023-41954-8. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37935654/
6. Rodríguez-Carrio, Javier, López, Patricia, Alperi-López, Mercedes, Ballina-García, Francisco J, Suárez, Ana. 2019. IRF4 and IRGs Delineate Clinically Relevant Gene Expression Signatures in Systemic Lupus Erythematosus and Rheumatoid Arthritis. In Frontiers in immunology, 9, 3085. doi:10.3389/fimmu.2018.03085. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30666255/
7. Wang, Ling, Yao, Zhi Q, Moorman, Jonathan P, Xu, Yanji, Ning, Shunbin. 2014. Gene expression profiling identifies IRF4-associated molecular signatures in hematological malignancies. In PloS one, 9, e106788. doi:10.1371/journal.pone.0106788. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25207815/