Cxcr3-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Cxcr3-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-01536

品系全称

C57BL/6JCya-Cxcr3em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-12766-Cxcr3-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Cxcr3-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-01536) were purchased from Cyagen.
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基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
C-X-C motif chemokine receptor 3
基因别称
Cd183,Cmkar3
染色体号
Chr X (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_009910 | Ensembl: ENSMUST00000056614
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 1~2
敲除长度
~2.7 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1277207Mice homozygous or hemizygous for disruptions in this gene display immune system abnormalities. Hemizygous male mice exhibit elevated serum glucose levels.
CXCR3(CXC趋化因子受体3)是一种G蛋白偶联受体,主要在T细胞上表达,对多种免疫和炎症反应的调节至关重要。CXCR3能够与多种趋化因子结合,包括CXCL9、CXCL10和CXCL11,这些趋化因子统称为IP-10、Mig和ITAC。CXCR3与这些趋化因子的结合可以促进T细胞的迁移和活化,尤其是在炎症和免疫反应中。CXCR3的表达和活性与多种疾病的发展密切相关,包括自身免疫性疾病、癌症和神经退行性疾病等。

CXCR3在结肠炎症中的作用机制在参考文献1中被探讨。该研究发现,抗PD-1和CTLA-4抗体的免疫检查点阻断疗法可以引起严重的炎症副作用,其中结肠炎是一个常见且严重的副作用。通过单细胞分析,研究观察到CD8 T细胞在结肠炎中的显著积累,这些细胞处于高度细胞毒性和增殖状态,而没有证据表明调节性T细胞耗尽。TCR序列分析表明,与结肠炎相关的CD8 T细胞主要来源于组织驻留群体,这解释了为什么在治疗开始后结肠炎症状会频繁地早期出现。此外,研究还确定了可能作为结肠炎和其他免疫检查点阻断炎症副作用的潜在治疗靶点的细胞因子、趋化因子和表面受体[1]。

CXCR3在特应性皮炎中的作用机制在参考文献2中被探讨。该研究发现,皮肤浸润的中性粒细胞是特应性皮炎中瘙痒的关键启动因素。中性粒细胞耗竭显著减弱了特应性皮炎小鼠模型中瘙痒引起的搔抓行为。中性粒细胞对于慢性瘙痒的几个关键特征也是必需的,包括皮肤过度神经支配、瘙痒信号分子的增强表达以及炎症细胞因子、活性诱导基因和神经性瘙痒标记物的上调。研究还发现,中性粒细胞对于诱导CXCL10(CXCR3受体的配体)是必需的,CXCL10通过激活感觉神经元促进瘙痒。此外,研究发现CXCR3拮抗剂可以减弱慢性瘙痒[2]。

CXCR3在受损肠道上皮细胞修复中的作用机制在参考文献3中被探讨。该研究旨在探讨CXCR3/HO-1基因修饰的骨髓间充质干细胞(BMMSCs)是否能够在体外修复受损肠道上皮细胞,以及p38-MAPK信号通路在此过程中的作用。研究建立了一个肠道上皮隐窝细胞系IEC-6损伤模型,并在体外转染了CXCR3和/或HO-1基因的BMMSCs。研究发现,CXCR3/HO-1基因修饰的BMMSCs表现出干细胞特征并具有趋化性。这些BMMSCs在受损IEC-6细胞中上调了紧密连接蛋白ZO-1的表达,并抑制了p38-MAPK信号通路下游分子的表达,包括p-p38、p-激活转录因子2、p-C/EBP同源蛋白10和p-肌细胞增强因子2C,并减少了受损IEC-6细胞的凋亡。研究还发现,CXCR3/HO-1基因修饰的BMMSCs在肠移植排斥模型中表现出更显著的修复受损肠道和抑制p38-MAPK通路的作用[3]。

CXCR3在局限性硬皮病中的作用机制在参考文献4中被探讨。该研究使用单细胞RNA测序技术分析了14例局限性硬皮病患者的受损皮肤和14例健康对照者的皮肤。研究发现,局限性硬皮病中存在12个成纤维细胞亚群,这些亚群整体上具有炎症基因表达特征(IFN和HLA相关基因)。其中,一个肌成纤维细胞样亚群(SFRP4/PRSS23)在局限性硬皮病患者中更为常见,并且与系统性硬化症相关的肌成纤维细胞样亚群有相似的基因表达模式,同时还强表达CXCL9/10/11(已知的CXCR3配体)。此外,研究还发现一个独特的CXCL2/IRF1亚群,它在局限性硬皮病中具有强烈的炎症基因表达特征,包括IL-6,并且根据细胞通讯分析受到巨噬细胞的影响[4]。

CXCR3在白斑病中的作用机制在参考文献5中被探讨。该研究发现,白斑病患者受损皮肤中的基因表达揭示了IFN-γ特异性特征,包括趋化因子CXCL10。CXCL10在白斑病患者皮肤和血清中的表达均升高,其受体CXCR3在致病性T细胞上表达。研究使用了一种白斑病小鼠模型,该模型也表现出IFN-γ特异性基因特征,皮肤中CXCL10的表达以及抗原特异性T细胞上CXCR3的上调。研究发现,Cxcr3基因敲除小鼠或缺乏Cxcl10的小鼠,以及接受CXCL10中和抗体治疗的小鼠,其白斑病进展和维持程度均较低。此外,研究发现CXCL10的中和可以诱导已经建立的广泛白斑病小鼠模型的疾病逆转,表现为再色素沉着。这些数据表明CXCL10在白斑病的进展和维持中起着关键作用,并支持抑制CXCL10作为白斑病靶向治疗策略[5]。

CXCR3在糖尿病中的作用机制在参考文献6中被探讨。该研究发现,CXCR3、CXCR5、CXCR6和CXCR7趋化因子受体在1型糖尿病(T1D)的发病机制中起着重要作用,特别是在自身免疫和β细胞破坏方面。特别是循环CXCL10水平(CXCR3的配体)在T1D患者中升高,这表明CXCL10可能是一个预测T1D的候选标记物。阻断CXCL10/CXCR3轴在糖尿病新发阶段可能是一种治疗T1D的潜在策略。研究还发现,在T1D的实验模型中调节或阻断CXCR5、CXCR6和CXCR7趋化因子受体也具有潜在的治疗作用[6]。

CXCR3在子宫内膜腺癌中的预后预测作用在参考文献7中被探讨。该研究旨在开发并验证一个基因生物标志物和列线图,以预测子宫内膜腺癌的生存情况,并探索潜在的机制和选择敏感药物。研究使用了TCGA数据库中425例子宫内膜腺癌患者的RNA测序数据,并使用WGCNA方法确定了与免疫相关的模块。此外,研究还使用GSE17025数据库中的103例子宫内膜腺癌患者作为外部测试集。研究下载了Innate DB数据库中的免疫相关基因,并使用三组数据确定了预后基因。研究基于TCGA数据库中397例具有完整临床数据的子宫内膜腺癌患者,将其随机分为训练集(n=199)和测试集(n=198),并确定了CXCR3作为预后基因生物标志物。研究还使用年龄、分级、FIGO分期和风险开发了并验证了一个预测列线图模型。研究通过AUC、C指数、校准曲线和K-M估计评估了模型的预测性能。研究发现,CXCR3是一个预后生物标志物,低风险组的总生存期(OS)比高风险组更好。此外,研究还分析了高风险组和低风险组之间的免疫细胞差异,发现CD8+ T细胞、活化的CD4+ T细胞、Th细胞、单核细胞和M1巨噬细胞在低风险组中浸润更多。然而,M0巨噬细胞和活化的树突状细胞在高风险组中更多。低风险组的免疫功能,包括APC共抑制、APC共刺激、CCR、检查点、细胞毒性、HLA、炎症促进、MHC-I、旁炎症、T细胞共抑制、T细胞共刺激、I型IFN反应和II型IFN反应,均优于高风险组。低风险组的TMB和TIDE评分也均优于高风险组。通过pRRophetic包,研究发现了56种对不同风险组敏感的药物。研究确定了CXCR3作为预后生物标志物,并开发并验证了一个结合CXCR3、年龄、组织学分级和FIGO分期的预测列线图模型,该模型可以帮助探索子宫内膜腺癌的精确治疗[7]。

CXCR3在狼疮性肾炎中的作用机制在参考文献8中被探讨。该研究研究了肿瘤坏死因子样弱凋亡诱导剂(TWEAK)/Fn14和干扰素诱导蛋白(IP-10)/CXCR3轴在狼疮性肾炎发病机制中的作用。研究定量了42例狼疮性肾炎患者(LN组)和10例健康对照者的肾小球和肾小管间质的TWEAK、Fn14、IP-10和CXCR3的mRNA表达。与对照者相比,LN患者的肾小球TWEAK和Fn14表达更高,但CXCR3表达较低。同样,LN组的肾小管间质TWEAK和Fn14表达也更高,但CXCR3表达较低。研究还发现,LN患者中,肾小球TWEAK表达与肾小球肾炎的V级显著高于IV级。肾小球CXCR3表达与蛋白尿显著相关(r=-0.532;P=0.019),而肾小管间质CXCR3与血清肌酐显著相关(r=-0.447;P=0.029)。在LN患者中,TWEAK/Fn14和IP-10/CXCR3轴的内肾表达增加,CXCR3表达降低。肾小管间质CXCR3表达与蛋白尿和肾功能相关。研究结果表明,TWEAK/Fn14和IP-10/CXCR3轴可能参与狼疮性肾炎的发病机制[8]。

CXCR3在鱼类中的作用机制在参考文献9中被探讨。该研究回顾了鱼类中CXCL9-11/CXCR3轴的研究进展。研究发现,CXCL9、CXCL10、CXCL11和CXCR3受体在鱼类免疫中起着重要作用,参与T细胞迁移和Th1免疫反应的诱导。数据表明,CXCL9-11/CXCR3轴在鱼类中起源于早期进化,并且在大多数鱼类中存在。然而,不同物种中CXCL9、CXCL10、CXCL11和CXCR3受体的基因拷贝数量不同,具有不同的表达调控机制和可能不同的功能,如鱼类组织中CXCL9、CXCL10和CXCL11的差异性表达所示[9]。

CXCR3在神经病理性疼痛中的作用机制在参考文献10中被探讨。该研究探讨了CXCR3如何被DNA甲基化调控以及它如何在小鼠中由坐骨神经结扎(SNL)引起的神经病理性疼痛中发挥作用。研究发现,SNL增加了脊髓神经元中Cxcr3 mRNA和蛋白的表达。同时,Cxcr3基因启动子区域的CpG岛被去甲基化,DNA甲基转移酶3b(DNMT3b)的表达减少。SNL还增加了C/EBPα与Cxcr3启动子的结合,并减少了DNMT3b与Cxcr3启动子的结合。SNL后,脊髓神经元中C/EBPα的表达增加,而通过鞘内小干扰RNA抑制C/EBPα的表达可以减弱SNL引起的疼痛敏感性并降低Cxcr3的表达。此外,Cxcr3基因敲除小鼠的机械性异常性疼痛和热痛觉过敏显著降低。通过shRNA或CXCR3拮抗剂抑制CXCR3也可以减弱已建立的神经病理性疼痛。研究发现,SNL后,CXCL10(CXCR3的配体)在脊髓神经元和星形胶质细胞中增加。向脊髓切片中添加CXCL10可以增强层II神经元的自发性兴奋性突触后电流,并增强NMDA诱导和AMPA诱导的电流。最后,向鞘内注射CXCL10可以在正常小鼠中诱导CXCR3依赖性疼痛敏感性。总的来说,研究结果揭示了CXCR3表达和活化的表观遗传机制,并表明靶向CXCR3的表达或激活可能为神经病理性疼痛提供新的治疗方法[10]。

综上所述,CXCR3是一种重要的G蛋白偶联受体,参与调节T细胞迁移和活化,在多种免疫和炎症反应中发挥着关键作用。CXCR3与多种疾病的发生和发展密切相关,包括结肠炎症、特应性皮炎、局限性硬皮病、白斑病、糖尿病、子宫内膜腺癌、狼疮性肾炎和神经病理性疼痛等。CXCR3的研究有助于深入理解免疫和炎症反应的机制,为相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Luoma, Adrienne M, Suo, Shengbao, Williams, Hannah L, Yuan, Guo-Cheng, Wucherpfennig, Kai W. 2020. Molecular Pathways of Colon Inflammation Induced by Cancer Immunotherapy. In Cell, 182, 655-671.e22. doi:10.1016/j.cell.2020.06.001. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32603654/
2. Walsh, Carolyn M, Hill, Rose Z, Schwendinger-Schreck, Jamie, Barton, Gregory M, Bautista, Diana M. 2019. Neutrophils promote CXCR3-dependent itch in the development of atopic dermatitis. In eLife, 8, . doi:10.7554/eLife.48448. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31631836/
3. Yin, Mingli, Shen, Zhongyang, Yang, Liu, Zheng, Weiping, Song, Hongli. 2019. Protective effects of CXCR3/HO‑1 gene‑modified BMMSCs on damaged intestinal epithelial cells: Role of the p38‑MAPK signaling pathway. In International journal of molecular medicine, 43, 2086-2102. doi:10.3892/ijmm.2019.4120. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30864680/
4. Werner, Giffin, Sanyal, Anwesha, Mirizio, Emily, Jacobe, Heidi, Torok, Kathryn S. 2023. Single-Cell Transcriptome Analysis Identifies Subclusters with Inflammatory Fibroblast Responses in Localized Scleroderma. In International journal of molecular sciences, 24, . doi:10.3390/ijms24129796. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37372943/
5. Rashighi, Mehdi, Agarwal, Priti, Richmond, Jillian M, Luster, Andrew D, Harris, John E. . CXCL10 is critical for the progression and maintenance of depigmentation in a mouse model of vitiligo. In Science translational medicine, 6, 223ra23. doi:10.1126/scitranslmed.3007811. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24523323/
6. Fallahi, Poupak, Corrado, Alda, Di Domenicantonio, Andrea, Antonelli, Alessandro, Ferrari, Silvia Martina. . CXCR3, CXCR5, CXCR6, and CXCR7 in Diabetes. In Current drug targets, 17, 515-9. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25547908/
7. Dong, He, Sun, Mengzi, Li, Hua, Yue, Ying. 2023. CXCR3 predicts the prognosis of endometrial adenocarcinoma. In BMC medical genomics, 16, 20. doi:10.1186/s12920-023-01451-9. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36750966/
8. Lu, Jianxin, Kwan, Bonnie Ching-Ha, Lai, Fernand Mac-Moune, Li, Philip Kam-Tao, Szeto, Cheuk-Chun. . Gene expression of TWEAK/Fn14 and IP-10/CXCR3 in glomerulus and tubulointerstitium of patients with lupus nephritis. In Nephrology (Carlton, Vic.), 16, 426-32. doi:10.1111/j.1440-1797.2011.01449.x. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21303425/
9. Valdés, Natalia, Cortés, Marcos, Barraza, Felipe, Reyes-López, Felipe E, Imarai, Mónica. 2022. CXCL9-11 chemokines and CXCR3 receptor in teleost fish species. In Fish and shellfish immunology reports, 3, 100068. doi:10.1016/j.fsirep.2022.100068. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36569039/
10. Jiang, Bao-Chun, He, Li-Na, Wu, Xiao-Bo, Gu, Jun, Gao, Yong-Jing. . Promoted Interaction of C/EBPα with Demethylated Cxcr3 Gene Promoter Contributes to Neuropathic Pain in Mice. In The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience, 37, 685-700. doi:10.1523/JNEUROSCI.2262-16.2016. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28100749/