Smarcd1-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Smarcd1-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-17084

品系全称

C57BL/6JCya-Smarcd1em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-83797-Smarcd1-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Smarcd1-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-17084) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
SWI/SNF related BAF chromatin remodeling complex subunit D1
基因别称
Baf60a,D15Kz1
染色体号
Chr 15 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_031842 | Ensembl: ENSMUST00000023759
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 7~9
敲除长度
~1.5 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
SMARCD1,也称为BAF60a,是一种重要的SWI/SNF染色质重塑复合物家族成员。SWI/SNF复合物是一类ATP依赖的染色质重塑因子,通过改变染色质结构来调节基因表达,参与细胞分化和发育等多种生物学过程[9]。SMARCD1作为SWI/SNF复合物的一部分,通过与其他蛋白质相互作用,影响基因的转录调控。研究表明,SMARCD1在多种肿瘤的发生和发展中发挥重要作用,包括肺癌、舌癌、膀胱癌和胶质母细胞瘤等。

在肺癌中,研究发现mSWI/SNF复合物活性调节POU2F3基因的表达,而POU2F3阳性的小细胞肺癌(SCLC)对mSWI/SNF复合物具有高度依赖性。化学方法干扰mSWI/SNF ATP酶活性可以抑制所有POU2F3阳性的SCLC细胞增殖,而通过BRD9降解干扰非经典BAF(ncBAF)则对纯非神经内分泌POU2F3-SCLC有效。mSWI/SNF复合物靶向并维持POU2F3介导的基因调控网络中关键基因位点的可及性。临床级药物学方法干扰SMARCA4/2 ATP酶和BRD9可以降低POU2F3-SCLC肿瘤生长并增加体内生存率[1]。

在舌癌中,研究发现突变型p53可以转录激活SMARCD1基因,导致SMARCD1表达升高。SMARCD1敲低可以显著降低舌癌细胞系的肿瘤发生特性,包括细胞活力、形成集落的能力和细胞迁移能力。在舌癌和其他癌症类型中,肿瘤样本相对于正常样本的SMARCD1转录水平显著升高。SMARCD1表达升高预示着头颈部鳞状细胞癌(HNSCC)肿瘤中存在错义p53突变的患者的生存率较低[2]。

在肝细胞中,研究发现SMARCD1表达降低可以触发细胞衰老并诱导脂质积累。棕榈酸处理和高脂饮食导致SMARCD1表达显著降低,进而诱导肝细胞和肝脏中的细胞衰老和脂质积累。这些结果提示,SMARCD1在预防与生活方式相关的疾病中可能具有潜在的应用价值[3]。

在淋巴细胞发育中,研究发现SMARCD1亚基对于从多能祖细胞中确定淋巴细胞命运至关重要。急性删除SMARCD1导致淋巴减少,特征为早期淋巴细胞祖细胞和成熟的B和T细胞几乎完全缺失,而髓系和红细胞谱系保持不变。SMARCD1对于在小鼠多能祖细胞中协调激活淋巴基因特征至关重要。这是通过与E2a转录因子在近端启动子上的相互作用和调节远端增强子的活性来实现的。这些发现将SMARCD1确定为一种关键的染色质重塑因子,它控制着淋巴细胞的命运[4]。

在膀胱癌中,研究发现microRNA-99a-5p可以通过靶向SMARCD1来诱导耐药膀胱癌细胞中的细胞衰老。与亲本细胞相比,miR-99a-5p在耐药细胞中被下调。在功能获得研究中,miR-99a-5p抑制细胞活力并恢复对吉西他滨的敏感性。SMARCD1被选为miR-99a-5p的候选基因。双荧光素酶报告基因实验表明,miR-99a-5p直接调节SMARCD1。使用si-RNAs进行的功能缺失研究揭示了细胞功能的抑制和吉西他滨敏感性的恢复。miR-99a-5p过表达和SMARCD1敲低也抑制了体内的耐药细胞。此外,β-半乳糖苷酶染色显示,miR-99a-5p诱导和SMARCD1抑制有助于细胞衰老。因此,肿瘤抑制因子miR-99a-5p通过靶向SMARCD1来诱导耐药膀胱癌细胞中的细胞衰老[5]。

在乳腺癌中,研究发现SMARCD1是一种“Goldilocks”转移修饰因子。SMARCD1 mRNA是所有三种RNA结合蛋白的关键靶点。令人惊讶的是,SMARCD1的高和低表达都与积极的治疗结果相关,而中等表达则显著降低了生存率。应用进化中“必需基因”的理论,确定了另外50个基因,这些基因跨越多个细胞过程,并且必须在离散的表达窗口内维持,才能发生转移。在SMARCD1的情况下,其表达水平的小幅变化显著降低了实验室小鼠模型中的转移,并改变了与ER+/HER2富集型乳腺癌亚型相关的剪接程序。亚型特异性“Goldilocks”转移修饰基因的发现引入了一类新的基因,并可能成为一组新的治疗靶点,当在治疗上“推动”任何方向时,都可能显著改善晚期患者的预后[6]。

在骨代谢中,研究发现EGFR、CALM3和SMARCD1基因多态性与白人女性的骨密度(BMD)相关。在这项基于人群的调查中,CALM3基因的多态性与股骨颈骨密度(FNK BMD)、髋关节BMD和脊柱BMD显著相关。年龄和吸烟状况也影响了BMD水平,并在统计分析中进行了校正。EGFR、CALM3和SMARCD1在白人女性的骨和/或脂肪代谢中发挥作用。然而,这些基因多态性与身体成分水平(包括BMD)之间的相关性仍有待确定。在这项研究中,选择了EGFR、CALM3和SMARCD1中的44个单核苷酸多态性(SNPs)进行与身体成分水平相关的关联分析。相关分析使用Pearson乘积矩相关系数和Spearman秩相关检验进行评估,并且使用PLINK中实现的Wald检验对家庭错误进行了校正。研究数据表明,白人女性中CALM3基因的多态性可能与髋关节、脊柱和股骨颈的BMD差异有关[7]。

在神经发育中,研究发现SMARCD1突变导致一种神经发育障碍(NDD),表现为发育迟缓、智力障碍、肌张力减退、喂养困难和手脚小。家系外显子组测序证明,五个个体中的四个个体的突变是新生突变。其他SWI/SNF成分的突变会导致Coffin-Siris综合征、Nicolaides-Baraitser综合征或其他综合征和非综合征NDD。尽管这些个体存在畸形和一些临床重叠,但他们缺乏这些综合征的典型面部畸形。为了深入了解SMARCD1在神经元中的作用,研究人员研究了成年果蝇蘑菇体(MB)中形成记忆后神经元中的Drosophila同源物Bap60。在成年果蝇的MB中靶向敲低Bap60导致长期记忆缺陷。蘑菇体特异性转录组分析表明,Bap60在幼虫果蝇中需要形成神经元功能和发育相关基因的上下文依赖性表达,此时突触连接正在积极地对经验做出反应。综上所述,研究人员发现了一种由SMARCD1突变引起的NDD,并确定了SMARCD1同源物Bap60在调节神经发育基因方面的作用,这些基因在成年果蝇脑发育的关键时间窗口内形成,需要神经元回路来学习和记忆[8]。

在胶质母细胞瘤中,研究发现SMARCD1抑制人类胶质母细胞瘤细胞的恶性表型,并与Notch1存在交叉对话。SMARCD1敲低可以促进细胞增殖、侵袭和化疗耐药性,而SMARCD1过表达则可以抑制肿瘤的恶性表型。机制研究表明,SMARCD1过表达可以降低Notch1的表达,而Notch1敲低则可以增加SMARCD1的表达。因此,SMARCD1和Notch1之间的交叉对话对于调节胶质母细胞瘤的恶性表型至关重要。此外,靶向SMARCD1可能成为人类胶质母细胞瘤治疗的一种潜在策略[9]。

综上所述,SMARCD1作为一种重要的SWI/SNF染色质重塑复合物家族成员,在多种生物学过程中发挥重要作用,包括肿瘤发生、骨代谢和神经发育等。SMARCD1的表达水平异常与多种疾病的预后相关,使其成为潜在的治疗靶点。深入研究SMARCD1的功能和作用机制,有助于揭示疾病的发生机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Duplaquet, Leslie, So, Kevin, Ying, Alexander W, Kadoch, Cigall, Oser, Matthew G. 2024. Mammalian SWI/SNF complex activity regulates POU2F3 and constitutes a targetable dependency in small cell lung cancer. In Cancer cell, 42, 1352-1369.e13. doi:10.1016/j.ccell.2024.06.012. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39029464/
2. Adduri, Raju S R, George, Sara A, Kavadipula, Padmavathi, Bashyam, Murali D. 2019. SMARCD1 is a transcriptional target of specific non-hotspot mutant p53 forms. In Journal of cellular physiology, 235, 4559-4570. doi:10.1002/jcp.29332. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31637714/
3. Inoue, Chisato, Zhao, Chong, Tsuduki, Yumi, Nomura, Masatoshi, Katakura, Yoshinori. 2017. SMARCD1 regulates senescence-associated lipid accumulation in hepatocytes. In NPJ aging and mechanisms of disease, 3, 11. doi:10.1038/s41514-017-0011-1. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28868154/
4. Priam, Pierre, Krasteva, Veneta, Rousseau, Philippe, Kmita, Marie, Lessard, Julie A. 2024. Smarcd1 subunit of SWI/SNF chromatin-remodeling complexes collaborates with E2a to promote murine lymphoid specification. In Developmental cell, 59, 3124-3140.e8. doi:10.1016/j.devcel.2024.08.007. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39232562/
5. Tamai, Motoki, Tatarano, Shuichi, Okamura, Shunsuke, Enokida, Hideki, Yoshino, Hirofumi. 2022. microRNA-99a-5p induces cellular senescence in gemcitabine-resistant bladder cancer by targeting SMARCD1. In Molecular oncology, 16, 1329-1346. doi:10.1002/1878-0261.13192. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35148461/
6. Ross, Christina, Gong, Li-Yun, Jenkins, Lisa M, Majocha, Megan, Hunter, Kent. 2024. SMARCD1 is a "Goldilocks" metastasis modifier. In bioRxiv : the preprint server for biology, , . doi:10.1101/2024.01.24.577061. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38410477/
7. Zhou, Qiu-Hong, Zhao, Lan-Juan, Wang, Ping, Ye, An, Zhou, Bo-Ting. 2014. Comprehensive analysis of the association of EGFR, CALM3 and SMARCD1 gene polymorphisms with BMD in Caucasian women. In PloS one, 9, e112358. doi:10.1371/journal.pone.0112358. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25396734/
8. Nixon, Kevin C J, Rousseau, Justine, Stone, Max H, Kramer, Jamie M, Campeau, Philippe M. 2019. A Syndromic Neurodevelopmental Disorder Caused by Mutations in SMARCD1, a Core SWI/SNF Subunit Needed for Context-Dependent Neuronal Gene Regulation in Flies. In American journal of human genetics, 104, 596-610. doi:10.1016/j.ajhg.2019.02.001. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30879640/
9. Zhu, Yihao, Wang, Handong, Fei, Maoxing, Niu, Wenhao, Zhang, Li. 2020. Smarcd1 Inhibits the Malignant Phenotypes of Human Glioblastoma Cells via Crosstalk with Notch1. In Molecular neurobiology, 58, 1438-1452. doi:10.1007/s12035-020-02190-z. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33190170/