Igf2-flox 基因敲除小鼠

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复苏/繁育服务
产品名称

Igf2-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-18104

品系全称

C57BL/6JCya-Igf2em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-16002-Igf2-B6J-VB

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Igf2-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-18104) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型
MAPK信号通路
PI3K-Akt信号通路

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
insulin-like growth factor 2
基因别称
Igf-2,Igf-II,M6pr,Mpr,Peg2
染色体号
Chr 7 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_010514 | Ensembl: ENSMUST00000121128
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 2
敲除长度
~1.1 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:96434Mutations that are paternally transmitted result in growth deficiency. Heterozygous mice inheriting a mutant allele from their mother appear to be phenotypically normal.
Igf2,也称为胰岛素样生长因子2,是一种在哺乳动物中广泛表达的基因。该基因编码一种重要的生长因子,主要在胎儿和胎盘的生长以及营养物质的转移中发挥作用。Igf2基因的表达表现出父系印记的特征,即它仅从父系等位基因中表达。Igf2基因的表达受到表观遗传调控,包括父系等位基因特异性DNA甲基化、染色质修饰、DNA结合绝缘蛋白(CTCFs)以及细胞核中DNA的三维分区等机制[1]。

Igf2基因的表达受到多种因素的影响。例如,在猪的脂肪组织中,IGF2:g.3072G>A多态性被发现与肌肉生长和脂肪沉积相关。研究发现,该多态性与脂肪组织中Igf2 mRNA的表达水平以及脂肪酸的组成相关。携带A等位基因的动物表现出Igf2基因表达的增加,以及多不饱和脂肪酸(PUFA)的增加和单不饱和脂肪酸(MUFA)的减少[2]。

Paxillin(PXN)是一种细胞质和细胞核之间的穿梭蛋白,参与细胞信号传导。研究发现,Paxillin可以调节Igf2和H19基因簇的表达。Paxillin通过促进Igf2启动子与远端增强子的相互作用来激活Igf2基因的转录,同时抑制H19启动子与增强子的相互作用来下调H19基因的表达。这些发现有助于解释Paxillin在细胞增殖和胎儿发育中的作用机制[3]。

通过靶向纳米孔测序技术,研究发现H19/IGF2位点上的基因调控元素之间存在长距离的相位关系。这些元素包括启动子、增强子、绝缘子和转录因子足迹。研究发现,H19/IGF2位点的相位关系受到DNA甲基化、染色质结构和长距离基因调控的影响。这些发现为研究基因调控景观的相位关系提供了新的策略,并揭示了人类细胞中Igf2印记的机制[4]。

在鹅的生长性状中,Igf2基因的G63A突变被发现与体重相关。研究发现,该突变与鹅的体重有显著的关联,携带A等位基因的鹅体重较重。这些发现表明,G63A突变可能是鹅育种的重要遗传标记[5]。

Igf2基因的表达受到父系印记的调控,包括DNA甲基化、染色质结构和长距离基因调控等机制。Igf2基因的表达受到多种因素的影响,包括基因多态性和其他基因的相互作用。Igf2基因在动物的生长、发育和生殖中发挥着重要作用。进一步研究Igf2基因的调控机制和功能,有助于深入理解基因印记和动物生长的生物学过程,为动物育种和疾病治疗提供新的思路和策略[1,2,3,4,5]。

参考文献:
1. Nordin, M, Bergman, D, Halje, M, Engström, W, Ward, A. 2014. Epigenetic regulation of the Igf2/H19 gene cluster. In Cell proliferation, 47, 189-99. doi:10.1111/cpr.12106. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24738971/
2. Criado-Mesas, Lourdes, Ballester, Maria, Crespo-Piazuelo, Daniel, Fernández, Ana Isabel, Folch, Josep M. 2019. Analysis of porcine IGF2 gene expression in adipose tissue and its effect on fatty acid composition. In PloS one, 14, e0220708. doi:10.1371/journal.pone.0220708. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31393967/
3. Marášek, Pavel, Dzijak, Rastislav, Studenyak, Irina, Novák, Petr, Hozák, Pavel. 2015. Paxillin-dependent regulation of IGF2 and H19 gene cluster expression. In Journal of cell science, 128, 3106-16. doi:10.1242/jcs.170985. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26116569/
4. Battaglia, Sofia, Dong, Kevin, Wu, Jingyi, Shoresh, Noam, Bernstein, Bradley E. 2022. Long-range phasing of dynamic, tissue-specific and allele-specific regulatory elements. In Nature genetics, 54, 1504-1513. doi:10.1038/s41588-022-01188-8. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36195755/
5. Wang, Cui, Liu, Yi, Zhang, Yuting, Chen, Shufang, He, Daqian. 2022. Expression profile and the G63A mutation of IGF2 gene associated with growth traits in Zhedong-White goose. In Animal biotechnology, 34, 3261-3266. doi:10.1080/10495398.2022.2113399. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36001379/