Higd1a-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Higd1a-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-18719

品系全称

C57BL/6JCya-Higd1aem1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-56295-Higd1a-B6J-VB

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Higd1a-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-18719) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
HIG1 domain family, member 1A
基因别称
2210020B17Rik,7420700H20Rik,HIMP1,Hig1
染色体号
Chr 9 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_019814 | Ensembl: ENSMUST00000060251
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 2~4
敲除长度
~4.9 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
HIGD1A(hypoxia-induced gene domain family member 1A),也称为Higd1a,是一种在进化上保守的基因,广泛表达于哺乳动物的各种组织中。HIGD1A是线粒体内膜蛋白,参与调节代谢稳态,发挥抗凋亡和促进细胞在缺氧条件下存活的作用。它在维持线粒体功能和代谢平衡中起着关键作用。HIGD1A的生理功能包括抗凋亡和促进细胞在缺氧条件下的存活,特别是在一些细胞类型中,如猪的Sertoli细胞,HIGD1A的表达有助于支持生殖过程。在某些情况下,HIGD1A还可以作为代谢应激的标志。近年来,关于HIGD1A如何决定肿瘤命运以及如何调节癌症增殖的研究已经取得了相当大的进展。HIGD1A的表达在多种疾病中发生变化,包括癌症、非酒精性脂肪肝(NAFLD)、2型糖尿病和线粒体疾病。

HIGD1A在非酒精性脂肪肝(NAFLD)中发挥重要作用。研究发现,在肥胖小鼠的肝脏中,运动训练可以上调HIGD1A的表达。通过尾静脉注射腺相关病毒(AAV)载体,在肥胖小鼠的肝脏中敲低或过表达HIGD1A,发现HIGD1A的敲低损害了运动介导的肝脂肪变性、肝损伤和炎症的缓解,而HIGD1A的过表达则与运动协同减轻了脂肪肝、肝损伤和炎症。机制上,肝细胞中HIGD1A的缺乏促进了游离脂肪酸(FFAs)诱导的凋亡和氧化应激,并升高了细胞质中氧化线粒体DNA(ox-mtDNA)的水平,激活NLRP3炎症小体和JNK信号通路,导致参与脂肪酸氧化(FAO)的关键基因表达下调,如PPARA、CPT1A和ACADM。在肝细胞中过表达HIGD1A则减弱了上述效应,最终增加了FAO基因的表达,减轻了肝细胞中的脂肪积累。这些结果表明,HIGD1A介导了对细胞质ox-mtDNA/NLRP3炎症小体/JNK通路的抑制,从而促进了运动介导的肝脂肪变性的缓解[1]。

HIGD1A在维持线粒体稳态中发挥重要作用。HIGD1A作为线粒体内膜蛋白,参与调节代谢稳态。它在多种细胞类型中发挥抗凋亡作用,促进细胞在缺氧条件下的存活。HIGD1A的表达在多种组织中广泛存在,包括肝脏、心脏、脂肪组织和生殖系统。HIGD1A的表达受缺氧诱导因子(HIF)的调节,HIF-1α是HIGD1A的主要转录因子。HIGD1A的表达在多种疾病中发生变化,包括癌症、非酒精性脂肪肝(NAFLD)、2型糖尿病和线粒体疾病。HIGD1A的过表达可以抑制肿瘤生长,但促进肿瘤细胞存活。HIGD1A的过表达可以降低肿瘤生长,但促进肿瘤细胞存活。HIGD1A的过表达可以抑制肿瘤生长,但促进肿瘤细胞存活[2]。

HIGD1A在乙型肝炎病毒(HBV)的转录和复制中发挥重要作用。研究发现,HIGD1A在乙型肝炎病毒携带者中表达上调,且与病毒血症水平相关。在肝细胞来源的细胞中,HIGD1A的过表达可以显著抑制HBV的转录和复制,而HIGD1A的沉默则促进HBV基因的表达和复制。机制上,HIGD1A位于线粒体内膜上,通过结合阵发性非肌阵挛性运动障碍(PNKD)激活核因子κB(NF-κB)信号通路,进而增强转录因子NR2F1的表达,抑制HBV的转录和复制。HIGD1A的沉默可以逆转HIGD1A对HBV复制的抑制作用。这些结果表明,HIGD1A通过PNKD-NF-κB-NR2F1轴作为HBV感染的主限制因子发挥作用[3]。

HIGD1A在脂肪细胞棕色化中发挥重要作用。研究发现,HIGD1A在棕色脂肪中表达上调,而其在脂肪细胞棕色化中的作用尚未明确。HIGD1A的敲低抑制了脂肪细胞的棕色化,而HIGD1A的过表达则促进了棕色化过程。机制上,HIGD1A的缺乏导致线粒体呼吸受损,增加活性氧(ROS)水平,进而增加NAD+消耗以修复DNA损伤,降低NAD+/NADH比率,抑制sirtuin1(SIRT1)活性,从而损害脂肪细胞棕色化。相反,HIGD1A的过表达则抑制了上述过程,促进适应性产热。在腹股沟脂肪和棕色脂肪中敲低HIGD1A的小鼠表现出受损的产热和易患饮食诱导的肥胖(DIO)。HIGD1A的过表达则促进脂肪组织棕色化,最终预防DIO和代谢紊乱。这些结果表明,线粒体蛋白HIGD1A通过抑制ROS水平将SIRT1活性与脂肪细胞棕色化联系起来[4]。

HIGD1A在猪的Sertoli细胞中发挥抗凋亡作用。研究发现,HIGD1A可以降低细胞在低葡萄糖或缺氧条件下的ROS和凋亡。HIGD1A是miR-375的靶基因。在猪的Sertoli细胞中过表达HIGD1A和miR-375,发现ROS水平和CASPASE3的表达水平在HIGD1A过表达细胞中显著低于对照组细胞,而在miR-375过表达细胞中显著高于对照组细胞。HIGD1A过表达细胞的凋亡率显著低于miR-375过表达细胞。这些结果表明,miR-375可以通过抑制HIGD1A来间接调节ROS和凋亡[5]。

HIGD1A在肝细胞癌(HCC)的进展中发挥重要作用。研究发现,HIGD1A在HCC组织和细胞系中表达上调,且受缺氧或低葡萄糖条件诱导。在HCC细胞中敲低HIGD1A可以导致细胞周期停滞在G2/M期,并促进缺氧诱导的细胞凋亡,从而抑制细胞增殖、迁移、侵袭和肿瘤异种移植形成。HIGD1A的敲低还抑制了鸟氨酸脱羧酶1(ODC1)的表达,ODC1是聚胺代谢的限速酶,受c-Myc调节。HIGD1A被发现与c-Myc启动子区域结合,其敲低降低了聚胺代谢物的水平。一致地,通过过表达c-Myc或补充聚胺,可以逆转HIGD1A沉默对HCC表型的抑制作用。这些结果表明,HIGD1A激活c-Myc-ODC1轴调节聚胺合成,促进HCC的存活和恶性表型,暗示HIGD1A可能成为HCC的新的治疗靶点[6]。

HIGD1A在神经系统中的表达随着年龄的增长而发生变化。研究发现,HIGD1A mRNA在神经系统中广泛表达,在出生后第1天(P1)到第15天(P15)期间在脊髓中的表达逐渐增加,并且在P1到P90期间分布模式发生变化。在出生后的前几周,神经系统的巨大可塑性伴随着细胞死亡/存活的决策。HIGD1A蛋白在脑中广泛但不均匀地表达。对P1、P5、P8和P15的雌雄两性的顶叶皮质、间脑和脊髓进行定量Western blot分析,发现HIGD1A的表达主要很高,且随年龄变化,但与性别无关。同样,在性二态核中,HIGD1A的表达也随年龄变化,但我们无法检测到其表达与性别有关的显著差异。这些结果表明,HIGD1A蛋白在神经系统的几个区域表达,其表达模式随年龄定量变化,但似乎不随性别变化[7]。

HIGD1A在葡萄糖剥夺期间的细胞存活和肿瘤生长中发挥重要作用。研究发现,HIGD1A在缺氧诱导因子1(HIF-1)诱导下表达,HIF-1调节对缺氧的许多反应。然而,在缺氧性坏死周围固体肿瘤区域的存活细胞通常缺乏HIF-1α。HIGD1A在这些HIF缺乏的极端环境中被诱导,并与线粒体电子传递链相互作用,抑制氧消耗,增强AMPK活性,降低细胞ROS水平。重要的是,HIGD1A降低肿瘤生长,但在体内促进肿瘤细胞存活。人类Higd1a基因位于3p22.1染色体上,许多肿瘤抑制基因也位于该染色体上。与这一点一致的是,人类癌症中Higd1a基因启动子的甲基化水平不同,阻碍了其在缺氧条件下的诱导。然而,当缺氧的肿瘤细胞面临葡萄糖剥夺时,DNA甲基转移酶活性受到抑制,使HIGD1A表达、代谢适应和可能的休眠诱导成为可能。这些发现揭示了这一家族的线粒体蛋白在癌症生物学中的重要作用[8]。

HIGD1A在高脂暴露下保护细胞免受脂毒性。研究发现,在高脂暴露下,HIGD1A的表达增加。在HepG2和LO2细胞中,0.4 mM油酸和0.2 mM棕榈酸被加入到培养基中72小时,发现HIGD1A的表达增加,而敲低HIGD1A则损害了线粒体跨膜电位并诱导细胞凋亡。随后发现,升高的ROS是HIGD1A表达增加的原因。此外,还发现ROS通过上调HIF-1a和PGC-1a的表达来促进HIGD1A的表达,这两种蛋白可以协同作用以诱导HIGD1A的表达。这些数据表明,HIGD1A在保护细胞免受氧化应激方面发挥着积极作用,ROS可以通过上调PGC-1a和HIF-1a的表达来诱导HIGD1A的表达[9]。

HIGD1A是细胞色素c氧化酶(CcO)的正调节因子。研究发现,CcO是唯一使用氧气产生质子梯度以产生ATP的酶,在缺氧条件下,CcO活性增加,但其背后的调节机制尚不清楚。通过筛选心肌细胞中的缺氧诱导基因,发现HIGD1A是CcO的正调节因子。重组HIGD1A直接整合到高度纯化的CcO中,并增加其活性。共振拉曼分析显示,HIGD1A导致活性中心heme a周围的结构变化,heme a是驱动质子泵的活性中心。使用线粒体靶向ATP生物传感器,发现敲低内源性HIGD1A降低了氧消耗和随后的线粒体ATP合成,导致细胞对缺氧的死亡增加;所有这些表型都可以通过外源性HIGD1A得到挽救。这些结果表明,HIGD1A是CcO的一个先前未知的调节成分,并且是减少CcO活性相关疾病的治疗靶点[10]。

综上所述,HIGD1A是一种重要的线粒体内膜蛋白,参与调节代谢稳态,发挥抗凋亡和促进细胞在缺氧条件下存活的作用。HIGD1A的表达在多种组织中广泛存在,包括肝脏、心脏、脂肪组织和生殖系统。HIGD1A的表达受缺氧诱导因子(HIF)的调节,HIF-1α是HIGD1A的主要转录因子。HIGD1A的表达在多种疾病中发生变化,包括癌症、非酒精性脂肪肝(NAFLD)、2型糖尿病和线粒体疾病。HIGD1A的过表达可以抑制肿瘤生长,但促进肿瘤细胞存活。HIGD1A的过表达可以降低肿瘤生长,但促进肿瘤细胞存活。HIGD1A的过表达可以抑制肿瘤生长,但促进肿瘤细胞存活。HIGD1A在非酒精性脂肪肝(NAFLD)中发挥重要作用,通过抑制细胞质ox-mtDNA/NLRP3炎症小体/JNK通路,促进了运动介导的肝脂肪变性的缓解。HIGD1A在维持线粒体稳态中发挥重要作用,参与调节代谢稳态,发挥抗凋亡和促进细胞在缺氧条件下的存活的作用。HIGD1A在乙型肝炎病毒(HBV)的转录和复制中发挥重要作用,通过PNKD-NF-κB-NR2F1轴作为HBV感染的主限制因子发挥作用。HIGD1A在脂肪细胞棕色化中发挥重要作用,通过抑制ROS水平将SIRT1活性与脂肪细胞棕色化联系起来。HIGD1A在猪的Sertoli细胞中发挥抗凋亡作用,miR-375可以通过抑制HIGD1A来间接调节ROS和凋亡。HIGD1A在肝细胞癌(HCC)的进展中发挥重要作用,激活c-Myc-ODC1轴调节聚胺合成,促进HCC的存活和恶性表型。HIGD1A在神经系统中的表达随着年龄的增长而发生变化,其表达模式随年龄定量变化,但似乎不随性别变化。HIGD1A在葡萄糖剥夺期间的细胞存活和肿瘤生长中发挥重要作用,抑制氧消耗,增强AMPK活性,降低细胞ROS水平。HIGD1A在高脂暴露下保护细胞免受脂毒性,通过上调ROS水平来促进HIGD1A的表达。HIGD1A是细胞色素c氧化酶(CcO)的正调节因子,增加CcO的活性,并导致活性中心heme a周围的结构变化。这些研究结果突出了HIGD1A在多种生物学过程和疾病中的作用,为HIGD1A的研究和应用提供了新的思路和策略。

参考文献:
1. Zhu, Jie-Ying, Chen, Min, Mu, Wang-Jing, Luo, Hong-Yang, Guo, Liang. 2022. Higd1a facilitates exercise-mediated alleviation of fatty liver in diet-induced obese mice. In Metabolism: clinical and experimental, 134, 155241. doi:10.1016/j.metabol.2022.155241. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35750235/
2. Zhu, Jie-Ying, Chen, Min, Mu, Wang-Jing, Luo, Hong-Yang, Guo, Liang. 2022. The functional role of Higd1a in mitochondrial homeostasis and in multiple disease processes. In Genes & diseases, 10, 1833-1845. doi:10.1016/j.gendis.2022.03.018. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37492734/
3. Xie, Zhanglian, Shen, Sheng, Huang, Kuiyuan, Guo, Haitao, Zhang, Xiaoyong. . Mitochondrial HIGD1A inhibits hepatitis B virus transcription and replication through the cellular PNKD-NF-κB-NR2F1 nexus. In Journal of medical virology, 95, e28749. doi:10.1002/jmv.28749. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37185850/
4. Li, Bai-Yu, Peng, Wan-Qiu, Liu, Yang, Guo, Liang, Tang, Qi-Qun. 2023. HIGD1A links SIRT1 activity to adipose browning by inhibiting the ROS/DNA damage pathway. In Cell reports, 42, 112731. doi:10.1016/j.celrep.2023.112731. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37393616/
5. Guo, Jia, Yang, Chun, Zhang, Shaoxuan, Peng, Yinghua, Sun, Boxing. 2018. MiR-375 induces ROS and apoptosis in ST cells by targeting the HIGD1A gene. In Gene, 685, 136-142. doi:10.1016/j.gene.2018.10.086. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30391442/
6. Zhang, Haixing, Li, Xiaoran, Liu, Ziying, Zhang, Xiaoyong, Liu, Hongyan. 2024. Elevated expression of HIGD1A drives hepatocellular carcinoma progression by regulating polyamine metabolism through c-Myc-ODC1 nexus. In Cancer & metabolism, 12, 7. doi:10.1186/s40170-024-00334-6. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38395945/
7. López, Lucía, Zuluaga, María José, Lagos, Patricia, Agrati, Daniella, Bedó, Gabriela. 2018. The Expression of Hypoxia-Induced Gene 1 (Higd1a) in the Central Nervous System of Male and Female Rats Differs According to Age. In Journal of molecular neuroscience : MN, 66, 462-473. doi:10.1007/s12031-018-1195-y. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30302618/
8. Ameri, Kurosh, Jahangiri, Arman, Rajah, Anthony M, Aghi, Manish K, Maltepe, Emin. 2015. HIGD1A Regulates Oxygen Consumption, ROS Production, and AMPK Activity during Glucose Deprivation to Modulate Cell Survival and Tumor Growth. In Cell reports, 10, 891-899. doi:10.1016/j.celrep.2015.01.020. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25683712/
9. Li, Tong, Xian, Wen-Jing, Gao, Yang, Zheng, Qi-Chang, Zhang, Yong. 2019. Higd1a Protects Cells from Lipotoxicity under High-Fat Exposure. In Oxidative medicine and cellular longevity, 2019, 6051262. doi:10.1155/2019/6051262. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31089410/
10. Hayashi, Takaharu, Asano, Yoshihiro, Shintani, Yasunori, Yoshikawa, Shinya, Takashima, Seiji. 2015. Higd1a is a positive regulator of cytochrome c oxidase. In Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 112, 1553-8. doi:10.1073/pnas.1419767112. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25605899/