Gpx1-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Gpx1-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-17425

品系全称

C57BL/6JCya-Gpx1em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-14775-Gpx1-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Gpx1-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-17425) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
glutathione peroxidase 1
基因别称
CGPx,GPx-1,GSHPx-1,Gpx
染色体号
Chr 9 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_008160 | Ensembl: ENSMUST00000082429
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 1~2
敲除长度
~2.6 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:104887Homozygotes for targeted null mutations show increased sensitivity to the oxidative stress agents paraquat and hydrogen peroxide and to ischemia/reperfusion and cold-induced brain injury. Mutants also show paradoxical bradykinin-induced vasoconstriction.
Gpx1,也称为谷胱甘肽过氧化物酶1,是一种广泛和丰富表达的抗氧化酶。Gpx1利用谷胱甘肽作为底物来催化过氧化氢、脂质过氧化物和过氧化亚硝酸盐,从而减少细胞内的氧化应激。Gpx1基因在转录、转录后和翻译水平上被调控。大量病例对照研究和荟萃分析评估了Gpx1基因的功能性遗传多态性,称为Pro198Leu(rs1050450 C>T),与不同人群的癌症易感性的关联。Gpx1多态性具有类型特异性,作为癌症风险的候选标志物,但Gpx1基因变异与癌症易感性之间的关联在不同的研究中仍然存在争议。Gpx1在大多数类型的癌症中异常升高,但在不同的癌症中具有复杂的双重作用,既作为肿瘤抑制因子,也作为肿瘤促进因子。Gpx1可以参与各种信号通路,调节肿瘤生物学行为,包括细胞增殖、凋亡、侵袭、免疫反应和化疗耐药性[4]。

多项研究表明,Gpx1基因的等位基因缺失在癌症发展中是一个常见事件。例如,一项研究调查了结肠癌中Gpx1基因的等位基因缺失,通过分析来自53名结肠癌患者的肿瘤和相邻组织样本的DNA中的杂合性缺失(LOH)。结果显示,在结直肠癌中,Gpx1位点的LOH在显著比例(42%)的患者中存在。这些结果表明,Gpx1位点的LOH是癌症发展中的常见事件,Gpx1或其他紧密连锁的基因可能参与该疾病的病因学[1]。

此外,Gpx1的表达与急性髓细胞白血病(AML)患者的预后不良有关。一项研究使用生物信息学方法分析了AML患者样本的转录表达谱,并使用Western blot、qPCR、RNAi和CCK8实验来研究Gpx1表达对AML细胞活力的影响。研究发现,Gpx1的高表达与AML患者的不利预后相关。Gpx1的表达与髓系来源的抑制细胞(MDSCs)、单核细胞和T细胞耗竭的分数水平、MDSC标记物的表达水平以及免疫抑制检查点(TIM3/Gal-9、SIRPα和VISTA)的表达水平呈正相关,与CD4+和CD8+ T细胞的低分数水平呈负相关。沉默Gpx1表达降低了AML细胞活力和CCR2的表达。此外,Gpx1相关预后特征(GPS)是一个独立的风险因素,具有高AUC值的ROC曲线。基于GPS的高风险组不仅富集了内吞作用,将线粒体转移到化疗中以促进AML细胞存活,而且还富集了NOTCH、WNT和TLR信号通路,这些信号通路促进了治疗耐药性。这些结果表明,Gpx1在AML免疫抑制中发挥重要作用,并为AML患者提供了一个预后特征[2]。

在胶质母细胞瘤(GBM)中,靶向剪接因子NONO可以抑制GBM的进展。一项研究发现,NONO的表达在GBM样本中升高,并与患者的生存率较差相关。敲低NONO的表达抑制了GBM的生长,而过表达NONO促进了GBM的肿瘤发生。RNA测序分析证实,敲低NONO在U251和P3细胞中导致广泛的内含子保留,导致特定pre-mRNA的异常剪接,包括GPX1和CCN1。NONO与GPX1 pre-mRNA的内含子中的保守基序结合,并与另一个DBHS蛋白家族成员PSPC1相关。敲低NONO通过GPX1的异常剪接损害了肿瘤生长、侵袭和氧化还原平衡。最后,NONO的小分子抑制剂Auranofin抑制了小鼠异位移植模型中GBM肿瘤的生长。这些结果表明,内含子保留是GBM进展中发生的关键替代RNA剪接事件,而NONO是GBM中mRNA剪接的关键调节因子。靶向NONO代表了一种新的、有潜力的GBM治疗方法[3]。

除了在癌症中的作用外,Gpx1基因多态性与噪声性听力损失(NIHL)的易感性相关。一项研究发现,Gpx1基因的rs1987628多态性与NIHL的风险相关。携带rs1987628 GA基因型的受试者与携带GG基因型的受试者相比,NIHL的风险显著升高。此外,rs1987628 GA+AA基因型的受试者与携带GG基因型的受试者相比,NIHL的风险也显著升高。这表明Gpx1基因多态性可能是NIHL的遗传易感性因素[5]。

在乳腺癌中,Gpx1基因的表达与雌激素受体α(ERα)的表达相关。一项研究发现,在乳腺癌患者的肿瘤和相邻肿瘤组织中,ESR1和GPX1基因的表达水平与ERα的表达水平显著相关。与正常组织相比,肿瘤组织中ESR1和GPX1的表达水平分别下调了14.7%和7.4%。这些基因的下调与肿瘤组织学分类和临床病理学因素无关。此外,随着肿瘤级别的增加,ESR1 mRNA水平降低。这表明ESR1和GPX1基因的表达在乳腺癌组织中相互依赖,需要进一步研究来确定这种关系的机制[6]。

Gpx1基因多态性还与子宫内膜癌的发生相关。一项研究发现,与TT纯合子相比,CC纯合子的DIO2(rs225014)多态性导致子宫内膜癌的发生风险增加了1.99倍。然而,Gpx1(rs1050450)和SEPP1(rs7579)基因多态性与子宫内膜癌的发生无相关性。这表明携带DIO2(rs225014)多态性的个体可能更容易发展子宫内膜癌[7]。

此外,Gpx1基因的表达与自闭症谱系障碍(ASD)相关。一项研究发现,ASD受试者中Gpx1基因的ALA5等位基因频率较高。此外,与ALA7变异体相比,ALA5变异体的Gpx1蛋白活性较低。这表明ALA5 Gpx1变异体可能在ASD中发挥作用,尽管自闭症的病因是多因素的,Gpx1酶可能参与了复杂的通路[8]。

最后,Gpx1基因在肝脏中编码线粒体谷胱甘肽过氧化物酶。一项研究发现,野生型小鼠肝脏中高度富集的线粒体部分具有H2O2还原GPX活性,而Gpx1敲除小鼠肝脏的线粒体中没有GPX活性。这表明线粒体GPX是Gpx1基因的产物[9]。

转录因子TFAP2C通过AP-2调控区域在Gpx1基因的启动子中调节Gpx1基因的表达。一项研究发现,在四个乳腺癌细胞系中,TFAP2C与Gpx1基因的启动子结合,并导致Gpx1表达的下调。TFAP2C的敲低导致Gpx1表达的消除。此外,TFAP2C结合的Gpx1启动子区域的CpG岛发生甲基化,导致TFAP2C无法结合并沉默Gpx1的表达。在TFAP2C和Gpx1表达之间存在着高度显著的相关性。这表明TFAP2C通过调节Gpx1的表达来影响细胞的氧化还原状态和对过氧化物的氧化应激敏感性,进一步影响了乳腺癌的发生和进展[10]。

综上所述,Gpx1基因在多种生物学过程中发挥重要作用,包括抗氧化应激、癌症发生和进展、听力损失和神经发育障碍。Gpx1基因的表达和功能受到多种因素的调控,包括遗传多态性、转录因子和DNA甲基化。Gpx1的研究有助于深入理解氧化应激和癌症发生机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Hu, Yajun, Benya, Richard V, Carroll, Robert E, Diamond, Alan M. . Allelic loss of the gene for the GPX1 selenium-containing protein is a common event in cancer. In The Journal of nutrition, 135, 3021S-3024S. doi:10.1093/jn/135.12.3021S. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16317164/
2. Zhang, Jian, Peng, Yuhui, He, Yan, Guo, Penxiang, Zhang, Qifang. 2021. GPX1-associated prognostic signature predicts poor survival in patients with acute myeloid leukemia and involves in immunosuppression. In Biochimica et biophysica acta. Molecular basis of disease, 1868, 166268. doi:10.1016/j.bbadis.2021.166268. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34536536/
3. Wang, Xu, Han, Mingzhi, Wang, Shuai, Li, Xingang, Wang, Jian. 2022. Targeting the splicing factor NONO inhibits GBM progression through GPX1 intron retention. In Theranostics, 12, 5451-5469. doi:10.7150/thno.72248. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35910786/
4. Zhao, Yangjing, Wang, Hui, Zhou, Jingdong, Shao, Qixiang. 2022. Glutathione Peroxidase GPX1 and Its Dichotomous Roles in Cancer. In Cancers, 14, . doi:10.3390/cancers14102560. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35626163/
5. Li, J Y, Jiao, J, Chen, G S, Zhang, H L, Yu, S F. . [Association between GPX1 gene polymorphisms and noise-induced hearing loss]. In Zhonghua lao dong wei sheng zhi ye bing za zhi = Zhonghua laodong weisheng zhiyebing zazhi = Chinese journal of industrial hygiene and occupational diseases, 38, 116-120. doi:10.3760/cma.j.issn.1001-9391.2020.02.008. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32306674/
6. Król, Magdalena B, Galicki, Michał, Grešner, Peter, Wąsowicz, Wojciech, Gromadzińska, Jolanta. 2018. The ESR1 and GPX1 gene expression level in human malignant and non-malignant breast tissues. In Acta biochimica Polonica, 65, 51-57. doi:10.18388/abp.2016_1425. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29543921/
7. Janowska, Magdalena, Potocka, Natalia, Paszek, Sylwia, Zawlik, Izabela, Kluz, Tomasz. 2022. An Assessment of GPX1 (rs1050450), DIO2 (rs225014) and SEPP1 (rs7579) Gene Polymorphisms in Women with Endometrial Cancer. In Genes, 13, . doi:10.3390/genes13020188. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35205233/
8. Carducci, Federica, Ardiccioni, Chiara, Fiorini, Rosamaria, Barucca, Marco, Biscotti, Maria Assunta. 2022. The ALA5/ALA6/ALA7 repeat polymorphisms of the glutathione peroxidase-1 (GPx1) gene and autism spectrum disorder. In Autism research : official journal of the International Society for Autism Research, 15, 215-221. doi:10.1002/aur.2655. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34997988/
9. Esworthy, R S, Ho, Y S, Chu, F F. . The Gpx1 gene encodes mitochondrial glutathione peroxidase in the mouse liver. In Archives of biochemistry and biophysics, 340, 59-63. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9126277/
10. Kulak, M V, Cyr, A R, Woodfield, G W, Domann, F E, Weigel, R J. 2012. Transcriptional regulation of the GPX1 gene by TFAP2C and aberrant CpG methylation in human breast cancer. In Oncogene, 32, 4043-51. doi:10.1038/onc.2012.400. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22964634/