Dusp22-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Dusp22-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-00393

品系全称

C57BL/6NCya-Dusp22em1/Cya

品系背景

C57BL/6NCya

品系编号

KOCMP-105352-Dusp22-B6N-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Dusp22-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-00393) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
dual specificity phosphatase 22
基因别称
JKAP,JSP1,LMW-DSP2,MKPX
染色体号
Chr 13 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001037955 | Ensembl: ENSMUST00000095914
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 3
敲除长度
~0.1 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1915926Mice homozygous for a null allele develop inflammation and autoimmunity as they age, are more susceptible to experimental autoimmune encephalomyelitis, exhibit enhanced T-cell mediated and reduced B-cell mediated immune responses.
DUSP22,也称为双特异性磷酸酶22,是一种在多种组织中表达的蛋白,它在免疫反应和肿瘤生长中发挥着重要的生物学功能。DUSP22属于双特异性磷酸酶家族,这类磷酸酶可以去除底物蛋白上的丝氨酸/苏氨酸或酪氨酸残基的磷酸基团,从而调控这些蛋白的活性。DUSP22在细胞信号传导、细胞周期调控和细胞凋亡等过程中发挥着重要作用。

在非酒精性脂肪性肝病(NAFLD)和非酒精性脂肪性肝炎(NASH)的发病机制中,DUSP22发挥了重要的抑制作用。研究发现,在人类和小鼠的脂肪肝组织中,DUSP22的表达显著降低,这可能是由于活性氧(ROS)的产生介导的。在肝脏特异性地删除DUSP22基因,会加剧肝脏的脂肪沉积、炎症反应和纤维化,从而促进NASH和与NAFLD相关的肝细胞癌(HCC)的进展。相反,通过转基因过表达、慢病毒或腺相关病毒(AAV)介导的DUSP22基因治疗,可以显著抑制小鼠的NASH相关表型和HCC的发展。机制研究表明,DUSP22可以直接与焦点粘附激酶(FAK)相互作用,并抑制其在Tyr397(Y397)和Y576+Y577位点的磷酸化,进而阻止下游的细胞外信号调节激酶1/2(ERK1/2)和核因子-κB(NF-κB)级联反应的激活。DUSP22与FAK的结合以及对FAK的去磷酸化对于DUSP22改善NASH进展是必不可少的[1]。

DUSP22还在前列腺癌(PCa)的发生发展中发挥着重要的抑制作用。研究发现,DUSP22在PCa组织中的表达低于正常前列腺组织,DUSP22表达的改变与PCa患者的无进展生存期和疾病无进展生存期缩短相关。在LNCaP、PC3和C4-2B PCa细胞中,外源性DUSP22表达抑制了细胞增殖和集落形成,支持了DUSP22在PCa细胞中的生长抑制功能。DUSP22表达显著减弱了表皮生长因子(EGF)受体(EGFR)及其下游ERK1/2信号通路的活性,这可能是通过去磷酸化实现的。然而,DUSP22未能抑制CWR22Rv1和DU145细胞中升高的磷酸化ERK1/2(p-ERK1/2)水平细胞的生长。在DUSP22的第58位丝氨酸到丙氨酸突变,一个潜在的ERK1/2靶向磷酸化位点,足以抑制CWR22Rv1细胞中升高的p-ERK1/2水平的生长,这表明DUSP22与ERK1/2之间存在相互拮抗的关系,这取决于磷酸化状态。研究发现,DUSP22可以通过磷酸酶依赖性途径抑制前列腺特异性抗原基因表达,这表明DUSP22是PCa细胞中雄激素受体(AR)的重要调节因子。机制上,DUSP22可以与AR作为调节伴侣相互作用,并干扰EGF诱导的AR在Tyr534位点的磷酸化,这表明DUSP22通过去磷酸化在PCa细胞中作为EGFR和AR依赖性信号通路的重要抑制因子。这些发现表明,PCa细胞中DUSP22功能的丧失导致EGFR-ERKs和AR信号通路的异常激活,并最终导致PCa的进展,支持了利用DUSP22作为PCa治疗的新型疗法的潜力[2]。

DUSP22基因重排是系统性间变性大细胞淋巴瘤(S-ALCL)、原发性皮肤间变性大细胞淋巴瘤(C-ALCL)和淋巴瘤样丘疹病(LyP)的常见遗传改变。然而,DUSP22重排并不是ALCLs特有的,也可能在EATL中作为次要异常发生,并扩大了DUSP22重排的皮肤CD30+淋巴增生性疾病的鉴别诊断[3]。在周围T细胞淋巴瘤(PTCL)亚型中,DUSP22基因的单等位基因6p25.3重排与基因沉默相关,这表明DUSP22可能具有肿瘤抑制功能。研究发现,恢复DUSP22缺乏的恶性T细胞中生理上占主导地位的亚型的表达,可以抑制细胞增殖,刺激细胞凋亡,并损害软琼脂集落形成和肿瘤发生能力,这表明DUSP22在PTCL中表现出肿瘤抑制基因的特性[4]。

DUSP22还可以通过直接去磷酸化AKT抑制肿瘤进展。研究发现,在非小细胞肺癌(NSCLC)细胞系和组织中,DUSP22的表达显著下调。DUSP22的表达降低与肺癌患者的较差总体生存率相关。DUSP22对A549和H1299细胞的细胞活力和迁移能力具有抑制作用,这伴随着AKT和p38磷酸化的减少。机制上,DUSP22的磷酸酶结构域与AKT相互作用,导致AKT在S473和T308位点的去磷酸化。这些发现提供了有力的证据,表明DUSP22可以直接与AKT相互作用,导致AKT的去磷酸化,最终抑制肺癌细胞的增殖和迁移。此外,这些结果还强调了将DUSP22作为NSCLC预后标志物的临床前理论基础[5]。

DUSP22重排的皮肤CD30阳性T细胞淋巴增生性疾病和成人T细胞白血病/淋巴瘤(ATLL)经常共享LEF1+/TIA1-免疫表型。研究发现,DUSP22重排的C-ALCL/LyP中LEF1表达率低于主要关注S-ALCL的先前报道。此外,还观察到大多数ATLL病例也表达LEF1,这表明LEF1+/TIA1-免疫表型并不能区分DUSP22重排的C-ALCL/LyP和ATLL[6]。

DUSP22易位的T细胞淋巴瘤的皮损表现为斑块/斑块型蕈样肉芽肿。研究发现,DUSP22-IRF4基因重排导致DUSP22下调,这是T细胞淋巴瘤发生中的假定肿瘤抑制因子。这已经在一些原发性皮肤和系统性间变性大细胞淋巴瘤、淋巴瘤样丘疹病和转化性蕈样肉芽肿的病例中描述。这些病例扩大了DUSP22重排淋巴瘤的范围,包括没有大细胞转化的蕈样肉芽肿样表现[7]。

DUSP22/LMW-DSP2通过去磷酸化Ser-118调节雌激素受体-α(ERα)介导的信号传导。研究发现,β-雌二醇(E2)诱导ERα阳性乳腺癌细胞中DUSP22 mRNA的表达,而E2诱导的ERα的磷酸化和激活被DUSP22过表达抑制,而不是催化无活性突变体。此外,小干扰RNA介导的DUSP22表达的减少增强了ERα介导的转录和内源性基因表达。事实上,DUSP22在体内与ERα相关联,并且在ERα阳性乳腺癌T47D细胞中,两种内源性蛋白相互作用。这些结果强烈表明,DUSP22作为ERα介导的信号通路的负调节因子[8]。

DUSP22重排和LEF1表达模式在CD30+皮肤T细胞淋巴瘤(CTCLs)中的临床意义尚不清楚。研究发现,DUSP22重排在日本CD30+ CTCLs中相对特异于pcALCL。尽管LEF1表达模式与pcALCL中的DUSP22重排无关,但如果没有LEF1表达,则没有重排。该研究证实,T3期和下肢受累与OS和DSS降低显著相关。下肢受累的存在与否应包括在未来T期亚分类中[9]。

在间变性大细胞淋巴瘤(ALCL)中,DUSP22重排与趋化因子受体基因CCR8的表达相关。研究发现,与没有重排的病例相比,DUSP22重排的ALCL中CCR8表达更高。CCR8表达与皮肤表现、皮肤活检部位或疾病过程中的皮肤受累无关。这些发现表明,ALCL中CCR8的表达与DUSP22重排的存在更密切相关,而不是皮肤受累,并且CCR8的功能可能超出了其在疾病中的皮肤归巢特性[10]。

综上所述,DUSP22在多种疾病中发挥着重要的抑制作用,包括NAFLD、NASH、PCa、PTCL和NSCLC等。DUSP22的抑制功能可能与其对下游信号通路的调控有关,例如FAK、EGFR-ERKs和AR信号通路等。此外,DUSP22的重排与某些淋巴瘤的发生发展也密切相关。因此,DUSP22可能成为治疗这些疾病的重要靶点。

参考文献:
1. Ge, Chenxu, Tan, Jun, Dai, Xianling, Wang, Bochu, Xu, Minxuan. 2022. Hepatocyte phosphatase DUSP22 mitigates NASH-HCC progression by targeting FAK. In Nature communications, 13, 5945. doi:10.1038/s41467-022-33493-5. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36209205/
2. Lin, Hsiu-Ping, Ho, Hui-Min, Chang, Cheng-Wei, Tan, Tse-Hua, Lin, Wen-Jye. 2019. DUSP22 suppresses prostate cancer proliferation by targeting the EGFR-AR axis. In FASEB journal : official publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology, 33, 14653-14667. doi:10.1096/fj.201802558RR. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31693867/
3. Bisig, Bettina, Cairoli, Anne, Gaide, Olivier, Guenova, Emmanuella, de Leval, Laurence. 2022. Cutaneous presentation of enteropathy-associated T-cell lymphoma masquerading as a DUSP22-rearranged CD30+ lymphoproliferation. In Virchows Archiv : an international journal of pathology, 481, 653-657. doi:10.1007/s00428-022-03309-4. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35366115/
4. Mélard, Pierre, Idrissi, Yamina, Andrique, Laetitia, Merlio, Jean-Philippe, Cappellen, David. . Molecular alterations and tumor suppressive function of the DUSP22 (Dual Specificity Phosphatase 22) gene in peripheral T-cell lymphoma subtypes. In Oncotarget, 7, 68734-68748. doi:10.18632/oncotarget.11930. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27626696/
5. Chen, Jingying, Kang, Guoqi, Lei, Weidong, Wang, Peiling, Li, Xia. 2023. DUSP22 suppresses tumor progression by directly dephosphorylating AKT in non-small cell lung cancer. In Molecular carcinogenesis, 63, 314-325. doi:10.1002/mc.23654. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37937915/
6. Chen, Bo-Jung, Hsieh, Shu-Min, Hsieh, Tsung-Han, Jhuang, Jie-Yang, Kao, Yu-Chien. 2024. DUSP22-rearranged primary cutaneous CD30-positive T-cell lymphoproliferative disorders and adult T-cell leukemia/lymphoma frequently share the LEF1+/TIA1- immunophenotype. In Human pathology, 150, 58-66. doi:10.1016/j.humpath.2024.07.002. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38971328/
7. Runge, John S, Novice, Madison L, Briones, Naomi, Tejasvi, Trilokraj, Hristov, Alexandra C. 2021. Patch/plaque mycosis-fungoides-like presentations of DUSP22-translocated T-cell lymphomas. In Journal of cutaneous pathology, 49, 299-305. doi:10.1111/cup.14156. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34699105/
8. Sekine, Y, Ikeda, O, Hayakawa, Y, Sugiyama, K, Matsuda, T. 2007. DUSP22/LMW-DSP2 regulates estrogen receptor-alpha-mediated signaling through dephosphorylation of Ser-118. In Oncogene, 26, 6038-49. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/17384676/
9. Miyagaki, Tomomitsu, Inoue, Norihito, Kamijo, Hiroaki, Takeuchi, Kengo, Sugaya, Makoto. . Prognostic factors for primary cutaneous anaplastic large-cell lymphoma: a multicentre retrospective study from Japan. In The British journal of dermatology, 189, 612-620. doi:10.1093/bjd/ljad266. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37539944/
10. Xing, Xiaoming, Flotte, Thomas J, Law, Mark E, Dogan, Ahmet, Feldman, Andrew L. . Expression of the chemokine receptor gene, CCR8, is associated With DUSP22 rearrangements in anaplastic large cell lymphoma. In Applied immunohistochemistry & molecular morphology : AIMM, 23, 580-9. doi:10.1097/PAI.0000000000000118. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25390351/