Rictor-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Rictor-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-16854

品系全称

C57BL/6JCya-Rictorem1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-78757-Rictor-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Rictor-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-16854) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型
mTOR信号通路

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
RPTOR independent companion of MTOR, complex 2
基因别称
4921505C17Rik,6030405M08Rik,AVO3,D530039E11Rik
染色体号
Chr 15 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_030168 | Ensembl: ENSMUST00000061656
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 4~5
敲除长度
~2.2 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1926007Mice homozygous for a null allele exhibit embryonic lethality during organogenesis associated with abnormal placental morphology.
基因Rictor,也称为Rapamycin-insensitive companion of mTOR,是哺乳动物雷帕霉素靶点复合物2(mTORC2)的一个关键组成部分。mTORC2是一个重要的信号传导复合物,它在调节细胞生长、代谢、存活和增殖等方面发挥着重要作用。Rictor在mTORC2中作为一个支架蛋白,与mTOR、Sin1和mLST8等蛋白质相互作用,共同构成mTORC2复合物。Rictor的表达和功能失调与多种癌症的发生和发展密切相关,因此它已成为癌症研究中的一个热点。

在黑色素瘤的治疗中,BRAF/MEK抑制剂(BRAF/MEKi)是目前常用的靶向药物。然而,随着治疗的进行,黑色素瘤细胞往往会出现耐药性。研究表明,Rictor/mTORC2在BRAFV600E黑色素瘤细胞中下调,与患者的不良预后相关。Rictor下调的肿瘤细胞对BRAF/MEKi的敏感性降低,并在长期药物暴露后出现耐药性。此外,Rictor下调的细胞还表现出线粒体呼吸和NAMPT表达的增强,通过抑制NAMPT和线粒体电子传递链(ETC)可以恢复细胞对BRAF/MEKi的敏感性。这些发现揭示了mTORC2在黑色素瘤早期适应性阶段的肿瘤抑制功能,并指出NAMPT-ETC轴是低Rictor肿瘤的潜在治疗靶点[1]。

Rictor在肝细胞癌(HCC)中同样发挥着重要作用。研究发现,RBM45是一种在HCC中差异表达的RNA结合基序蛋白(RBM),它通过直接靶向参与长链脂肪酸合成的关键酶ACSL1和ACSL4,以及Rictor,来影响HCC细胞的脂质代谢。RBM45还通过激活脂肪酸β氧化酶CPT1A促进脂质降解。临床研究表明,RBM45与HCC患者的体质量指数呈正相关。抑制RBM45或使用PI3K/AKT/mTOR通路抑制剂可以显著抑制HCC细胞增殖和脂质代谢重编程,并增强细胞凋亡。这表明RBM45在HCC脂质代谢重编程中具有重要作用,并具有治疗HCC的潜力[2]。

Rictor还在HCC的恶性转化中发挥着重要作用。研究发现,Rictor通过与野生型p53(p53wt)结合,并抑制p53wt的活性,促进肝细胞的恶性转化。Rictor在HCC发展过程中表现出核质穿梭,从早期病变中的核转移到HCC中的细胞质。此外,Rictor还受到肝脏富集的miR-192的直接调控,miR-192-Rictor-p53-miR-192信号轴的破坏在人类和鼠类HCC模型中均被观察到。临床分析表明,低miR-192和高Rictor与患者的较短总生存期和较晚的临床分期相关。在体内实验中,过表达miR-192的异种移植肿瘤显示出较低的Rictor表达水平和较高的p53活性,肿瘤生长速度较慢。这表明Rictor在HCC中发挥着重要的致癌作用,并且针对Rictor的治疗策略可能具有临床应用价值[3]。

除了在癌症中的作用,Rictor还参与了肝脏再生的调控。研究发现,mTORC2在肝脏再生过程中促进肝脏脂质的合成。在mTORC2缺陷的肝脏中,肝脏再生过程中甘油三酯(TG)和脂肪酸(FA)的水平升高。Rictor肝脏特异性敲除小鼠和对照组小鼠进行部分肝切除术后,检测到TG和FA的含量在肝脏再生过程中增加。FA代谢相关基因和蛋白的表达分析表明,FA主要在肝脏再生过程中被运输到肝细胞中。mTORC2缺陷的肝脏中,过氧化物酶体增殖物激活受体α(PPAR-α)通路下调,导致TG积累。PPAR-α激动剂WY-14643可以挽救mTORC2缺陷小鼠的肝脏再生和生存率。此外,脂质组学分析表明,mTORC2缺陷显著降低了神经酰胺(GluCer)的含量。GluCer可以激活PPAR-α。体内实验表明,GluCer处理可以恢复mTORC2缺陷组的再生能力和生存率。这表明mTORC2通过GluCer-PPAR-α通路促进肝脏再生过程中的FA代谢,并揭示mTORC2在脂质代谢中的新功能[4]。

Rictor还在肺癌的进展和转移中发挥着重要作用。研究发现,Rictor基因的扩增和Rictor蛋白的过表达与mTORC2的激活相关,从而促进细胞存活和迁移。RICTOR基因的扩增或Rictor蛋白的过表达可以作为mTORC2激活的标志,并具有作为肺癌治疗潜在药物靶点的潜力。尽管Rictor和Rictor-mTOR相互作用的特异性抑制剂目前仍处于临床前阶段,但它们似乎可以作为一种有潜力的新型治疗方法,以减少肿瘤细胞的迁移和转移形成[5]。

Rictor的扩增还与靶向治疗和药物耐药性相关。研究表明,RICTOR基因的扩增与酪氨酸激酶抑制剂(TKIs)耐药性相关,这可能是由于受体酪氨酸激酶(RTK)共激活的复杂网络影响了癌症的表型和肿瘤对靶向治疗的反应。Rictor作为PI3K-AKT通路的关键效应分子,其扩增常与不良的临床结果相关。靶向Rictor作为补充疗法,可以抑制RTK共激活,为治疗癌症提供新的思路[6]。

除了在癌症中的作用,Rictor还参与了血压的调节。研究发现,在脑和脂肪中删除Rictor会导致血压升高。Rictor敲除小鼠的24小时平均动脉压升高,夜间血压下降的生理性下降受损。同时,心率在夜间升高,运动活性升高,与血压变化模式相似。这种表型与轻度心肌细胞肥大、脂肪细胞中利钠肽和其受体表达降低相关。此外,血管周围脂肪组织中时钟基因的表达减少或相位改变。这表明Rictor/mTORC2对于血管、脂肪细胞和脑之间的相互作用至关重要,以调节生理结果,如血压和运动活性[7]。

此外,Rictor还参与了干扰素(IFN)依赖性基因转录和抗增殖反应的生成。研究发现,在Rictor基因靶向破坏的细胞中,I型IFN诱导的STAT激活减弱。Rictor或Sin1的敲低导致STAT通路的缺陷和STAT-DNA结合复合物的减少,进而导致IFN诱导基因的表达降低。这些发现表明,Rictor/Sin1复合物在I型IFN信号传导和I型IFN抗肿瘤反应的生成中发挥着重要作用[8]。

综上所述,基因Rictor作为mTORC2复合物的一个关键组成部分,在细胞生长、代谢、存活、增殖、肿瘤发生、发展和转移等方面发挥着重要作用。Rictor的表达和功能失调与多种癌症的发生和发展密切相关,并可能成为癌症治疗的新靶点。此外,Rictor还参与了肝脏再生、血压调节和干扰素依赖性基因转录等生物学过程。因此,深入研究Rictor的生物学功能和调控机制对于理解细胞信号传导、肿瘤发生和疾病治疗具有重要意义。

参考文献:
1. Ponzone, Luca, Audrito, Valentina, Landi, Claudia, Cavallo, Federica, Calautti, Enzo. 2024. RICTOR/mTORC2 downregulation in BRAFV600E melanoma cells promotes resistance to BRAF/MEK inhibition. In Molecular cancer, 23, 105. doi:10.1186/s12943-024-02010-1. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38755661/
2. Wang, Chun, Chen, Zhihang, Yi, Yun, Chang, Ying, Zhao, Qiu. 2023. RBM45 reprograms lipid metabolism promoting hepatocellular carcinoma via Rictor and ACSL1/ACSL4. In Oncogene, 43, 328-340. doi:10.1038/s41388-023-02902-4. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38040804/
3. Wang, Chun, Kang, Hui, Yi, Yun, Zhao, Qiu, Chang, Ying. 2023. Rictor mediates p53 deactivation to facilitate the malignant transformation of hepatocytes and promote hepatocarcinogenesis. In Journal of translational medicine, 21, 919. doi:10.1186/s12967-023-04799-9. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38110956/
4. Zhang, Lingling, Li, Yanqiu, Wang, Ying, Liu, Leiming, Ju, Zhenyu. 2022. mTORC2 Facilitates Liver Regeneration Through Sphingolipid-Induced PPAR-α-Fatty Acid Oxidation. In Cellular and molecular gastroenterology and hepatology, 14, 1311-1331. doi:10.1016/j.jcmgh.2022.07.011. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35931382/
5. Szalai, Fatime, Sztankovics, Dániel, Krencz, Ildikó, Sebestyén, Anna, Khoor, Andras. 2024. Rictor-A Mediator of Progression and Metastasis in Lung Cancer. In Cancers, 16, . doi:10.3390/cancers16030543. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38339294/
6. Zhao, Deze, Jiang, Man, Zhang, Xiaochun, Hou, Helei. 2020. The role of RICTOR amplification in targeted therapy and drug resistance. In Molecular medicine (Cambridge, Mass.), 26, 20. doi:10.1186/s10020-020-0146-6. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32041519/
7. Drägert, Katja, Bhattacharya, Indranil, Pellegrini, Giovanni, Battegay, Edouard, Haas, Elvira. 2015. Deletion of Rictor in brain and fat alters peripheral clock gene expression and increases blood pressure. In Hypertension (Dallas, Tex. : 1979), 66, 332-9. doi:10.1161/HYPERTENSIONAHA.115.05398. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26101345/
8. Kaur, Surinder, Kroczynska, Barbara, Sharma, Bhumika, Fish, Eleanor N, Platanias, Leonidas C. 2014. Critical roles for Rictor/Sin1 complexes in interferon-dependent gene transcription and generation of antiproliferative responses. In The Journal of biological chemistry, 289, 6581-6591. doi:10.1074/jbc.M113.537852. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24469448/