智鼠故事 
C57BL/6JCya-Gptem1flox/Cya 条件性基因敲除小鼠
复苏/繁育服务
产品名称：
Gpt-flox
产品编号：
S-CKO-16431
品系背景：
C57BL/6JCya
* 使用本品系发表的文献需注明：Gpt-flox mice (Strain S-CKO-16431) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
只
基本信息
品系名称
C57BL/6JCya-Gptem1flox/Cya
品系编号
CKOCMP-76282-Gpt-B6J-VA
产品编号
S-CKO-16431
基因名
Gpt
品系背景
C57BL/6JCya
基因别称
ALT；ALT1；Gpt1；Gpt-1；1300007J06Rik；2310022B03Rik
NCBI号
修饰方式
条件性基因敲除
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成，建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献，以获取最准确的表型信息。
小鼠表型
MGI:95802 Electrophoretic variants are detected in C57BL/6, BALB/c and DBA/2 (a allele); in MA/J and NZB/Bl (b allele). M. m. molossinus and M. m. castaneus have either the b or c allele. In liver, GPT1 activity rises dramatically at 12-19 days to adult levels.
质控标准
精子检测
① 冷冻前验证精子活力观察
② 冷冻验证每批次进行复苏验证
品系状态
活体
环境标准
SPF
供应地区
中国
品系详情
Gpt位于小鼠的15号染色体，采用基因编辑技术，通过高通量电转受精卵方式，获得Gpt基因条件性敲除小鼠，性成熟后取精子冻存。
Gpt-flox小鼠是由赛业生物（Cyagen）采用基因编辑技术构建的条件性敲除小鼠。Gpt基因位于小鼠15号染色体上，由11个外显子组成，其中ATG起始密码子在1号外显子，TGA终止密码子在11号外显子。条件性敲除区域（cKO区域）位于1号外显子至11号外显子，包含1491 bp编码序列。删除该区域会导致小鼠Gpt基因功能的丧失。此外，cKO区域没有其他已知基因，因此不会对其他基因的功能产生影响。
Gpt-flox小鼠模型的构建过程包括将核糖核蛋白（RNP）和靶向载体共同注入受精卵。随后，对出生的小鼠进行PCR和测序分析进行基因型鉴定。此外，Gpt基因敲除小鼠可用于研究Gpt基因在小鼠体内的功能，以及Gpt基因与相关疾病的关联性。
基因研究概述
gpt基因，也称为鸟嘌呤磷酸核糖转移酶基因，是一种编码鸟嘌呤磷酸核糖转移酶（GPT）的基因。GPT是一种重要的酶，参与嘌呤核苷酸的合成和代谢。GPT基因的表达和功能与多种生物学过程和疾病发生密切相关，包括癌症、基因突变和基因编辑等。
在癌症研究中，gpt基因的表达和功能与肿瘤的发生和发展密切相关。例如，在高风险神经母细胞瘤（NB）患者中，gpt基因的表达显著上调，与不良预后有强相关性。研究发现，gpt基因通过m6A-YTHDF1依赖机制抑制YWHAH表达，激活PI3K/AKT信号通路，促进NB细胞活性[2]。此外，gpt基因还可以通过影响组蛋白修饰和染色质结构，调控基因表达和细胞功能，从而影响肿瘤的发生和发展。
在基因突变研究中，gpt基因突变是评估化学物质基因毒性的重要指标。例如，gpt delta转基因小鼠和大鼠模型被广泛应用于食品安全研究中，用于检测和评估化学物质的基因毒性。研究发现，gpt delta转基因动物对某些化学物质的敏感性较高，可以更准确地评估化学物质的基因毒性[1,3]。此外，gpt基因突变还可以用于研究氧化应激介导的基因突变机制，例如，研究发现8-羟基脱氧鸟苷（8-OHdG）可以诱导gpt基因突变，从而影响基因表达和细胞功能[5]。
在基因编辑研究中，gpt基因突变可以用于评估基因编辑技术的效率和安全性。例如，CRISPR基因编辑技术可以用于精确修改基因序列，但需要确保编辑的准确性和安全性。研究发现，gpt基因突变可以作为评估CRISPR基因编辑技术效率和安全性的一种指标，通过检测gpt基因突变可以评估CRISPR基因编辑技术的效率和潜在的风险[2,4]。
综上所述，gpt基因是一种重要的基因，参与多种生物学过程和疾病发生。gpt基因突变可以用于评估化学物质的基因毒性和基因编辑技术的效率和安全性。此外，gpt基因还可以用于研究氧化应激介导的基因突变机制。对gpt基因的研究有助于深入理解基因表达和细胞功能的调控机制，为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。
参考文献：
1. Nohmi, Takehiko. 2016. Past, Present and Future Directions of gpt delta Rodent Gene Mutation Assays. In Food safety (Tokyo, Japan), 4, 1-13. doi:10.14252/foodsafetyfscj.2015024. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32231899/
2. Qu, Yuanhao, Huang, Kaixuan, Cousins, Henry, Wang, Mengdi, Cong, Le. 2024. CRISPR-GPT: An LLM Agent for Automated Design of Gene-Editing Experiments. In bioRxiv : the preprint server for biology, , . doi:10.1101/2024.04.25.591003. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39463961/
3. Manjanatha, Mugimane G, Cao, Xuefei, Shelton, Sharon D, Mittelstaedt, Roberta A, Heflich, Robert H. . In vivo cII, gpt, and Spi⁻ gene mutation assays in transgenic mice and rats. In Methods in molecular biology (Clifton, N.J.), 1044, 97-119. doi:10.1007/978-1-62703-529-3_5. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23896873/
4. Schaefer, Moritz, Reichl, Stephan, Ter Horst, Rob, Bock, Christoph, Samwald, Matthias. 2024. GPT-4 as a biomedical simulator. In Computers in biology and medicine, 178, 108796. doi:10.1016/j.compbiomed.2024.108796. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38909448/
5. Kuroda, Ken, Ishii, Yuji, Takasu, Shinji, Nohmi, Takehiko, Umemura, Takashi. 2024. Possible contribution of 8-hydroxydeoxyguanosine to gene mutations in the kidney DNA of gpt delta rats following potassium bromate treatment. In Mutation research. Genetic toxicology and environmental mutagenesis, 894, 503729. doi:10.1016/j.mrgentox.2024.503729. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38432777/
