Csf2rb2-KO 基因敲除小鼠

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复苏/繁育服务
产品名称

Csf2rb2-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-01662

品系全称

C57BL/6JCya-Csf2rb2em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-12984-Csf2rb2-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Csf2rb2-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-01662) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
KO小鼠库模型
JAK-STAT信号通路

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
colony stimulating factor 2 receptor, beta 2, low-affinity (granulocyte-macrophage)
基因别称
AIC2A,BetaIl3,Bil3,Csfgmrb,Il3r,Il3rb,Il3rb2
染色体号
Chr 15 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_007781 | Ensembl: ENSMUST00000096356
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 3
敲除长度
~1.1 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1339760Homozygotes for a targeted null mutation are apparently normal.
基因Csf2rb2,也称为粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子受体β亚基(GM-CSFRβ),是细胞因子受体家族中的重要成员。GM-CSFR由α和β两个亚基组成,其中β亚基与GM-CSF、IL-3和IL-5的α亚基共同形成高亲和力受体,参与细胞信号传导和造血过程。Csf2rb2在多种细胞类型中表达,包括骨髓细胞、肠上皮细胞和巨噬细胞,对维持正常生理功能和免疫应答至关重要。

在创伤后并发症的早期诊断中,Csf2rb2基因的表达水平可能具有重要的指示作用。一项研究发现,在经历压力控制的出血处理后,小鼠Kupffer细胞的Csf2rb2基因表达显著增加[1]。这表明Csf2rb2可能在创伤后并发症的发生发展中发挥重要作用,并可能作为早期诊断的生物标志物。

此外,Csf2rb2基因在骨髓细胞的信号传导中也发挥着关键作用。另一项研究发现,在骨髓来源的造血干细胞/祖细胞(HSPCs)和骨髓间充质干细胞(BMMSCs)中,Csf2rb2基因的mRNA转录水平存在显著差异[2]。这表明Csf2rb2可能在HSPCs和BMMSCs的发育和再生能力中发挥重要作用,并可能成为研究细胞信号传导和造血机制的重要靶点。

肠道内淋巴细胞的IL-22产生与Csf2rb2基因表达密切相关。研究发现,在小肠固有层细胞(ILCs)中,Csf2rb2基因的mRNA转录水平较高,且在小肠ILCs的亚群中,Csf2rb2基因的表达与IL-22的产生密切相关[3]。这表明Csf2rb2可能在肠道免疫和炎症反应中发挥重要作用。

Csf2rb2基因还与肝损伤的保护作用相关。一项研究发现,在四氯化碳(CCl4)诱导的急性肝损伤小鼠模型中,Csf2rb2基因的表达水平显著升高[4]。这表明Csf2rb2可能在肝损伤的保护作用中发挥重要作用,并可能成为治疗肝脏疾病的新靶点。

Csf2rb2基因的缺失会影响小鼠的红细胞生成。研究发现,Rcor1基因敲除小鼠的红细胞生成受损,且Csf2rb基因表达升高[5]。这表明Csf2rb2基因在红细胞生成中发挥重要作用,并可能成为治疗贫血等疾病的新靶点。

Csf2rb2基因还与TSLP介导的嗜碱性粒细胞生成和2型炎症相关。研究发现,TSLP可以促进嗜碱性粒细胞生成,且TSLPR缺陷小鼠的嗜碱性粒细胞反应受损[6]。这表明Csf2rb2可能在TSLP介导的嗜碱性粒细胞生成和2型炎症中发挥重要作用,并可能成为治疗过敏性疾病等疾病的新靶点。

综上所述,基因Csf2rb2在多种生物学过程中发挥重要作用,包括创伤后并发症的早期诊断、骨髓细胞的信号传导、肠道免疫和炎症反应、肝损伤的保护作用、红细胞生成和TSLP介导的嗜碱性粒细胞生成和2型炎症等。Csf2rb2的研究有助于深入理解细胞信号传导和造血机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Schultze, Cornelia, Hildebrand, Frank, Noack, Sandra, Zeckey, Christian, Neunaber, Claudia. 2016. Identification of potential biomarkers for post-traumatic complications released after trauma-hemorrhage from murine Kupffer cells and its investigation in lung and liver. In Biomarkers : biochemical indicators of exposure, response, and susceptibility to chemicals, 21, 645-52. doi:10.3109/1354750X.2016.1171908. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27120970/
2. Anam, Khairul, Davis, Thomas A. 2013. Comparative analysis of gene transcripts for cell signaling receptors in bone marrow-derived hematopoietic stem/progenitor cell and mesenchymal stromal cell populations. In Stem cell research & therapy, 4, 112. doi:10.1186/scrt323. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24405801/
3. Lee, Youngae, Kumagai, Yutaro, Jang, Min Seong, Akira, Shizuo, Jang, Myoung Ho. 2013. Intestinal Lin- c-Kit+ NKp46- CD4- population strongly produces IL-22 upon IL-1β stimulation. In Journal of immunology (Baltimore, Md. : 1950), 190, 5296-305. doi:10.4049/jimmunol.1201452. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23589614/
4. Xu, Guangyu, Han, Xiao, Yuan, Guangxin, An, Liping, Du, Peige. 2017. Screening for the protective effect target of deproteinized extract of calf blood and its mechanisms in mice with CCl4-induced acute liver injury. In PloS one, 12, e0180899. doi:10.1371/journal.pone.0180899. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28700704/
5. Yao, Huilan, Goldman, Devorah C, Nechiporuk, Tamilla, Fleming, William H, Mandel, Gail. 2014. Corepressor Rcor1 is essential for murine erythropoiesis. In Blood, 123, 3175-84. doi:10.1182/blood-2013-11-538678. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24652990/
6. Siracusa, Mark C, Saenz, Steven A, Hill, David A, Comeau, Michael R, Artis, David. 2011. TSLP promotes interleukin-3-independent basophil haematopoiesis and type 2 inflammation. In Nature, 477, 229-33. doi:10.1038/nature10329. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21841801/