Pfkl-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Pfkl-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-18657

品系全称

C57BL/6JCya-Pfklem1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-18641-Pfkl-B6J-VB

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Pfkl-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-18657) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型
AMPK信号通路

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
phosphofructokinase, liver, B-type
基因别称
ATP-PFK,PFK-B,PFK-L
染色体号
Chr 10 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_008826 | Ensembl: ENSMUST00000020522
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 8~11
敲除长度
~4.0 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:97547Mice homozygous for a knock-out allele exhibit complete preweaning lethality. Female heterozygous mice show anomalies in the hair cycle catagen phase and hair follicle degeneration.
PFKL,全称磷果糖激酶-1(肝脏型),是糖酵解途径中的关键酶之一。它负责催化果糖-6-磷酸转化为果糖-1,6-二磷酸的反应,这是糖酵解过程中产生ATP和NADH的关键步骤。PFKL的表达和活性在多种生物学过程中发挥重要作用,包括细胞代谢、生长、分化以及免疫反应。

PFKL的基因表达和活性受到多种转录因子和信号通路的调控。例如,早期生长反应因子1(EGR1)是一种转录因子,它可以与PFKL基因的启动子区域结合,从而抑制PFKL的表达。研究发现,在肝细胞癌(HCC)中,EGR1的表达水平显著降低,导致PFKL的表达水平升高,进而促进HCC细胞的增殖和肿瘤的生长。相反,过表达EGR1可以抑制HCC细胞的增殖和肿瘤的生长,并增加HCC细胞对索拉非尼的敏感性。这些结果表明,EGR1具有作为HCC肿瘤抑制基因的潜在治疗价值,EGR1基因疗法可能为HCC患者提供益处[1]。

除了转录因子的调控外,PFKL的活性还可以受到磷酸化和变构调节的影响。例如,研究发现,在巨噬细胞中,PFKL在丝氨酸775位点发生磷酸化,从而增加其催化活性,促进糖酵解的进行。这种磷酸化依赖于模式识别受体(PRR)的激活,例如脂多糖(LPS)的处理。此外,前列腺素E2(PGE2)可以与PFKL结合,抑制其活性,从而降低糖酵解的速率和葡萄糖代谢的氧化作用[3,4]。

PFKL的基因剂量效应也在一些疾病的发生发展中发挥作用。例如,PFKL基因位于人类21号染色体上,当21号染色体三体化时,PFKL的表达水平会升高,导致糖酵解活性增加,这是唐氏综合征(Down综合征)患者常见的生化特征。此外,PFKL的表达水平升高还与一些癌症的发生发展相关,例如食管癌和卵巢癌。研究发现,PFKL的表达水平升高与食管癌的晚期和不良预后相关。此外,抑制PFKL的表达可以显著抑制食管癌细胞的增殖和肿瘤的生长。在卵巢癌中,PTGES3可以与PFKL结合,生成PGE2,从而抑制PFKL的活性,降低糖酵解的速率和葡萄糖代谢的氧化作用。然而,卵巢癌细胞会抑制PTGES3的表达,破坏PTGES3-PGE2-PFKL的抑制轴,从而导致糖酵解的过度激活和卵巢癌细胞运动性和侵袭性的增强[2,5]。

综上所述,PFKL是糖酵解途径中的关键酶,其表达和活性受到多种因素的调控,包括转录因子、磷酸化和变构调节等。PFKL的基因剂量效应在一些疾病的发生发展中发挥作用,例如唐氏综合征和癌症。PFKL的研究有助于深入理解糖酵解的调控机制和疾病发生发展的机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Pan, Mingang, Luo, Muyu, Liu, Lele, Huang, Ailong, Xia, Jie. 2024. EGR1 suppresses HCC growth and aerobic glycolysis by transcriptionally downregulating PFKL. In Journal of experimental & clinical cancer research : CR, 43, 35. doi:10.1186/s13046-024-02957-5. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38287371/
2. Zheng, Cancan, Yu, Xiaomei, Liang, Yiyao, He, Qingyu, Li, Bin. 2021. Targeting PFKL with penfluridol inhibits glycolysis and suppresses esophageal cancer tumorigenesis in an AMPK/FOXO3a/BIM-dependent manner. In Acta pharmaceutica Sinica. B, 12, 1271-1287. doi:10.1016/j.apsb.2021.09.007. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35530161/
3. Wang, Meiyue, Flaswinkel, Heinrich, Joshi, Abhinav, Fröhlich, Thomas, Hornung, Veit. 2024. Phosphorylation of PFKL regulates metabolic reprogramming in macrophages following pattern recognition receptor activation. In Nature communications, 15, 6438. doi:10.1038/s41467-024-50104-7. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39085210/
4. Chen, Shengmiao, Wu, Yiran, Gao, Yang, Zhao, Suwen, Fan, Gaofeng. 2023. Allosterically inhibited PFKL via prostaglandin E2 withholds glucose metabolism and ovarian cancer invasiveness. In Cell reports, 42, 113246. doi:10.1016/j.celrep.2023.113246. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37831605/
5. Elson, A, Levanon, D, Weiss, Y, Groner, Y. . Overexpression of liver-type phosphofructokinase (PFKL) in transgenic-PFKL mice: implication for gene dosage in trisomy 21. In The Biochemical journal, 299 ( Pt 2), 409-15. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8172601/