Mapk8-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Mapk8-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-18059

品系全称

C57BL/6JCya-Mapk8em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-26419-Mapk8-B6J-VB

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Mapk8-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-18059) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型
Wnt信号通路
ErbB信号通路
MAPK信号通路

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
mitogen-activated protein kinase 8
基因别称
JNK,JNK1,Prkm8,SAPK1
染色体号
Chr 14 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_016700 | Ensembl: ENSMUST00000111945
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 3
敲除长度
~1.2 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1346861Mice homozygous for a knock-out allele exhibit abnormal T cell differentiation and proliferation, cardiac morphology and physiology, and chemically-induced tumorigenesis. Mice homozygous for another knock-out allele exhibit abnormal glucose homeostasis and T cell physiology. KO also leads to an increased number of retinal photoreceptor cells.

发表文献

Nature Aging
2025-12-02
Peritumoral colonic epithelial cell-derived GDF15 sustains colorectal cancer via regulation of glycolysis and histone lactylation
1
基因Mapk8,也称为JNK1(c-Jun N端激酶1),是丝裂原活化蛋白激酶(MAPK)家族的一员。该家族在细胞的生长、分化、凋亡和炎症反应中起着关键作用。Mapk8是JNK信号通路中的核心成分,JNK信号通路是MAPK信号通路的一个重要分支,与多种生物学过程和疾病的发生发展密切相关。Mapk8在多种疾病中发挥重要作用,包括神经退行性疾病、肿瘤、糖尿病和炎症性疾病等。

在一项研究中,研究人员通过分析基因表达谱和生物信息学方法,发现Mapk8和CAPN1可能是腰椎间盘退变(IDD)的关键生物标志物。他们从基因表达综合数据库(GEO)下载了IDD的基因表达数据,并通过差异表达基因(DEGs)分析、京都基因与基因组百科全书(KEGG)分析、基因本体(GO)和基因集富集分析(GSEA)等方法,探索了DEGs的生物功能。他们发现,在IDD中,自噬相关基因的表达发生改变,并与免疫细胞浸润和细胞因子信号通路相关。Mapk8作为JNK信号通路中的关键基因,其表达水平的改变可能参与IDD的发生发展[1]。

另一项研究表明,ATM(共济失调毛细血管扩张症突变基因)蛋白与多种细胞器相关,包括突触囊泡、内体和溶酶体,并与ATR(共济失调毛细血管扩张症和Rad3相关)协同作用。ATM基因突变会导致共济失调毛细血管扩张症(A-T),这是一种常染色体隐性遗传疾病,其特征是多个器官(包括神经系统)的缺陷。研究发现,ATM蛋白通过自噬途径降解,而ATR蛋白则通过蛋白酶体途径处理。在atm-/-神经元中,自噬和溶酶体转运异常,影响了细胞的突触维持、神经元存活和葡萄糖摄取等功能。此外,研究还发现ATP6V1A(ATPase, H+ transporting, lysosomal V1 subunit A)质子泵是ATM激酶的靶标。在atm-/-神经元中,溶酶体表现出增强的逆向转运,并在核周区域积累。这种变化归因于ATM与逆向转运马达蛋白动力蛋白之间的意外物理相互作用。因此,SLC2A4/GLUT4(solute carrier family 4 [facilitated glucose transporter], member 4)向质膜的转位受到抑制,而向溶酶体的转运增加,导致葡萄糖摄取能力受损。这些数据强调了ATM在各种神经元囊泡转运过程中的作用,为A-T的发病机制提供了新的治疗见解[2]。

在一项关于神经性疼痛的研究中,研究人员发现自噬在疼痛调节中发挥重要作用。他们发现,在神经性疼痛维持过程中,受损的自噬通量主要发生在星形胶质细胞中。无论在神经性疼痛诱导还是维持阶段,激活自噬都能减轻疼痛,而抑制自噬则加剧疼痛。此外,神经炎症和活性氧(ROS)水平随着自噬的抑制或激活而增加或减少。进一步研究表明,自噬的抑制减缓了神经炎症反应的诱导,但增加了其维持,这可能是通过促进TRAF6(TNF受体相关因子6)与K63泛素化蛋白的结合,增加p-MAPK8/JNK(丝裂原活化蛋白激酶8)和核因子κB(NFKB/NF-κB)的水平的。受损的自噬也降低了星形胶质细胞对神经元的保护作用,因为由星形胶质细胞释放的谷胱甘肽水平下降,这可以通过激活NFE2L2/NRF2(核因子,红细胞生成素2,类似2)途径来改善。研究还表明,与单独激活自噬相比,同时激活自噬和NFE2L2途径可以进一步减轻疼痛。这项研究揭示了自噬参与调节神经性疼痛的潜在机制,并为神经性疼痛的治疗提供了新的思路[3]。

在一项关于自噬的研究中,研究人员发现自噬是一个进化上保守的循环过程,对免疫炎症和神经系统稳态的调节起着重要作用。然而,自噬在疼痛中的确切作用和机制尚不清楚。研究发现,在神经性疼痛的维持过程中,自噬通量受损主要发生在星形胶质细胞中。无论在神经性疼痛诱导还是维持阶段,激活自噬都能减轻疼痛,而抑制自噬则加剧疼痛。此外,神经炎症和活性氧(ROS)水平随着自噬的抑制或激活而增加或减少。进一步研究表明,自噬的抑制减缓了神经炎症反应的诱导,但增加了其维持,这可能是通过促进TRAF6(TNF受体相关因子6)与K63泛素化蛋白的结合,增加p-MAPK8/JNK(丝裂原活化蛋白激酶8)和核因子κB(NFKB/NF-κB)的水平的。受损的自噬也降低了星形胶质细胞对神经元的保护作用,因为由星形胶质细胞释放的谷胱甘肽水平下降,这可以通过激活NFE2L2/NRF2(核因子,红细胞生成素2,类似2)途径来改善。研究还表明,与单独激活自噬相比,同时激活自噬和NFE2L2途径可以进一步减轻疼痛。这项研究揭示了自噬参与调节神经性疼痛的潜在机制,并为神经性疼痛的治疗提供了新的思路[3]。

在一项关于类风湿性关节炎(RA)的研究中,研究人员发现柚皮苷对RA具有良好的治疗作用。他们使用网络药理学方法,通过SwissTargetPrediction数据库、STITCH数据库和比较毒理基因组数据库,确定了柚皮苷的靶点。他们发现,柚皮苷的靶点与RA中差异表达的基因(DEGs)之间存在交集。蛋白互作网络和拓扑分析表明,IL-6、MAPK8、MMP-9、TNF和MAPK1在所有靶点中具有最高的中心性。GO分析和KEGG分析表明,靶点基因主要富集在癌症、乙型肝炎、破骨细胞分化、PI3K-Akt信号通路和查加斯病(美洲锥虫病)等途径中。体外研究发现,柚皮苷处理可以促进RA-FLS的凋亡,增加caspase-3的活化,并以剂量依赖性方式增加Bax/Bcl-2的比值。此外,柚皮苷处理可以减轻TNF-α诱导的RA-FLS中炎症细胞因子和基质金属蛋白酶(MMPs)的产生。此外,柚皮苷处理可以抑制RA-FLS中Akt和ERK的磷酸化。网络药理学为研究草药和化合物的治疗作用和机制提供了预测策略。柚皮苷通过PI3K/Akt和MAPK/ERK信号通路抑制炎症和MMPs的产生,并促进RA-FLS的凋亡[4]。

在一项关于骨髓增生异常综合征(MDS)的研究中,研究人员发现mTOR基因的表达水平与MDS患者的总体生存率相关。他们使用Affymetrix Human Clariom S微阵列,对MDS患者的CD34+骨髓细胞和对照CD34+细胞的差异基因表达谱(GEPs)进行了分析。他们发现,在MDS中,4165个基因的表达发生了显著变化(p<0.05)。通过严格的生物信息学分析,他们发现MAPK8、JUNB和mTOR等基因在MDS中上调。Kaplan-Meier生存分析表明,MAPK8和JUNB的表达水平升高可能是预后不良的指标,因为这些基因的表达水平升高的患者显示出较差的生存率。然而,有趣的是,mTOR表达水平的升高被证明是一个良好的预后指标。相关性分析表明,基因(MAPK8、JUNB、mTOR)的表达水平与遗传突变的频率显著相关。有趣的是,MAPK8表达水平的升高与ASXL1基因突变显著相关。该研究还发现,MDS中TNF和AMPK信号通路的表达水平升高。TNF信号通路可能介导了携带突变的髓样克隆细胞相对于正常细胞的增殖优势,而AMPK信号通路可能起到保护作用(有利于正常细胞)。因此,探索与mTOR、AMPK、MAPK8和JUNB相关的功能和途径在MDS等与髓样发生相关的疾病中的作用将非常有趣[5]。

在一项关于鸡雄性生殖细胞分化的研究中,研究人员分析了胚胎干细胞(ESCs)分化成精原干细胞(SSCs)的关键信号通路。他们探索了C-Jun氨基末端激酶(JNK)信号通路在这个过程中调节的具体机制。干扰/过表达MAPK8可以阻断/激活JNK信号通路。在维甲酸(RA)诱导的体外分化实验中,观察到生殖细胞标记基因cvh、c-kit、整合素α6和整合素β1的表达上调,而JNK信号通路的激活显著增加。荧光激活细胞分选(FACs)分析显示,在过表达组中cvh+和整合素α6+细胞的比例显著高于RA+shRNA-MAPK8组。在体内情况下,shRNA-MAPK8可以在鸡胚胎中稳定表达,并显著下调JNK信号通路中MAPK8和下游基因的表达。通过PAS染色,他们发现,在抑制MAPK8后,原始生殖细胞(PGCs)显著减少。通过实时定量PCR(qRT-PCR)和Western Blot,他们发现,抑制MAPK8后,生殖相关基因的表达显著下调。他们初步得出结论,敲低/过表达MAPK8可以影响ESCs的分化,通过抑制/激活JNK信号通路[6]。

在一项关于子痫前期(PE)的研究中,研究人员发现铁死亡在PE的发病机制中起着重要作用。PE通常与由于氧化应激(OS)增加而导致的活性氧(ROS)积累相关。铁死亡是一种独特的铁依赖性脂质过氧化诱导的细胞死亡,与传统的凋亡、坏死和焦亡不同,很可能是PE发病机制的一个重要因素。在妊娠约10-12周时,滋养层细胞创造了一个富含氧气和铁的环境。在PE患者中,铁死亡相关基因如HIF1和MAPK8的表达下调,而PLIN2的表达上调。此外,miR-30b-5p的过表达抑制了溶质载体家族11成员2,导致谷胱甘肽水平下降和可溶性铁池的增加。在母体-胎儿界面,生理性缺氧/再灌注和过量的铁导致脂质过氧化和ROS的产生。由于Fpn和含有不饱和脂肪酸的磷脂相关酶(如酰基辅酶A合成酶长链家族成员4、溶血磷脂酰胆碱酰转移酶3和精胺/亚精胺N1-乙酰转移酶1)的高表达,滋养层细胞更容易受到OS和ROS损伤。在第一阶段,受损的滋养层细胞表现出侵袭性差和子宫螺旋动脉重塑不完整,导致胎盘缺血和缺氧。随后,在第二阶段,铁死亡的发生以OS为标志,最终导致PE。该研究旨在通过OS在铁死亡中探索PE的新治疗靶点[7]。

在一项关于妊娠糖尿病(GDM)的研究中,研究人员发现AKT1和MAPK8基因可能在GDM的发病机制中发挥作用。他们使用实时PCR对GDM患者和健康对照的胎盘组织进行了分析,以量化基因表达水平。此外,他们还进行了计算机分析,以探索表达变化的功能意义。结果显示,与对照相比,AKT1和MAPK8在GDM胎盘中的表达水平显著改变(p=0.047和p=0.007)。计算机分析表明,表达变化可能与与糖尿病相关的途径的潜在功能后果相关。该研究确定了GDM胎盘组织中AKT1和MAPK8的差异表达,这表明它们可能在疾病过程中发挥潜在作用。进一步研究它们的功能贡献可以为GDM的病理生理学提供有价值的见解,并可能为治疗提供新的靶点[8]。

在一项关于结核病(TB)的研究中,研究人员通过分析微阵列数据集,比较了健康个体、潜伏性结核感染(LTBI)和活动性TB(TB)患者的转录组特征,并确定了差异表达的基因(DEGs)。然后,他们对DEGs进行了系统网络荟萃分析,确定了七个最具影响力的枢纽基因(IL6、IL1B、TNF、NFKB1、STAT1、JAK2和MAPK8)作为结核病治疗的潜在靶点。这些靶基因参与了许多生物学过程,如细胞周期控制、凋亡、补体信号传导、增强的细胞因子和趋化因子信号传导、促炎症反应和宿主免疫反应。此外,他们还确定了22个推定的基因,这些基因主要参与先天免疫反应的诱导、对白细胞介素-6的细胞反应、炎症反应、凋亡过程、I-κB磷酸化、JAK-STAT信号通路、巨噬细胞活化、细胞生长和细胞信号传导。对这些推定的基因的适当关注可能会开辟一个新的视野,以了解TB疾病的防御机制。转录组特征和网络方法可以增强对结核感染分子发病机制的理解,并有助于制定和执行mRNA表达工具,以支持早期诊断和治疗结核分枝杆菌(M.tb)[9]。

综上所述,基因Mapk8在多种生物学过程和疾病的发生发展中发挥着重要作用。它参与调节自噬、免疫炎症、细胞增殖、分化、凋亡和信号传导等过程。Mapk8的研究有助于深入理解这些生物学过程和疾病的发生机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Zhang, Yuxin, Zhang, Jiahui, Sun, Zhongyi, Xi, Xiaobing, Tian, Jiwei. 2023. MAPK8 and CAPN1 as potential biomarkers of intervertebral disc degeneration overlapping immune infiltration, autophagy, and ceRNA. In Frontiers in immunology, 14, 1188774. doi:10.3389/fimmu.2023.1188774. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37325630/
2. Cheng, Aifang, Tse, Kai-Hei, Chow, Hei-Man, She, Weiyi, Herrup, Karl. 2020. ATM loss disrupts the autophagy-lysosomal pathway. In Autophagy, 17, 1998-2010. doi:10.1080/15548627.2020.1805860. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32757690/
3. Li, Jian, Tian, Mouli, Hua, Tong, Zhang, Xiaoping, Yuan, Hongbin. 2021. Combination of autophagy and NFE2L2/NRF2 activation as a treatment approach for neuropathic pain. In Autophagy, 17, 4062-4082. doi:10.1080/15548627.2021.1900498. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33834930/
4. Zhou, Jing, Li, Xin-Yu, Liu, Yu-Jia, Shen, Han-Ming, Lu, Guo-Dong. 2021. Full-coverage regulations of autophagy by ROS: from induction to maturation. In Autophagy, 18, 1240-1255. doi:10.1080/15548627.2021.1984656. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34662529/
5. Aihaiti, Yirixiati, Song Cai, Yong, Tuerhong, Xiadiye, Xu, Ke, Xu, Peng. 2021. Therapeutic Effects of Naringin in Rheumatoid Arthritis: Network Pharmacology and Experimental Validation. In Frontiers in pharmacology, 12, 672054. doi:10.3389/fphar.2021.672054. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34054546/
6. Maurya, Nehakumari, Mohanty, Purvi, Panchal, Purvi, Shanmukhaiah, Chandrakala, Vundinti, Babu Rao. 2022. Over expression of mTOR gene predicts overall survival in myelodysplastic syndromes. In Molecular biology reports, 50, 235-244. doi:10.1007/s11033-022-07973-2. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36322239/
7. Wang, Yingjie, Bi, Yulin, Zuo, Qisheng, Zhang, Ya-Ni, Li, Bichun. 2017. MAPK8 regulates chicken male germ cell differentiation through JNK signaling pathway. In Journal of cellular biochemistry, 119, 1548-1557. doi:10.1002/jcb.26314. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28815778/
8. Shan, Yuping, Guan, Chengcheng, Wang, Jingli, Chen, Aiping, Liu, Shiguo. 2023. Impact of ferroptosis on preeclampsia: A review. In Biomedicine & pharmacotherapy = Biomedecine & pharmacotherapie, 167, 115466. doi:10.1016/j.biopha.2023.115466. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37729725/
9. Turkyilmaz, Aysegul, Akin, Melike Nur, Kasap, Burcu, Demirtas Bilgic, Aysegul, Edgunlu, Tuba Gokdogan. 2024. AKT1 and MAPK8: New Targets for Gestational Diabetes Mellitus? In Fetal and pediatric pathology, 43, 427-435. doi:10.1080/15513815.2024.2393357. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39177257/

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