Atoh1-KO 基因敲除小鼠

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复苏/繁育服务
产品名称

Atoh1-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-01157

品系全称

C57BL/6JCya-Atoh1em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-11921-Atoh1-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Atoh1-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-01157) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
atonal bHLH transcription factor 1
基因别称
Hath1,MATH-1,Math1,bHLHa14
染色体号
Chr 6 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_007500 | Ensembl: ENSMUST00000101351
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 1
敲除长度
~2.6 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:104654Homozygotes for targeted null mutations exhibit a decreased cerebellum without folia, and lack cerebellar granule neurons, inner-ear hair cells, D1 interneurons, and goblet, enteroendocrine, and Paneth cells. Mutants fail to breathe properly and die at birth.
Atoh1,也称为Math1,是一种重要的基本螺旋-环-螺旋(bHLH)转录因子,在听觉毛细胞(HC)的早期内耳发育中起着关键作用。Atoh1的活性在特定发育阶段足以驱动内耳HC的分化。Atoh1的研究揭示了其在HC再生和治疗听力损失中的潜力。

Atoh1在内耳发育中的功能受到多种因素的调节。一些基因突变,如Pou4f3、Barhl1和Gfi1,也会导致HC的丧失。HC的发育和维持还依赖于其他基因(Sox2、Eya1、Gata3、Pax2)的表达。一些基因,如Jag1,当误表达时可以诱导HC的形成,而Lmo4的敲除也会导致HC的增加。在内耳,Atoh1不仅表达在HC中,还表达在一些支持细胞和神经元中,这些细胞不会分化成HC。神经元的Atoh1表达可能被Neurod1抑制,而内柱细胞的Atoh1表达可能被过多的Hes/Hey因子抑制。细胞周期退出分析表明,HC的细胞周期退出呈现从顶到底的进展,而Atoh1的表达从底部向顶部进展,与细胞周期退出的时间相对延迟。大多数HC在Atoh1表达之前退出细胞周期,因此被定义为前体细胞。Atoh1是一种强大的分化因子,但它只能在耳朵中以及在与其他因素共表达时才能分化并维持HC。上游因子对于调节Atoh1的表达水平和持续时间至关重要,而下游,与其他因素共激活,将定义Atoh1作用的背景。这些发现需要被考虑在内,并且需要设计超越简单的Atoh1表达的方法,以生成器官耳蜗中HC类型的径向和纵向变化,以实现正常的器官功能[1]。

基因治疗是一种很有前景的治疗听力损失的方法。腺相关病毒(AAV)载体介导的基因治疗已被批准用于治疗一种罕见的遗传性眼病。AAV载体可以安全有效地将基因递送到内耳细胞。AAV-ie是一种AAV变体,可以高效地将基因递送到小鼠内耳的耳蜗支持细胞(SCs)中。AAV-ie介导的Atoh1基因转移可以将许多SCs转分化成新的HC。这些结果表明,AAV-ie是内耳基因治疗和HC再生机制研究的有效工具[2]。

AAV-ie-K558R是一种AAV-ie突变体,可以高效地将基因递送到新生小鼠耳蜗的HC和SCs中。AAV-ie-K558R是一种安全的载体,没有明显的听力系统缺陷。AAV-ie-K558R可以部分恢复Prestin KO小鼠的听力损失,并将Atoh1递送到耳蜗支持细胞中以生成HC样细胞。这些结果表明,AAV-ie-K558R在治疗由HC死亡引起的听力损失方面具有临床潜力[3]。

Atoh1在HC分化中的作用受到多种转录因子的调节。Gfi1和Pou4f3可能对Atoh1在内耳中作为机械感觉细胞命运决定因子的功能起着重要作用。这些转录因子可能通过与其他转录因子相互作用来调节Atoh1的功能,从而影响HC的分化[4]。

除了在耳朵中的作用,Atoh1还在其他器官的发育中发挥作用。例如,Atoh1在肠道的发育中起着重要作用。LKB1是一种肿瘤抑制因子和激酶,调节干细胞和细胞代谢。LKB1通过PDK4和能量代谢抑制ATOH1的转录,从而调节肠道干细胞的命运。LKB1缺失会导致ISCs中ATOH1 mRNA水平的升高,并导致ISCs向分泌细胞谱系的分化增加[5]。

总之,Atoh1是一种重要的bHLH转录因子,在HC的早期内耳发育中起着关键作用。Atoh1的活性在特定发育阶段足以驱动内耳HC的分化。Atoh1的功能受到多种因素的调节,包括其他转录因子和能量代谢。基因治疗是一种很有前景的治疗听力损失的方法,AAV载体可以安全有效地将Atoh1递送到内耳细胞中。Atoh1的研究揭示了其在HC再生和治疗听力损失中的潜力,为听力损失的治疗提供了新的思路和策略。

参考文献:
1. Richardson, Rachael T, Atkinson, Patrick J. 2015. Atoh1 gene therapy in the cochlea for hair cell regeneration. In Expert opinion on biological therapy, 15, 417-30. doi:10.1517/14712598.2015.1009889. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25648190/
2. Tan, Fangzhi, Chu, Cenfeng, Qi, Jieyu, Chai, Renjie, Zhong, Guisheng. 2019. AAV-ie enables safe and efficient gene transfer to inner ear cells. In Nature communications, 10, 3733. doi:10.1038/s41467-019-11687-8. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31427575/
3. Višnjar, Tanja, Maver, Aleš, Writzl, Karin, Pečarič Meglič, Nuška, Peterlin, Borut. 2022. Biallelic ATOH1 Gene Variant in Siblings With Pontocerebellar Hypoplasia, Developmental Delay, and Hearing Loss. In Neurology. Genetics, 8, e677. doi:10.1212/NXG.0000000000000677. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35518571/
4. Jahan, Israt, Pan, Ning, Fritzsch, Bernd. 2015. Opportunities and limits of the one gene approach: the ability of Atoh1 to differentiate and maintain hair cells depends on the molecular context. In Frontiers in cellular neuroscience, 9, 26. doi:10.3389/fncel.2015.00026. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25698932/
5. Gao, Yajing, Yan, Yan, Tripathi, Sushil, Katajisto, Pekka, Mäkelä, Tomi P. 2020. LKB1 Represses ATOH1 via PDK4 and Energy Metabolism and Regulates Intestinal Stem Cell Fate. In Gastroenterology, 158, 1389-1401.e10. doi:10.1053/j.gastro.2019.12.033. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31930988/