G0s2-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

G0s2-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-02146

品系全称

C57BL/6JCya-G0s2em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-14373-G0s2-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: G0s2-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-02146) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
G0/G1 switch gene 2
基因别称
-
染色体号
Chr 1 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_008059 | Ensembl: ENSMUST00000009777
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 1~2
敲除长度
~3.2 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1316737Homozygous null mice are lean, glucose tolerant and insulin sensitive, and show reduced liver triglyceride levels, enhanced lipolysis, reduced white fat cell size, resistance to diet-induced obesity and liver steatosis, increased oxygen consumption and thermogenesis, and enhanced cold tolerance.
G0s2,也称为G0/G1转换基因2,是一种重要的多功能蛋白。它最初被认为是介导细胞从G0期重新进入G1期的细胞周期进程。然而,最近的研究开始揭示了G0s2及其蛋白质产物在多种细胞环境中的功能方面。目前,G0s2最著名的功能是其直接抑制限速脂肪分解酶脂肪组织甘油三酯脂肪酶(ATGL)的能力。其他研究已经说明了G0s2的关键特征,包括亚细胞定位、表达谱和调控,以及在细胞增殖和分化中的可能功能。

G0s2在脂肪代谢中发挥着重要的作用。它是一种强大的内源性ATGL抑制剂,对脂肪分解和脂肪酸(FA)可用性起着关键的调节作用。G0s2在脊椎动物中高度保守,并且在脂肪组织和肝脏之间表现出周期性的表达模式,这对于这两个组织中的脂质通量和能量稳态至关重要。生化研究和细胞生物学研究表明,G0s2与ATGL的直接相互作用介导了G0s2对脂肪分解和脂滴降解的抑制作用。最近的体外和体内研究提供了证据,支持G0s2作为组织特异性平衡TG储存与动员、脂肪和肝脏之间的代谢燃料分配以及全身适应性能量反应的主调节剂的原理概念[1]。

G0s2在乳腺癌中也发挥着重要作用。研究表明,G0s2在ER+和ER-乳腺癌细胞中发挥着不同的作用。在ER-细胞中,G0s2的过表达增加了细胞增殖;而在ER+细胞中,G0s2的过表达则降低了细胞增殖。转录组分析显示,G0s2在ER-和ER+细胞中介导了不同的但重叠的转录反应。G0s2减少了与上皮表型相关的基因,尤其是在ER-细胞中,包括CDH1、ELF3、STEAP4和TACSTD2,表明G0s2促进了上皮-间质转化(EMT)。G0s2还抑制了雌激素信号传导和雌激素受体靶基因的特征,尤其是在ER+细胞中,包括TFF1和TFF3。此外,G0s2的过表达增加了ER-细胞的细胞迁移,并增加了ER+细胞对雌激素剥夺的敏感性。有趣的是,在G0s2过表达的ER+细胞中,ATGL下游的两个基因HMGCS1和HMGCS2,它们在脂肪利用和类固醇激素生物合成中非常重要,被下调了。此外,HSD17B11,一个将雌二醇转化为其较少雌激素衍生物雌酮的基因,在G0s2过表达的ER+细胞中高度上调,表明G0s2过表达对雌二醇的产生和维持有负面影响。G0s2和HSD17B11的高表达与乳腺癌患者的无复发生存期改善相关,而HMGSC1的高表达则与不良生存相关。最后,我们在乳腺癌易感的MMTV-PyMT小鼠中删除了G0s2。我们的数据表明,G0s2在乳腺癌中具有复杂的作用,取决于ER状态,这可能部分是通过抑制雌激素信号通路介导的[2]。

G0s2还在腹主动脉瘤(AAA)中发挥着重要作用。研究表明,G0s2和HPSE可以作为AAA的新的生物标志物。免疫细胞浸润分析显示,AAA过程可能由T滤泡辅助(Tfh)细胞介导,而大型AAA过程也可能由Tfh细胞、M1和M2巨噬细胞介导。此外,G0s2的表达与中性粒细胞、活化和静息肥大细胞、M0和M1巨噬细胞、调节性T细胞(Tregs)、静息树突状细胞和静息CD4记忆T细胞相关。此外,G0s2可能是一种有效的AAA诊断生物标志物,而HPSE可以用来评估大型AAA破裂的风险。免疫细胞在AAA的发病和进展中发挥作用,这可能改善其诊断和治疗[3]。

G0s2在白血病中也发挥着作用。研究表明,G0s2在急性早幼粒细胞白血病(APL)中起着重要作用。在G0s2敲除的永生化小鼠胚胎成纤维细胞(MEF)中,用HRAS或EGFR处理易于转化,而野生型MEF则不易转化。重要的是,G0s2的恢复逆转了HRAS驱动的转化。G0s2已知通过减弱ATGL来调节脂肪代谢,但G0s2对致癌基因诱导的转化的抑制与ATGL的抑制无关。基因表达分析显示,G0s2敲除的MEF中与转化、增殖和MYC靶点相关的基因特征上调。RNAi介导的G0s2敲除和MYC的药理学抑制消除了G0s2敲除MEF的致癌基因诱导的转化。此外,我们发现G0s2在正常乳腺组织中的表达水平高于恶性肿瘤组织。有趣的是,G0s2的高水平也与乳腺癌复发率的降低相关,尤其是在雌激素受体阳性亚型中,G0s2的过表达在体外抑制了乳腺癌细胞的增殖。这些发现表明,G0s2部分通过对抗MYC活性来发挥肿瘤抑制作用,这为进一步研究G0s2沉默如何介导MYC诱导的其他恶性肿瘤的致癌作用提供了新的研究方向[4]。

G0s2还在川崎病(KD)中发挥着重要作用。川崎病是一种系统性血管炎,是目前儿童获得性心脏病的最常见原因。然而,其病因尚不清楚。长链非编码RNA(lncRNA)参与了多种疾病的病理生理过程。很少有研究报道了lncRNA在KD炎症中的作用;因此,我们研究了lncRNA在KD炎症中的作用。共纳入了50例KD患者(中位年龄,19个月;29名男性和21名女性)。我们进行了cap分析基因表达测序,以确定KD患者外周血单核细胞中的差异表达基因。在这些基因中,G0/G1转换基因2(G0S2)及其反义lncRNA,HSD11B1-AS1,在KD急性期上调(P<0.0001和<0.0001,分别)。此外,当脂多糖诱导THP-1单核细胞炎症时,G0S2的表达增加,沉默G0S2抑制了HSD11B1-AS1和肿瘤坏死因子-α的表达。这项研究揭示了lncRNA在急性KD先天性免疫中的重要作用。lncRNA可能是KD诊断的一个新的关键靶点。这项研究使用cap分析基因表达测序技术,全面揭示了KD患者单核细胞的基因表达谱,并确定了KD特异性分子:G0/G1转换基因2(G0S2)和长链非编码RNA(lncRNA)HSD11B1-AS1。我们证明了G0S2及其反义HSD11B1-AS1与KD中先天性免疫的炎症相关。lncRNA可能是KD患者诊断的一个新的关键靶点[5]。

G0s2还在动脉粥样硬化中发挥着重要作用。氧化低密度脂蛋白(ox-LDL)诱导的内皮细胞损伤是动脉粥样硬化及其相关心血管疾病的主要危险因素。G0/G1转换基因2(G0S2)是一种多功能蛋白,在动脉粥样硬化中研究较少。在这项研究中,ox-LDL被用来构建人主动脉内皮细胞(HAEC)损伤模型。发现ox-LDL降低了细胞活力,增加了乳酸脱氢酶(LDH)的释放,并降低了HAECs中G0S2的水平,呈剂量依赖性。进一步发现,G0S2的过表达改善了ox-LDL处理的HAECs的活力,并抑制了细胞凋亡。相反,G0S2的耗竭降低了ox-LDL处理的HAECs的活力,并加剧了细胞凋亡。在分子水平上,G0S2的过表达显著增加了超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化氢酶(CAT)和谷胱甘肽过氧化物酶(GPH-Px)的分泌,促进了正常或ox-LDL条件下HAECs中的活性氧(ROS)产生和丙二醛(MDA)含量。同时,G0S2的过表达显著逆转了ox-LDL诱导的线粒体功能障碍,如线粒体膜电位降低、细胞色素c(Cyt-c)转移到细胞质以及caspase-3和caspase-9的激活。此外,G0S2的过表达在正常和ox-LDL条件下促进了AMP活化蛋白激酶(AMPK)的激活,并增加了核因子红细胞-2相关因子-2(Nrf2)、sirtuin 1(SIRT1)和血红素加氧酶1(HO-1)的表达。这项研究表明,G0S2通过调节氧化损伤和线粒体稳态来保护ox-LDL诱导的血管内皮细胞损伤,可能是治疗动脉粥样硬化的一个有希望的靶点[6]。

G0s2在脂肪分解中发挥着关键作用。脂肪分解是甘油三酯(TG)分解为游离脂肪酸(FA)和甘油的过程,从而释放FA用于能量产生。脂肪组织甘油三酯脂肪酶(ATGL)是脂肪分解的关键酶,它在细胞内脂肪分解过程中释放FA。ATGL的活性受到多种因素的调节,包括蛋白质介导的相互作用和翻译后修饰。ATGL的调节对于维持脂质储存与动员之间的平衡至关重要[7]。

G0s2在鸡的肉质性状中也发挥着重要作用。研究表明,G0s2基因的多态性与鸡的肉质性状有关。在鸡的G0S2基因中检测到总共七个SNP位点(g.102G > A,g.255G > A,g.349C > T,g.384A > G,g.386G > A,g.444G > A,g.556G > A)。两个位点位于编码区,五个位点位于3'-UTR。编码区中的SNP是无义突变。g.444G > A与腹脂重量的显著相关。具有AG和GG基因型的鸡具有最高的腹脂重量,而AA基因型较低。g.102G > A基因型与活体重和腹脂重量显著相关。具有AA和AG基因型的鸡的活体重和腹脂重量较高,与GG基因型相比差距较大。在g.556G > A中具有AA基因型的鸡的脂肪重量最低。这项研究的结果可以为鸡肉质性状的分子标记辅助育种提供实用的信息[8]。

综上所述,G0s2是一种重要的多功能蛋白,在脂肪代谢、乳腺癌、腹主动脉瘤、白血病、川崎病和动脉粥样硬化等多种生物学过程中发挥着重要作用。G0s2的研究有助于深入理解脂肪代谢和细胞周期的调控机制,为相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Zhang, Xiaodong, Heckmann, Bradlee L, Campbell, Latoya E, Liu, Jun. 2017. G0S2: A small giant controller of lipolysis and adipose-liver fatty acid flux. In Biochimica et biophysica acta. Molecular and cell biology of lipids, 1862, 1146-1154. doi:10.1016/j.bbalip.2017.06.007. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28645852/
2. Corbet, Andrea K, Bikorimana, Emmanuel, Boyd, Raya I, Spinella, Michael J, Singh, Ratnakar. 2023. G0S2 promotes antiestrogenic and pro-migratory responses in ER+ and ER- breast cancer cells. In Translational oncology, 33, 101676. doi:10.1016/j.tranon.2023.101676. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37086619/
3. Xiong, Tao, Lv, Xiao-Shuo, Wu, Gu-Jie, Fu, Yi-Fan, Liu, Fu-Qiang. 2022. Single-Cell Sequencing Analysis and Multiple Machine Learning Methods Identified G0S2 and HPSE as Novel Biomarkers for Abdominal Aortic Aneurysm. In Frontiers in immunology, 13, 907309. doi:10.3389/fimmu.2022.907309. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35769488/
4. Payne, Kimberly J, Dovat, Sinisa. 2013. G0S2--a new player in leukemia. In Leukemia research, 38, 147-8. doi:10.1016/j.leukres.2013.11.011. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24332429/
5. Okabe, Mako, Takarada, Shinya, Miyao, Nariaki, Ichida, Fukiko, Hirono, Keiichi. 2022. G0S2 regulates innate immunity in Kawasaki disease via lncRNA HSD11B1-AS1. In Pediatric research, 92, 378-387. doi:10.1038/s41390-022-01999-9. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35292727/
6. Heckmann, Bradlee L, Zhang, Xiaodong, Xie, Xitao, Liu, Jun. 2012. The G0/G1 switch gene 2 (G0S2): regulating metabolism and beyond. In Biochimica et biophysica acta, 1831, 276-81. doi:10.1016/j.bbalip.2012.09.016. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23032787/
7. Cerk, Ines Katrin, Wechselberger, Lisa, Oberer, Monika. . Adipose Triglyceride Lipase Regulation: An Overview. In Current protein & peptide science, 19, 221-233. doi:10.2174/1389203718666170918160110. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28925902/
8. Yang, Xin, Xian, Yuanrong, Li, Zhenhui, Wang, Zhijun, Nie, Qinghua. 2022. G0S2 Gene Polymorphism and Its Relationship with Carcass Traits in Chicken. In Animals : an open access journal from MDPI, 12, . doi:10.3390/ani12070916. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35405904/