Cyp2f2-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Cyp2f2-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-01714

品系全称

C57BL/6JCya-Cyp2f2em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-13107-Cyp2f2-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Cyp2f2-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-01714) were purchased from Cyagen.
交付类型
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基因型
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基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
cytochrome P450, family 2, subfamily f, polypeptide 2
基因别称
Cyp2f
染色体号
Chr 7 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_007817.2 | Ensembl: ENSMUST00000003100
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 2~10
敲除长度
~12.1 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:88608Mice homozygous for a knock-out allele exhibit resistance to napthalene-induced toxicity in the lungs.
Cyp2f2,也称为Cytochrome P450 2F2,是细胞色素P450超家族中的一员。细胞色素P450是一类在生物体中普遍表达的酶,负责许多内源性和外源性化合物的解毒作用,以及对多种药物的代谢。Cyp2f2亚家族在呼吸道中特异性表达,但其功能在脂肪细胞中的作用尚未被探索。研究表明,Cyp2f2在C3H10T1/2小鼠间充质干细胞分化为脂肪细胞过程中高度表达,并在脂肪细胞中发挥重要的功能[1]。

研究发现,在Cyp2f2缺乏的3T3-L1脂肪细胞中,产热标记蛋白如过氧化物酶体增殖物激活受体γ共激活因子1-α(PGC-1α)、PR结构域包含16(PRDM16)和解偶联蛋白1(UCP1)以及棕色脂肪特异性基因的表达显著增加。此外,Cyp2f2沉默导致脂肪生成和脂肪生成减少,并通过增加脂肪分解和脂肪酸氧化酶的表达来增强脂质分解代谢。机制研究表明,CYP2F2通过损害β3-肾上腺素受体(β3-AR)的激活以及其下游调节因子包括蛋白激酶A(PKA)、p38丝裂原活化蛋白激酶(p38 MAPK)和激活转录因子2(ATF2)来介导对白色脂肪细胞棕色化的负调节。这些数据提供了证据,表明CYP2F2是白色脂肪细胞中脂质分解代谢和棕色化的负调节因子,提示CYP2F2抑制剂可能是治疗肥胖的潜在药物,重点是增强能量消耗[1]。

除了在脂肪细胞中的作用外,Cyp2f2还在肺和鼻嗅觉黏膜中发挥着重要作用。研究显示,Cyp2f2缺乏小鼠对萘诱导的肺毒性具有抵抗力,但在鼻嗅觉黏膜中并未减轻萘诱导的非蛋白硫醇(NPSH)耗竭或组织毒性。这表明小鼠CYP2F2在肺中萘的生物活化和毒性中发挥着重要作用,但在鼻嗅觉黏膜中则不然[2]。

此外,Cyp2f2还与脂肪生成分化相关。研究发现,在OP9细胞和3T3-L1细胞中,Acsl1表达在脂肪生成分化过程中显著上调。敲低Acsl1导致与脂肪生成相关的基因表达下降,并减少甘油三酯积累。此外,Acsl1过表达促进脂肪细胞分化,并且脂肪特异性过表达Acsl1显著加剧了高脂饮食引起的脂肪变性。机制研究表明,Cyp2f2、Dusp23和Gstm2是Acsl1诱导的脂肪生成分化中的关键基因。这些发现表明Acsl1促进脂肪生成,并可能成为治疗肥胖和相关代谢疾病的潜在治疗靶点[3]。

Cyp2f2的表达还受到环境因素的影响。研究发现,二乙基己基邻苯二甲酸酯(DEHP)作为过氧化物酶体增殖剂,可降低小鼠肝脏中Cyp2f2 mRNA水平。DEHP处理导致肝脏中Cyp2f2 mRNA水平降低,并且在肾脏中也检测到较小的Cyp2f2 mRNA转录本,这些转录本水平也被抑制,但程度低于肝脏。小鼠肝脏对DEHP的反应是剂量和时间依赖性的[4]。

Cyp2f2基因位于人类19号染色体上的CYP2基因簇中。CYP2基因簇包含CYP2A、2B和2F亚家族的基因,组织结构复杂,并包含许多假基因。研究表明,CYP2基因簇的进化是一个有趣的过程,其组织、结构和表达已被广泛研究[5]。

在评估小鼠肺对苯乙烯反应的分子启动事件(MIEs)、关键事件(KEs)和调节因素(MFs)的研究中,通过全基因组基因表达谱分析发现,CYP2F2敲除小鼠的基因表达模式与其他小鼠品种存在显著差异。结果表明,苯乙烯的直接致瘤性可能是通过小鼠特异性CYP2F2介导的代谢物激活Nr4a信号通路引起的[6]。

在辐射损伤的肺中,骨髓来源细胞的再殖方面,研究发现辐射照射减少了肺干细胞标记物的表达,包括 clara细胞(CCSP)、上皮细胞1(FOXJ1)和表面活性蛋白C(SP-C)。辐射照射后,骨髓来源的肺上皮细胞(GFP+CD45-)的表达水平较低。这表明,骨髓祖细胞可能不参与辐射损伤后的肺再殖[7]。

此外,研究人员还构建了一个CYP2A13/2B6/2F1转基因小鼠模型,以研究这些人类基因的调节和功能。结果显示,转基因小鼠的组织分布与人类中CYP2A13和CYP2F1在呼吸道的特异性表达以及CYP2B6在肝脏中的表达一致。CYP2A13蛋白在转基因小鼠的鼻黏膜和肺中检测到,但在肝脏中未检测到。CYP2F1蛋白在转基因小鼠的鼻黏膜和肺中检测到,但在肝脏中未检测到。至少有一种转基因蛋白(CYP2A13)似乎具有活性,因为转基因小鼠的鼻黏膜在体外和体内对CYP2A13底物4-(甲基硝基亚硝基)-1-(3-吡啶基)-1-丁酮的生物活化活性高于野生型小鼠[8]。

在对发育和成年小鼠角膜与晶状体和肌腱的基因表达模式进行比较的研究中,发现Cyp2f2在成年角膜中表达上调。这表明Cyp2f2可能在角膜的成熟过程中发挥作用[9]。

最后,在研究高氧暴露诱导的小鼠肺泡损伤的分子机制时,发现Cyp2f2 mRNA水平显著下调。这表明Cyp2f2可能参与肺泡损伤的发生和进展[10]。

综上所述,Cyp2f2作为一种重要的细胞色素P450酶,在脂肪细胞代谢、肺毒性、脂肪生成分化、环境暴露反应、肺再生和角膜发育等方面发挥着重要作用。深入研究Cyp2f2的功能和调节机制,对于理解其在各种生理和病理过程中的作用,以及开发针对肥胖、肺疾病和其他相关疾病的治疗策略具有重要意义。

参考文献:
1. Dang, Trang Thi Huyen, Choi, Minji, Pham, Huong Giang, Yun, Jong Won. 2021. Cytochrome P450 2F2 (CYP2F2) negatively regulates browning in 3T3-L1 white adipocytes. In European journal of pharmacology, 908, 174318. doi:10.1016/j.ejphar.2021.174318. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34252443/
2. Li, Lei, Wei, Yuan, Van Winkle, Laura, Kluetzman, Kerri, Ding, Xinxin. 2011. Generation and characterization of a Cyp2f2-null mouse and studies on the role of CYP2F2 in naphthalene-induced toxicity in the lung and nasal olfactory mucosa. In The Journal of pharmacology and experimental therapeutics, 339, 62-71. doi:10.1124/jpet.111.184671. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21730012/
3. Jiang, Yao, Wang, Wei, Wang, Hui, Chen, Yong Q, Zhu, Shenglong. 2024. ACSL1 positively regulates adipogenic differentiation. In Biochemical and biophysical research communications, 735, 150865. doi:10.1016/j.bbrc.2024.150865. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39442449/
4. Ye, X, Lu, L, Gill, S S. . Suppression of cytochrome P450 Cyp2f2 mRNA levels in mice by the peroxisome proliferator diethylhexylphthalate. In Biochemical and biophysical research communications, 239, 660-5. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9367824/
5. Hoffman, S M, Nelson, D R, Keeney, D S. . Organization, structure and evolution of the CYP2 gene cluster on human chromosome 19. In Pharmacogenetics, 11, 687-98. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11692077/
6. Andersen, Melvin E, Cruzan, George, Black, Michael B, Waites, Robbie, McMullen, Patrick D. 2017. Assessing molecular initiating events (MIEs), key events (KEs) and modulating factors (MFs) for styrene responses in mouse lungs using whole genome gene expression profiling following 1-day and multi-week exposures. In Toxicology and applied pharmacology, 335, 28-40. doi:10.1016/j.taap.2017.09.015. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28951217/
7. Bernard, Mark E, Kim, Hyun, Rajagopalan, Malolan S, Stolz, Donna B, Greenberger, Joel S. . Repopulation of the irradiation damaged lung with bone marrow-derived cells. In In vivo (Athens, Greece), 26, 9-18. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22210711/
8. Wei, Yuan, Wu, Hong, Li, Lei, Yao, Yunyi, Ding, Xinxin. 2012. Generation and characterization of a CYP2A13/2B6/2F1-transgenic mouse model. In Drug metabolism and disposition: the biological fate of chemicals, 40, 1144-50. doi:10.1124/dmd.112.044826. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22397853/
9. Wu, Feng, Lee, Seakwoo, Schumacher, Michael, Jun, Albert, Chakravarti, Shukti. 2008. Differential gene expression patterns of the developing and adult mouse cornea compared to the lens and tendon. In Experimental eye research, 87, 214-25. doi:10.1016/j.exer.2008.06.001. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18582462/
10. Shimada, Ichiroh, Matsui, Kazuhiro, Brinkmann, Bernd, Takizawa, Hisao, Matsuki, Takasumi. 2008. Novel transcript profiling of diffuse alveolar damage induced by hyperoxia exposure in mice: normalization by glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenase. In International journal of legal medicine, 122, 373-83. doi:10.1007/s00414-008-0226-6. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18301909/