Septin10-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Septin10-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-00285

品系全称

C57BL/6JCya-Septin10em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-103080-Septin10-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Septin10-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-00285) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
septin 10
基因别称
4921515A04Rik,9430099J10Rik,Sept10
染色体号
Chr 10 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001024910.4 | Ensembl: ENSMUST00000220156
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 2~3
敲除长度
~650 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
SEPTIN10,也称为Septin 10,是一种重要的细胞骨架蛋白,属于Septin家族。Septin家族是一类进化上保守的GTP结合蛋白,参与多种细胞生物学过程,包括囊泡运输、细胞凋亡、细胞骨架重塑、感染、神经退行性疾病和肿瘤发生等。SEPTIN10蛋白具有GTP酶活性,可以结合GTP并发挥酶活性。SEPTIN10基因位于人类染色体8q11.2-12,在正常组织中广泛表达,但在心脏、肾脏、胎盘、骨骼肌、肝脏和肺等组织中表达较高。此外,SEPTIN10在多种肿瘤细胞系中也存在表达[6]。

SEPTIN10在多种疾病中发挥重要作用。例如,在肝细胞癌(HCC)中,SEPTIN10的表达与患者的不良生存率和血管侵袭性相关。研究发现,SEPTIN10可以通过与肌动蛋白和微管蛋白相互作用,促进YAP/TAZ依赖性细胞存活、迁移和侵袭。SEPTIN10通过与CAPZA2结合,支持肌动蛋白应力纤维的形成和细胞内张力,同时通过阻断MAP4功能抑制微管聚合。这种功能上的拮抗作用对于细胞骨架依赖性反馈激活YAP/TAZ至关重要,因为微管解聚会诱导肌动蛋白应力纤维的形成,进而激活YAP/TAZ活性。此外,SEPTIN10的缺失会消除微管破坏后肌动蛋白应力纤维的形成。因此,YAP/TAZ靶基因SEPTIN10控制肌动蛋白和微管丝之间的动态相互作用,通过反馈影响HCC细胞中的Hippo通路活性,从而对致癌信号传导和癌细胞生物学产生重要影响[1]。

SEPTIN10的表达与慢性淋巴细胞白血病(CLL)患者的预后相关。研究发现,SEPTIN10的表达与IGHV突变状态相关,并且是CLL患者预后的生物标志物。SEPTIN10的表达与CLL患者的总生存期和至治疗时间相关。此外,SEPTIN10的表达与CLL患者的治疗反应、转化为Richter综合征等临床特征相关。因此,SEPTIN10可以作为CLL患者的预后标志物,并与可靶向的细胞信号传导途径相关[3,4]。

SEPTIN10的表达与肿瘤细胞对某些药物的敏感性相关。研究发现,SEPTIN10的表达与肿瘤细胞对微管靶向药物,如紫杉醇和艾瑞布林,的敏感性相关。SEPTIN10的表达水平与肿瘤细胞对紫杉醇的敏感性呈正相关,而与艾瑞布林的敏感性呈负相关。此外,SEPTIN10的表达水平与肿瘤细胞对微管解聚剂的敏感性呈负相关。因此,SEPTIN10可以作为预测肿瘤细胞对微管靶向药物敏感性的生物标志物,并为个体化治疗提供参考[2,5]。

综上所述,SEPTIN10是一种重要的细胞骨架蛋白,参与多种细胞生物学过程,并在多种疾病中发挥重要作用。SEPTIN10的表达与HCC、CLL患者的预后相关,并与肿瘤细胞对某些药物的敏感性相关。SEPTIN10的研究有助于深入理解细胞骨架蛋白在疾病发生发展中的作用机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Weiler, Sofia M E, Bissinger, Michaela, Rose, Fabian, Schirmacher, Peter, Breuhahn, Kai. 2024. SEPTIN10-mediated crosstalk between cytoskeletal networks controls mechanotransduction and oncogenic YAP/TAZ signaling. In Cancer letters, 584, 216637. doi:10.1016/j.canlet.2024.216637. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38242197/
2. Sachdev, Pallavi, Ronen, Roy, Dutkowski, Janusz, Littlefield, Bruce A. 2022. Systematic Analysis of Genetic and Pathway Determinants of Eribulin Sensitivity across 100 Human Cancer Cell Lines from the Cancer Cell Line Encyclopedia (CCLE). In Cancers, 14, . doi:10.3390/cancers14184532. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36139690/
3. Guo, Chao, Gao, Ya-Yue, Ju, Qian-Qian, Gong, Ming, Li, Zhen-Ling. 2021. HELQ and EGR3 expression correlate with IGHV mutation status and prognosis in chronic lymphocytic leukemia. In Journal of translational medicine, 19, 42. doi:10.1186/s12967-021-02708-6. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33485349/
4. Benedetti, D, Bomben, R, Dal-Bo, M, Gaidano, G, Gattei, V. 2007. Are surrogates of IGHV gene mutational status useful in B-cell chronic lymphocytic leukemia? The example of Septin-10. In Leukemia, 22, 224-6. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/17657217/
5. Xu, Mingli, Takanashi, Masakatsu, Oikawa, Kosuke, Ohyashiki, Junko, Kuroda, Masahiko. 2012. Identification of a novel role of Septin 10 in paclitaxel-resistance in cancers through a functional genomics screen. In Cancer science, 103, 821-7. doi:10.1111/j.1349-7006.2012.02221.x. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22320903/
6. Sui, Lili, Zhang, Weiping, Liu, Qiuyan, Yu, Min, Cao, Xuetao. . Cloning and functional characterization of human septin 10, a novel member of septin family cloned from dendritic cells. In Biochemical and biophysical research communications, 304, 393-8. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12711328/