Fgf16-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Fgf16-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-16984

品系全称

C57BL/6JCya-Fgf16em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-80903-Fgf16-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Fgf16-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-16984) were purchased from Cyagen.
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cKO小鼠库模型
MAPK信号通路
PI3K-Akt信号通路

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
fibroblast growth factor 16
基因别称
Fgf4c
染色体号
Chr X (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_030614 | Ensembl: ENSMUST00000033581
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 2
敲除长度
~1.0 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1931627Males hemizygous for one null allele show reduced fetal cardiomyocyte proliferation and postnatal cardiomyocyte numbers. Males hemizygous for another null allele die in midgestation with craniofacial and heart defects including cardiac hemorrhage, chamber dilation, thin walls and poor trabeculation.
FGF16,也称为成纤维细胞生长因子16,是成纤维细胞生长因子(FGF)超家族中的一员。FGF家族是一类多功能生长因子,在胚胎发育、组织修复和疾病发生中发挥着重要作用。FGF16最初在人类和鼠的心脏样本中被发现,具有广泛的组织表达模式,主要在棕色脂肪组织、心脏中表达,在脑、嗅觉球、内耳、肌肉、胸腺、胰腺、脾脏、胃、小肠和生殖器官(睾丸和卵巢)中也有低水平的表达。FGF16在多个组织中表达广泛,表明其在干细胞维持、增殖、细胞命运决定和代谢中具有多方面的作用[2]。

在肺癌中,FGF16被发现过度表达,并且其高表达水平与miR-520b的低水平呈负相关。miR-520b能够直接结合到FGF16 mRNA的3'-非翻译区(3'UTR),导致其在细胞中的mRNA裂解。miR-520b通过竞争性内源RNA(ceRNA)机制减少肺癌的生长,而miR-520b的抑制剂anti-miR-520b则通过抑制miR-520b的作用来促进肺癌的生长。此外,使用RNA干扰技术沉默FGF16的表达能够显著抑制anti-miR-520b加速的肺癌生长。因此,FGF16可能是miR-520b在肺癌中的新靶基因,并且FGF16可能作为肺癌的新的生物标志物,miR-520b/FGF16轴可能在临床治疗中发挥作用[1]。

在乳腺癌中,FGF16的表达升高,并且它能够诱导上皮-间质转化(EMT),这是癌症转移的先决条件。FGF16通过改变一组细胞外基质基因的mRNA表达来促进细胞侵袭。癌细胞在EMT过程中通常表现出代谢改变以维持其持续增殖和能量密集型迁移。同样,FGF16诱导了向有氧糖酵解的显著代谢转变。在分子水平上,FGF16增强了GLUT3的表达,以促进葡萄糖进入细胞,并通过有氧糖酵解产生乳酸。双功能蛋白6-磷酸果糖-2-激酶/果糖-2,6-双磷酸酶4(PFKFB4)被发现是FGF16驱动糖酵解和随后侵袭的介导因子。此外,PFKFB4被发现对促进乳酸诱导的细胞侵袭起着关键作用,因为沉默PFKFB4降低了乳酸水平,使细胞侵袭性降低。这些发现支持了FGF16-GLUT3-PFKFB4轴的任何成员的潜在临床干预,以控制乳腺癌细胞的侵袭[3]。

在先天性心脏病(CHD)中,FGF16的调节异常被发现与家族性房间隔缺损(ASD)有关。GATA4基因的突变是ASD的常见原因,而GATA4突变导致FGF16转录受损。在携带GATA4基因突变的家族队列中,使用人类诱导多能干细胞(iPSCs)和人类胚胎干细胞(ESCs)分化为心肌细胞,发现GATA4突变的心肌细胞增殖能力受损,而FGF16的过表达能够挽救这种增殖缺陷。这表明GATA4-FGF16轴在ASD中发挥着重要作用,并且为CHD的治疗提供了新的见解[4]。

在心脏再生中,Mettl3介导的m6A修饰对FGF16的转录后调节起着关键作用。Mettl3的表达下调能够显著增加心肌细胞的增殖并加速心脏再生,而Mettl3的过表达则抑制了心肌细胞的增殖和心脏再生。FGF16被鉴定为Mettl3介导的m6A修饰的下游靶点,并且Mettl3通过m6A-Ythdf2依赖机制负向调节FGF16的mRNA表达。沉默FGF16抑制了心肌细胞的增殖,而过表达ΔFgf16(其中m6A一致性序列突变)则显著增加了心肌细胞的增殖并加速了心脏再生。这些数据表明,Mettl3通过m6A-Ythdf2依赖途径下调FGF16的mRNA水平,从而控制心肌细胞增殖和心脏再生[5]。

在鱼类脑发育中,FGF16对于GABA能神经元的特化和少突胶质细胞的分化是必需的。FGF16的敲低导致前脑和中脑的细胞增殖减少,并且FGF16对于腹侧端脑和间脑的发育也是必需的。FGF16还对于前脑中γ-氨基丁酸(GABA)能中间神经元和少突胶质细胞的特化和分化是必需的,但对于谷氨酸能神经元的特化不是必需的。FGF和Hedgehog(Hh)信号通路之间的交叉对话对于GABA能中间神经元和少突胶质细胞的特化至关重要。FGF16在前脑中的表达受到Hh和FGF19信号通路的下游途径的调控。这些结果表明,FGF16信号通路,由Hh-FGF19信号通路下游途径调控,参与了前脑的发育[6]。

在比较基因组学研究中,FGF16的直系同源基因在多种脊椎动物中被鉴定,包括黑猩猩、鸡和斑马鱼。这些直系同源基因在氨基酸水平上与人类FGF16具有较高的同源性。FGF16基因的启动子区域包含TCF/LEF结合位点和TATA框,这表明FGF16基因是WNT/β-catenin信号通路的进化保守靶点,与FGF18和FGF20基因类似。这些发现表明FGF16、FGF18和FGF20是肿瘤学和再生医学领域的潜在药物基因组学靶点[7]。

在内耳发育中,FGF16的表达对于听小骨和前庭发育至关重要。FGF16在耳蜗管和半规管中的发育过程中表达,并且在螺旋突上皮细胞中有表达。为了确定FGF16在内耳发育中的作用,研究人员生成了一种FGF16(IRESCre)等位基因,该等位基因在内耳的三个听小骨、部分半规管和螺旋突上皮细胞中表达。这种小鼠品系对于在内耳组织中基因敲除非常有用[8]。

在腭裂(CP)的发生中,FGF16的DNA超甲基化被发现与腭融合失败有关。在ATRA诱导的CP小鼠模型中,FGF16和Tbx22基因的超甲基化被发现与腭融合相关。这些结果提示FGF16和Tbx22的超甲基化可能与CP的发生机制有关[9]。

在斑马鱼胸鳍芽形成中,FGF16对于胸鳍芽的发育是必需的。FGF16在鳍芽的顶端外胚层脊(AER)中表达,FGF16功能的敲低导致没有鳍芽的出芽。FGF16对于鳍芽间充质中的细胞增殖和AER中的细胞分化和分化是必需的。FGF16作为间充质因子FGF10的下游信号分子,在AER中诱导FGF4和FGF8的表达。FGF16在AER中与shh在极化活动区(ZPA)中的shh相互作用,以诱导和/或维持彼此的表达。这些发现表明FGF16是一种新发现的AER因子,在介导AER-间充质和AER-ZPA的相互作用中发挥着关键作用[10]。

综上所述,FGF16是一种多功能生长因子,在多种生物学过程中发挥着重要作用。FGF16在肺癌、乳腺癌、先天性心脏病、心脏再生、脑发育、内耳发育和腭裂的发生中发挥着重要作用。FGF16的表达和功能受到多种因素的调节,包括miR-520b、GATA4、Mettl3、Hh信号通路等。FGF16的研究有助于深入理解FGF家族的生物学功能和疾病发生机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. He, Wenfeng, Liu, Xia, Luo, Zhijie, Li, Longmei, Fang, Xisheng. 2021. FGF16 regulated by miR-520b enhances the cell proliferation of lung cancer. In Open medicine (Warsaw, Poland), 16, 419-427. doi:10.1515/med-2021-0232. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33758783/
2. Rigueur, Diana. 2024. A primer for Fibroblast Growth Factor 16 (FGF16). In Differentiation; research in biological diversity, 140, 100817. doi:10.1016/j.diff.2024.100817. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39632143/
3. Kar, Swarnali, Maji, Nilanjana, Sen, Kamalika, Basu, Gautam, Basu, Moitri. . Reprogramming of glucose metabolism via PFKFB4 is critical in FGF16-driven invasion of breast cancer cells. In Bioscience reports, 43, . doi:10.1042/BSR20230677. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37222403/
4. Ye, Lingqun, Yu, You, Zhao, Zhen-Ao, Lei, Wei, Hu, Shijun. . Patient-specific iPSC-derived cardiomyocytes reveal abnormal regulation of FGF16 in a familial atrial septal defect. In Cardiovascular research, 118, 859-871. doi:10.1093/cvr/cvab154. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33956078/
5. Jiang, Fu-Qing, Liu, Kun, Chen, Jia-Xuan, Cai, Dongqing, Qi, Xu-Feng. 2022. Mettl3-mediated m6A modification of Fgf16 restricts cardiomyocyte proliferation during heart regeneration. In eLife, 11, . doi:10.7554/eLife.77014. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36399125/
6. Miyake, Ayumi, Chitose, Tatsuya, Kamei, Eriko, Konishi, Morichika, Itoh, Nobuyuki. 2014. Fgf16 is required for specification of GABAergic neurons and oligodendrocytes in the zebrafish forebrain. In PloS one, 9, e110836. doi:10.1371/journal.pone.0110836. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25357195/
7. Katoh, Yuriko, Katoh, Masaru. . Comparative genomics on FGF16 orthologs. In International journal of molecular medicine, 16, 959-63. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16211270/
8. Hatch, Ekaterina P, Urness, Lisa D, Mansour, Suzanne L. . Fgf16(IRESCre) mice: a tool to inactivate genes expressed in inner ear cristae and spiral prominence epithelium. In Developmental dynamics : an official publication of the American Association of Anatomists, 238, 358-66. doi:10.1002/dvdy.21681. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18773497/
9. Shu, Xuan, Dong, Zejun, Cheng, Liuhanghang, Shu, Shenyou. 2019. DNA hypermethylation of Fgf16 and Tbx22 associated with cleft palate during palatal fusion. In Journal of applied oral science : revista FOB, 27, e20180649. doi:10.1590/1678-7757-2018-0649. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31596367/
10. Nomura, Ryohei, Kamei, Eriko, Hotta, Yuuhei, Miyake, Ayumi, Itoh, Nobuyuki. 2006. Fgf16 is essential for pectoral fin bud formation in zebrafish. In Biochemical and biophysical research communications, 347, 340-6. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16815307/