Crls1-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Crls1-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-18339

品系全称

C57BL/6JCya-Crls1em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-66586-Crls1-B6J-VB

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Crls1-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-18339) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
cardiolipin synthase 1
基因别称
0610009I22Rik,4930557M15Rik,5730490M08Rik
染色体号
Chr 2 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001024385 | Ensembl: ENSMUST00000028835
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 4~6
敲除长度
~3.5 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1913836Mice homozygous for a knock-out allele exhibit defects in chorion and trophoblast layer formation and complete lethality throughout fetal growth and development.
Crls1,也称为Cardiolipin Synthase 1,是一种关键的酶,负责在真核生物中合成心磷脂(CL)。心磷脂是一种双分子层磷脂,主要存在于线粒体内膜,对于维持线粒体的结构和功能至关重要。Crls1通过催化磷脂酰甘油(PG)转化为心磷脂的过程,在线粒体中发挥着重要作用。心磷脂不仅参与线粒体的能量代谢,而且还对线粒体的形态、膜电位、氧化磷酸化和细胞凋亡等过程有重要影响。

Crls1在多种生物学过程中发挥着重要作用,包括细胞增殖、分化、发育和疾病发生。在肝脏肿瘤发生中,研究发现N1-甲基腺苷(m1A)在tRNA中的甲基化水平显著升高,而m1A甲基化信号的增加与肝细胞癌(HCC)患者的生存率呈负相关。TRMT6和TRMT61A形成的m1A甲基转移酶复合物在HCC肿瘤中高表达,并且与HCC患者的生存率呈负相关。TRMT6/TRMT61A介导的m1A甲基化对于肝脏肿瘤的发生是必需的。机制上,TRMT6/TRMT61A通过在特定tRNA中升高m1A甲基化水平来增加PPARδ的翻译,进而触发胆固醇合成并激活Hedgehog信号通路,最终促进肝癌细胞自我更新和肿瘤发生。此外,还发现了一种针对TRMT6/TRMT61A复合物的强效抑制剂,对肝脏癌症具有有效的治疗作用[1]。

在乳腺癌中,CRLS1基因的3'非编码区(UTR)选择性多聚腺苷化(APA)被发现与其蛋白表达水平相关。研究发现,CRLS1基因的3'UTR选择性延长可以增加其蛋白表达,进而促进乳腺癌细胞的增殖[2]。

在遗传性线粒体疾病中,CRLS1基因的双等位基因变异被发现导致心磷脂缺乏和线粒体功能障碍。研究发现,CRLS1基因变异导致的心磷脂缺乏会影响线粒体的形态和生物合成,从而引发严重的线粒体疾病。此外,通过脂质和蛋白质组分析,还发现CRLS1基因变异会导致心磷脂水平降低、酰基链组成改变和磷脂酰甘油水平升高,进一步证实了CRLS1基因变异导致线粒体疾病的功能缺陷[3]。

在非酒精性脂肪性肝病(NASH)中,CRLS1的表达水平被发现与胰岛素敏感性相关。研究发现,CRLS1的表达水平在肥胖和饮食诱导的NASH小鼠模型中显著下调。在体外实验中,CRLS1的过表达可以显著减轻肝细胞中的脂肪变性和炎症,而CRLS1的敲低则加剧了这些异常。此外,在CRLS1基因敲除小鼠中,高脂肪和高胆固醇饮食诱导的胰岛素抵抗、肝细胞脂肪变性和炎症反应显著加剧。研究发现,CRLS1通过抑制激活转录因子3(ATF3)的表达和活性来改善NASH过程中的胰岛素抵抗、肝细胞脂肪变性、炎症和纤维化[4]。

在细胞质和线粒体mRNA上,m1A修饰被发现具有广泛的分布。研究发现,m1A修饰主要存在于tRNA的T环结构中,由TRMT6/TRMT61A复合物催化。此外,还发现m1A修饰在mRNA上具有组织特异性和发育调控的特点。m1A修饰可能通过干扰碱基配对来抑制翻译,细胞通常避免在mRNA上出现m1A修饰。然而,在一种线粒体mRNA(ND5)上,m1A修饰被发现具有紧密的时空调控,可能是作为mRNA的转录后调控机制[5]。

在卵巢癌中,CRLS1基因被发现与预后相关。研究发现,CRLS1基因的高表达与卵巢癌患者的总生存期(OS)改善相关。此外,CRLS1基因的表达还与卵巢癌患者的临床病理参数相关,包括性别、吸烟状态、肿瘤分级、临床分期、淋巴结状态和化疗。研究发现,CRLS1基因与代谢相关基因共表达,并与肿瘤相关代谢和MAPK信号通路相关。这表明CRLS1基因可能是一种新的肿瘤抑制因子,参与调节肿瘤微环境中的脂质和硒氨基酸代谢,并抑制MAPK信号通路在肿瘤发生和发展中的作用[6]。

在肺鳞癌中,CRLS1基因的表达水平被发现与预后相关。研究发现,CRLS1基因的低表达与肺鳞癌患者的预后不良相关。此外,CRLS1基因的表达还与肺鳞癌患者的临床病理参数相关,包括性别、吸烟状态、肿瘤分级、临床分期、淋巴结状态和化疗。这表明CRLS1基因可能是一种新的肿瘤抑制因子,在肺鳞癌的发生和发展中发挥作用[6]。

在肺腺癌中,CRLS1基因的表达水平被发现与预后相关。研究发现,CRLS1基因的高表达与肺腺癌患者的总生存期(OS)改善相关。这表明CRLS1基因可能是一种新的肿瘤抑制因子,在肺腺癌的发生和发展中发挥作用[6]。

在肺鳞癌中,LINC01272长非编码RNA被发现通过调节miR-7-5p/CRLS1轴来抑制细胞增殖和诱导细胞凋亡。研究发现,LINC01272在肺鳞癌中低表达,并且与预后不良相关。在细胞实验中,LINC01272的过表达可以抑制肺鳞癌细胞的增殖和诱导细胞凋亡。LINC01272通过负调节miR-7-5p来调节CRLS1的表达,进而影响细胞增殖和凋亡相关蛋白的表达[8]。

在帕金森病(PD)中,心磷脂水平的调节对于维持线粒体稳态具有重要意义。研究发现,人参皂苷Rg3可以通过激活生长因子受体结合蛋白2(GRB2)来增加心磷脂水平,从而维持线粒体稳态。GRB2与TRKA的相互作用被促进,进而促进EVI1的磷酸化和CRLS1基因的表达,最终增加心磷脂的合成。研究发现,Rg3和TDF可以促进GRB2与TRKA的结合,进而增加心磷脂水平并维持线粒体稳态,对于预防PD具有潜在的潜力[7]。

综上所述,Crls1基因在多种生物学过程中发挥着重要作用,包括肝脏肿瘤发生、线粒体疾病、NASH、卵巢癌、肺鳞癌、肺腺癌和PD等。Crls1基因的表达和功能异常与这些疾病的发病机制和预后密切相关。深入研究Crls1基因的功能和调控机制,有助于我们更好地理解这些疾病的分子生物学机制,并为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Wang, Yanying, Wang, Jing, Li, Xiaoyu, Yi, Chengqi, Fan, Zusen. 2021. N1-methyladenosine methylation in tRNA drives liver tumourigenesis by regulating cholesterol metabolism. In Nature communications, 12, 6314. doi:10.1038/s41467-021-26718-6. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34728628/
2. Chen, Hui, Wang, Zeyang, Gong, Lihai, Deng, Lin, Li, Lei. 2024. A distinct class of pan-cancer susceptibility genes revealed by an alternative polyadenylation transcriptome-wide association study. In Nature communications, 15, 1729. doi:10.1038/s41467-024-46064-7. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38409266/
3. Lee, Richard G, Balasubramaniam, Shanti, Stentenbach, Maike, Reid, Gavin E, Filipovska, Aleksandra. . Deleterious variants in CRLS1 lead to cardiolipin deficiency and cause an autosomal recessive multi-system mitochondrial disease. In Human molecular genetics, 31, 3597-3612. doi:10.1093/hmg/ddac040. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35147173/
4. Tu, Chuyue, Xiong, Hui, Hu, Yufeng, Zhang, Peng, Mei, Zhinan. 2020. Cardiolipin Synthase 1 Ameliorates NASH Through Activating Transcription Factor 3 Transcriptional Inactivation. In Hepatology (Baltimore, Md.), 72, 1949-1967. doi:10.1002/hep.31202. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32096565/
5. Safra, Modi, Sas-Chen, Aldema, Nir, Ronit, Stern-Ginossar, Noam, Schwartz, Schraga. 2017. The m1A landscape on cytosolic and mitochondrial mRNA at single-base resolution. In Nature, 551, 251-255. doi:10.1038/nature24456. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29072297/
6. Kasavi, Ceyda. 2022. Gene co-expression network analysis revealed novel biomarkers for ovarian cancer. In Frontiers in genetics, 13, 971845. doi:10.3389/fgene.2022.971845. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36338962/
7. Qi, Li-Feng-Rong, Liu, Shuai, Fang, Qiuyuan, Li, Ping, Xu, Xiaojun. 2024. Ginsenoside Rg3 Restores Mitochondrial Cardiolipin Homeostasis via GRB2 to Prevent Parkinson's Disease. In Advanced science (Weinheim, Baden-Wurttemberg, Germany), 11, e2403058. doi:10.1002/advs.202403058. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39159293/
8. Ma, Xuan, Liu, Yang, Tian, Hao, Wang, Meiling, Gao, Xia. . LINC01272 Suppressed Cell Multiplication and Induced Apoptosis Via Regulating MiR-7-5p/CRLS1 Axis in Lung Cancer. In Journal of microbiology and biotechnology, 31, 921-932. doi:10.4014/jmb.2102.02010. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34099597/