Rita1-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Rita1-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-00173

品系全称

C57BL/6JCya-Rita1em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-100764-Rita1-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Rita1-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-00173) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
RBPJ interacting and tubulin associated 1
基因别称
1110008J03Rik,Rita
染色体号
Chr 5 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_133908.1 | Ensembl: ENSMUST00000177800
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 4
敲除长度
~490 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
RITA1(RBPJ interacting and tubulin associated 1)是一种参与多种生物学过程的基因,其在不同物种中具有不同的功能。在人类中,RITA1与膀胱癌细胞的生长密切相关。研究发现,RITA1在膀胱癌细胞中异常高表达,并与患者的预后不良相关。RITA1通过招募TRIM25(tripartite motif containing 25)蛋白,促进RBPJ(recombination signal binding protein for immunoglobulin kappa J region)的泛素化,进而加速其通过蛋白酶体降解。RBPJ是Notch信号通路中的关键转录因子,其降解导致Notch1下游靶基因的转录抑制,从而促进膀胱癌细胞的生长[1]。

除了在人类膀胱癌中的重要作用外,RITA1在植物中也具有独特的功能。例如,水稻中的RITA-1是一种bZIP转录激活因子,在种子发育过程中高度表达。RITA-1具有广泛的结合特异性,能够结合ACGT基序,包括A-、C-和G-box,但不是T-box。通过凝胶迁移率变动分析,研究者发现RITA-1具有高亲和力结合A-、C-和G-box位点。此外,RITA-1能够在水稻原生质体中激活含有高亲和力RITA-1结合位点的报告基因。这些结果表明,RITA-1可能在水稻基因表达调控中发挥作用,尤其是在种子发育过程中[5]。

在牛的遗传研究中,RITA1也与复杂性状的遗传变异相关。通过全基因组关联研究(GWAS)和多组织基因表达研究,研究者发现RITA1与牛的剩余饲料摄入量(RFI)相关。在GWAS中,研究者鉴定了与RFI相关的78个SNPs,分布在六个QTL上。此外,在1Mb窗口中,研究者发现149个基因,其中RITA1与RFI的表达显著相关。这些结果表明,RITA1可能在牛的RFI性状中发挥重要作用[2]。

在植物中,RITA1与其他bZIP蛋白一起,被归类为植物bZIP家族之一。这些蛋白在植物生长发育和胁迫响应中发挥着重要作用。例如,玉米中的Opaque2(O2)是一种bZIP蛋白,已被描述为α-和β-谷蛋白基因的转录激活因子。研究者从水稻中分离并鉴定了Opaque2同源基因,发现水稻O2蛋白与玉米O2蛋白在氨基酸序列和表达模式上相似。这些结果表明,植物bZIP蛋白在调控种子储存蛋白基因表达中发挥着重要作用[3]。

除了在植物中的功能外,RITA1在Notch信号通路中也是一种新的调节因子。RITA1是一种高度保守的36kDa蛋白,能够与微管蛋白结合并在细胞质和细胞核之间快速穿梭。RITA1通过将RBPJ/CBF-1从细胞核中输出,抑制Notch信号通路。研究表明,RITA1能够逆转Notch信号通路引起的神经发生减少,并下调Notch介导的转录。这些结果表明,RITA1是一种新的Notch信号通路负调节因子,通过控制细胞核中RBPJ/CBF-1的水平来调控Notch信号通路[4]。

综上所述,RITA1是一种多功能的基因,在不同物种中具有不同的功能。在人类中,RITA1与膀胱癌细胞的生长密切相关,可能成为膀胱癌治疗的潜在靶点。在植物中,RITA1参与种子储存蛋白基因表达的调控,在种子发育过程中发挥重要作用。在牛的遗传研究中,RITA1与剩余饲料摄入量相关,可能影响牛的生产性能。RITA1的研究有助于深入理解其在不同生物学过程中的作用,为疾病的治疗和农业生产提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Tang, Huancheng, Li, Xiangdong, Jiang, Lijuan, Zheng, Xianchong, Liu, Zhuowei. 2022. RITA1 drives the growth of bladder cancer cells by recruiting TRIM25 to facilitate the proteasomal degradation of RBPJ. In Cancer science, 113, 3071-3084. doi:10.1111/cas.15459. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35701858/
2. de Las Heras-Saldana, Sara, Clark, Samuel A, Duijvesteijn, Naomi, van der Werf, Julius H J, Chen, Yizhou. 2019. Combining information from genome-wide association and multi-tissue gene expression studies to elucidate factors underlying genetic variation for residual feed intake in Australian Angus cattle. In BMC genomics, 20, 939. doi:10.1186/s12864-019-6270-4. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31810463/
3. Vettore, A L, Yunes, J A, Cord Neto, G, Arruda, P, Leite, A. . The molecular and functional characterization of an Opaque2 homologue gene from Coix and a new classification of plant bZIP proteins. In Plant molecular biology, 36, 249-63. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9484437/
4. Wacker, Stephan Armin, Alvarado, Cristobal, von Wichert, Götz, Knöchel, Walter, Oswald, Franz. 2010. RITA, a novel modulator of Notch signalling, acts via nuclear export of RBP-J. In The EMBO journal, 30, 43-56. doi:10.1038/emboj.2010.289. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21102556/
5. Izawa, T, Foster, R, Nakajima, M, Shimamoto, K, Chua, N H. . The rice bZIP transcriptional activator RITA-1 is highly expressed during seed development. In The Plant cell, 6, 1277-87. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/7919992/