Gstt3-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Gstt3-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-00288

品系全称

C57BL/6JCya-Gstt3em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-103140-Gstt3-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Gstt3-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-00288) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
glutathione S-transferase, theta 3
基因别称
-
染色体号
Chr 10 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_133994.3 | Ensembl: ENSMUST00000001715
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 2~4
敲除长度
~2318 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Gstt3是一种属于Theta类的谷胱甘肽转移酶(GST)基因。GST是一类重要的酶,参与生物体内多种代谢过程,包括解毒、抗氧化应激和调节细胞信号传导等。GST基因家族在人类和其他生物中具有高度的多样性,不同的GST同工酶在组织分布和底物特异性方面存在差异。Gstt3基因编码的GST同工酶主要在肝脏中表达,也在肾脏和睾丸中有所表达[3]。

GST同工酶在生物体内发挥着多种生理功能。首先,GST在解毒过程中发挥着重要作用。它可以催化谷胱甘肽与各种亲电性物质(如药物、环境污染物和代谢产物)的结合,形成水溶性复合物,从而促进这些有害物质的排泄。此外,GST还可以催化氧化还原反应,参与抗氧化应激和调节细胞信号传导。例如,GST可以与活性氧(ROS)反应,降低ROS的毒性,保护细胞免受氧化损伤。

Gstt3基因在多种生物过程中发挥着重要作用。例如,在草类植物Alopecurus aequalis中,Gstt3基因的表达与对草甘膦的抗性相关。研究表明,草甘膦抗性植物中的Gstt3基因表达水平显著升高,表明Gstt3可能在草甘膦的代谢和解毒过程中发挥重要作用[1]。此外,Gstt3基因的表达还与昆虫对拟除虫菊酯的抗性相关。研究发现,拟除虫菊酯抗性蚊虫中Gstt3基因的表达水平显著升高,表明Gstt3可能参与拟除虫菊酯的代谢和解毒过程[2]。

除了在植物和昆虫中发挥作用,Gstt3基因在哺乳动物中也具有重要功能。研究表明,Gstt3基因的表达水平与个体对药物诱导的肝毒性的易感性相关。研究发现,对D-半乳糖胺诱导的肝毒性易感动物中Gstt3基因的表达水平显著降低,而对D-半乳糖胺诱导的肝毒性具有抵抗力的动物中Gstt3基因的表达水平显著升高[5]。这表明Gstt3基因的表达水平可能与肝脏解毒功能相关,进而影响个体对药物诱导的肝毒性的易感性。

Gstt3基因的表达还受到多种因素的影响。例如,高脂肪饮食可以导致非酒精性脂肪肝(NAFLD)的发生,而NAFLD会影响肝脏中基因的表达。研究发现,高脂肪饮食可以导致NAFLD小鼠中Gstt3基因的表达水平显著下调,表明Gstt3基因可能参与NAFLD的发生和发展[4]。此外,Gstt3基因的表达还受到抗氧化剂的影响。研究发现,膳食中的黄酮类化合物槲皮素可以显著上调大鼠肝脏中Gstt3基因的表达水平,表明槲皮素可能通过上调Gstt3基因的表达来发挥抗氧化和解毒作用[6]。

综上所述,Gstt3基因是一种重要的Theta类谷胱甘肽转移酶基因,参与生物体内多种代谢过程,包括解毒、抗氧化应激和调节细胞信号传导等。Gstt3基因在植物、昆虫和哺乳动物中发挥着重要作用,其表达水平与个体对药物诱导的肝毒性的易感性相关。Gstt3基因的表达还受到多种因素的影响,如高脂肪饮食和抗氧化剂等。深入研究Gstt3基因的功能和调控机制,有助于我们更好地理解生物体内GST同工酶的作用,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Zhan, You, Liu, Haozhe, Cao, Ziheng, Bai, Lianyang, Pan, Lang. 2022. Comparative analysis of fungal communities between herbicide-resistant and -susceptible Alopecurus aequalis. In Frontiers in cellular and infection microbiology, 12, 1094853. doi:10.3389/fcimb.2022.1094853. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36619755/
2. Ishak, Intan H, Riveron, Jacob M, Ibrahim, Sulaiman S, Irving, Helen, Wondji, Charles S. 2016. The Cytochrome P450 gene CYP6P12 confers pyrethroid resistance in kdr-free Malaysian populations of the dengue vector Aedes albopictus. In Scientific reports, 6, 24707. doi:10.1038/srep24707. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27094778/
3. Coggan, Marjorie, Flanagan, Jack U, Parker, Michael W, Pearson, William R, Board, Philip G. . Identification and characterization of GSTT3, a third murine Theta class glutathione transferase. In The Biochemical journal, 366, 323-32. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12038961/
4. Wang, Chunhua, Tao, Qimeng, Wang, Xinghe, Wang, Xiurong, Zhang, Xiuying. 2016. Impact of high-fat diet on liver genes expression profiles in mice model of nonalcoholic fatty liver disease. In Environmental toxicology and pharmacology, 45, 52-62. doi:10.1016/j.etap.2016.05.014. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27262986/
5. Yun, Jun-Won, Kim, Chae-Wook, Bae, Il-Hong, Lim, Kyung-Min, Kang, Kyung-Sun. 2009. Expression levels of pituitary tumor transforming 1 and glutathione-S-transferase theta 3 are associated with the individual susceptibility to D-galactosamine-induced hepatotoxicity. In Toxicology and applied pharmacology, 242, 91-9. doi:10.1016/j.taap.2009.09.017. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19800905/
6. Odbayar, Tseye-Oidov, Kimura, Toshinori, Tsushida, Tojiro, Ide, Takashi. 2009. Isoenzyme-specific up-regulation of glutathione transferase and aldo-keto reductase mRNA expression by dietary quercetin in rat liver. In Molecular and cellular biochemistry, 325, 121-30. doi:10.1007/s11010-009-0026-4. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19191009/