Igsf8-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Igsf8-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-19820

品系全称

C57BL/6JCya-Igsf8em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-140559-Igsf8-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Igsf8-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-19820) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
immunoglobulin superfamily, member 8
基因别称
ESTM34,EWI-2,KCT-4,PGRL
染色体号
Chr 1 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_080419 | Ensembl: ENSMUST00000039506
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 3~6
敲除长度
~2.4 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:2154090Mice homozygous for a knock-out allele exhibit normal female fertility with no detectable fertilization defects in vitro or in vivo.
基因Igsf8,即免疫球蛋白超家族成员8,是一种新近发现的免疫球蛋白家族蛋白成员。该基因编码的蛋白主要在细胞膜上表达,具有独特的跨膜结构。研究表明,Igsf8的表达变化与胶质瘤的生长密切相关。利用TCGA和CGGA数据库的数据,研究人员评估了Igsf8的功能,并通过RNA-seq数据研究了其在肿瘤细胞中的表达。此外,通过Gene Cards数据库获得了Igsf8的蛋白质数据,并利用Cluster Profiler数据包进行了Igsf8的富集研究。GO和KEGG数据库被用于探讨Igsf8与细胞生理和生化过程之间的关系。TCGA免疫细胞浸润评分被用于分析Igsf8表达与免疫调节之间的相关性。临床生存数据被用于研究Igsf8的预后意义。研究结果显示,大多数癌症中Igsf8的表达存在差异,Igsf8在肿瘤细胞中富集于多个重要的通路中。此外,Igsf8的表达与非淋巴细胞和淋巴细胞之间的免疫调节相互作用之间存在强烈的相关性。T细胞浸润、免疫检查点、免疫激活和免疫抑制基因、趋化因子和趋化因子受体均与Igsf8的表达密切相关。最后,TCGA和CGGA数据库显示,Igsf8与胶质瘤的分级和预后之间存在强烈的相关性。根据这些发现,Igsf8可能是一种胶质瘤标志物。为了控制免疫微环境,Igsf8可能需要与多种免疫检查点协同作用。这些信息可以用于开发新的靶向免疫疗法药物[1]。

除了在胶质瘤中的作用外,Igsf8还与骨质量相关。研究发现,Igsf8是调节破骨细胞多核化和骨质量的一个跨调节基因网络(MMnet)的枢纽基因之一。该网络中的基因调控骨功能,其表达变化与骨相关表型之间存在因果关系。此外,Igsf8还与破骨细胞多核化和骨质量之间存在强烈的负相关。这些结果表明,Igsf8在骨质量调控中发挥重要作用[2]。

Igsf8还与嗅觉神经元轴突和突触的发育和功能调控相关。研究显示,Igsf8在嗅觉感觉神经元(OSN)轴突及其发育的突触中大量表达。Igsf8在突触神经丝中的表达是暂时的,仅限于球状体形成的时期。球状体表达在突触成熟和球状体组织化后减少,尽管在嗅神经层(ONL)中保持高水平表达。免疫沉淀实验表明,Igsf8与嗅觉球中的tetraspanin CD9相互作用。CD9是tetraspanin富集微域(TEMs)的组成部分,TEMs是细胞膜上调节细胞形态、运动、侵袭、融合和信号传导的专门微域。在体外,Igsf8和CD9均定位于OSN轴突和生长锥中的点状结构,与TEM定位一致。当嗅觉上皮(OE)受损时,迫使OSN大规模再生,此时Igsf8再次在OSN轴突末端被检测到,因为突触正在重新建立。最后,通过单侧阻断功能性活动,使球状体内的突触成熟停止,发现Igsf8没有从该亚细胞区室中排出,而是在成年球状体中继续被检测到。这些数据支持Igsf8促进OSN突触形成的假说[3]。

此外,Igsf8在胚胎和胎儿发育过程中的表达模式也得到了研究。研究发现,Igsf8在E9.5时在神经管的腹侧区域首次表达,在E10.5时出现背侧表达。研究还发现,神经管腹侧区域的表达依赖于Shh信号。从E11.5开始,Igsf8在脑室区的侧缘、早期后分裂神经母细胞、背根和颅神经节中表达。此外,Igsf8还表达于鳃弓、背侧胰腺原基、神经视网膜、嗅觉上皮、肠道、肾脏和肺部。这些结果表明,Igsf8在神经系统和器官上皮的发育中发挥重要作用[4]。

除了在神经系统和器官上皮发育中的作用外,Igsf8还与哺乳动物能量稳态相关。研究发现,miR-7是下丘脑中最富集的miRNA,其全局缺失导致小鼠肥胖。在Sim1神经元中特异性删除miR-7导致小鼠出现食欲亢进、肥胖和线性生长增加,这与Sim1和Melanocortin-4受体(MC4R)的杂合子不足相似。研究还发现,Snca(α-突触核蛋白)和Igsf8是miR-7的靶基因,它们在Sim1神经元中发挥作用,调节体重和内分泌轴。在人类中,MIR-7-1位于HNRNPK基因的最后内含子中,该基因的启动子驱动这两个基因的表达。在HNRNPK位点发现的基因变异导致其表达降低,与身高增加和躯干脂肪质量增加相关。这些发现表明,miR-7通过抑制参与下丘脑黑皮质素途径的基因网络来调节哺乳动物能量稳态[5]。

Igsf8还与妊娠高血压综合征(PE)的发展相关。研究发现,Igsf8在PE患者胎盘组织中表达升高。PE大鼠模型显示,Igsf8表达升高与螺旋动脉的生理性转化失败相关。Igsf8过表达抑制了JEG-3细胞迁移、侵袭和EMT,并减少了JEG-3细胞中VEGF的释放,从而抑制了HUVEC管形成。mRNA测序分析显示,转染shIGSF8的JEG-3细胞中与血管生成和间充质细胞分化相关的基因表达发生了变化,Igsf8敲低与血管发育和细胞迁移途径的激活相关。这些结果表明,Igsf8在PE的发展中发挥作用,并为潜在的治疗提供了新的见解[6]。

除了上述功能外,Igsf8还与前列腺癌的发展相关。研究发现,Igsf8的敲低导致前列腺癌细胞中雄激素受体(AR)的激活和AR靶基因的表达增加。此外,Igsf8的敲低还导致LNCaP细胞在雄激素剥夺环境下的增殖。Igsf8对AR信号的影响可能与其与tetraspanin蛋白CD9的相互作用有关,CD9之前已被证实与前列腺癌的进展有关。值得注意的是,IGSF8的纯合缺失几乎仅见于前列腺癌,而其他癌症类型则没有。这些发现表明,Igsf8在前列腺癌的雄激素非依赖性发展中发挥作用,并揭示了新的基因,这些基因调节前列腺癌中的AR信号[7]。

除了在上述疾病中的作用外,Igsf8还与猪肉品质性状相关。研究发现,Igsf8是影响猪肉品质性状的候选基因之一。通过检测选择信号,研究人员发现了与Igsf8相关的性状特异性选择区域。这些区域中的基因与脂肪代谢和肌肉发育相关。这些发现为探索猪肉品质性状的遗传基础提供了基础信息[8]。

Igsf8还与移植性中脑多巴胺祖细胞的跨膜靶点相关。研究发现,Igsf8是中脑多巴胺(mDA)祖细胞中高表达的18个跨膜蛋白基因之一。通过流式细胞术,利用Igsf8作为靶点可以有效地分离mDA祖细胞。这些mDA祖细胞能够在宿主纹状体中广泛、功能性支配,并纠正PD模型中的运动障碍。这些结果表明,Igsf8可以作为细胞治疗PD的潜在靶点[9]。

综上所述,Igsf8是一种具有多种生物学功能的基因,参与调控多种生物学过程,包括神经系统和器官上皮的发育、骨质量、能量稳态、妊娠高血压综合征、前列腺癌和猪肉品质性状等。Igsf8的研究有助于深入理解其在不同疾病中的作用机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Ren, Jiaxing, Huang, Ping, Wang, Fei. 2024. IGSF8 is a potential target for the treatment of gliomas. In Asian journal of surgery, 47, 3883-3891. doi:10.1016/j.asjsur.2024.02.118. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38453613/
2. Pereira, Marie, Ko, Jeong-Hun, Logan, John, Williams, Graham R, Behmoaras, Jacques. 2020. A trans-eQTL network regulates osteoclast multinucleation and bone mass. In eLife, 9, . doi:10.7554/eLife.55549. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32553114/
3. Ray, Arundhati, Treloar, Helen B. 2012. IgSF8: a developmentally and functionally regulated cell adhesion molecule in olfactory sensory neuron axons and synapses. In Molecular and cellular neurosciences, 50, 238-49. doi:10.1016/j.mcn.2012.05.007. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22687584/
4. Murdoch, Jennifer N, Doudney, Kit, Gerrelli, Dianne, Stanier, Philip, Copp, Andrew J. . Genomic organization and embryonic expression of Igsf8, an immunoglobulin superfamily member implicated in development of the nervous system and organ epithelia. In Molecular and cellular neurosciences, 22, 62-74. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12595239/
5. LaPierre, Mary P, Lawler, Katherine, Godbersen, Svenja, Farooqi, I Sadaf, Stoffel, Markus. 2022. MicroRNA-7 regulates melanocortin circuits involved in mammalian energy homeostasis. In Nature communications, 13, 5733. doi:10.1038/s41467-022-33367-w. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36175420/
6. Chu, Xiaodan, Chen, Xuan, Guo, Man, Qu, Zhihai, Li, Peiling. 2025. IGSF8 impairs migration and invasion of trophoblast cells and angiogenesis in preeclampsia. In Experimental cell research, 445, 114405. doi:10.1016/j.yexcr.2025.114405. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39755227/
7. Ding, Yingjun, Chen, Junxiong, Li, Shuping, Lu, Lu, Zhang, Xin A. 2023. EWI2 and its relatives in Tetraspanin-enriched membrane domains regulate malignancy. In Oncogene, 42, 861-868. doi:10.1038/s41388-023-02623-8. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36788350/
8. Levina, Elina, Ji, Hao, Chen, Mengqiang, Buttyan, Ralph, Shtutman, Michael. . Identification of novel genes that regulate androgen receptor signaling and growth of androgen-deprived prostate cancer cells. In Oncotarget, 6, 13088-104. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26036626/
9. Shen, Yu, Wang, Haiyan, Xie, Jiahao, Wang, Zixuan, Ma, Yunlong. 2021. Trait-specific Selection Signature Detection Reveals Novel Loci of Meat Quality in Large White Pigs. In Frontiers in genetics, 12, 761252. doi:10.3389/fgene.2021.761252. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34868241/