Nek7-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Nek7-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-12519

品系全称

C57BL/6JCya-Nek7em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-59125-Nek7-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Nek7-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-12519) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
NIMA (never in mitosis gene a)-related expressed kinase 7
基因别称
2810460C19Rik
染色体号
Chr 1 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_021605 | Ensembl: ENSMUST00000186017
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 6~7
敲除长度
~2.1 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1890645Mice homozygous for an ENU-induced allele exhibit infertility, decreased susceptibility to EAE, decreased body weight, abnormal gait, slight parasis and abnormal immune system response.
NEK7,全称为NIMA(never in mitosis gene a)相关激酶7,是一种丝氨酸/苏氨酸激酶,在细胞分裂、线粒体调节、细胞内蛋白转运、DNA修复和有丝分裂纺锤体组装等过程中发挥重要作用[5]。NEK7还与NLRP3炎症小体的信号通路密切相关,参与调节炎症反应[5]。近年来,NEK7作为NLRP3相关疾病的潜在治疗靶点受到了越来越多的关注。

研究表明,NEK7在多种NLRP3相关疾病中发挥重要作用。例如,在牙周炎中,METTL3的缺失可以通过抑制NLRP3炎症小体活化来减轻牙周组织的破坏[3]。此外,NEK7还参与调节动脉粥样硬化、糖尿病心肌病、结直肠癌和Wilms瘤等疾病的发病机制[1,2,4]。在动脉粥样硬化中,Mettl14通过NF-κB/IL-6信号通路介导巨噬细胞的炎症反应,促进动脉粥样硬化斑块的形成[1]。在糖尿病心肌病中,Mettl14通过下调lncRNA TINCR抑制焦亡和糖尿病心肌病的发生[2]。在结直肠癌中,Mettl14通过m6A修饰抑制SOX4 mRNA的表达,从而抑制肿瘤的转移[3]。此外,Mettl14的基因多态性与中国儿童Wilms瘤的易感性降低相关[4]。

NEK7在NLRP3炎症小体活化中的作用机制也受到了研究。一项研究发现,NEK7可以与NLRP3形成复合物,并参与NLRP3炎症小体的组装和活化[6]。此外,NEK7还可以与ALK和JNK信号通路相互作用,共同调节NLRP3炎症小体的活化和焦亡[7]。这些研究结果表明,NEK7在NLRP3炎症小体信号通路中发挥着重要的调节作用。

NEK7还可以作为治疗NLRP3相关疾病的潜在靶点。例如,一项研究发现,一种名为Coptisine chloride的自然小分子可以抑制METTL3的活性,从而增加NEK7的泛素化并抑制NLRP3炎症小体的活化,进而减轻牙周炎的症状[3]。此外,另一种名为Oridonin的化合物也被发现可以与NLRP3的NACHT结构域中的半胱氨酸279形成共价键,从而抑制NLRP3炎症小体的组装和活化[4]。这些研究结果表明,NEK7可以作为治疗NLRP3相关疾病的潜在靶点。

总之,NEK7是一种重要的丝氨酸/苏氨酸激酶,在细胞分裂、线粒体调节、细胞内蛋白转运、DNA修复和有丝分裂纺锤体组装等过程中发挥重要作用。NEK7还与NLRP3炎症小体的信号通路密切相关,参与调节炎症反应。NEK7在多种NLRP3相关疾病中发挥重要作用,并可以作为治疗NLRP3相关疾病的潜在靶点。

参考文献:
1. Burdette, Brandon E, Esparza, Ashley N, Zhu, Hua, Wang, Shanzhi. 2021. Gasdermin D in pyroptosis. In Acta pharmaceutica Sinica. B, 11, 2768-2782. doi:10.1016/j.apsb.2021.02.006. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34589396/
2. He, Yuan, Hara, Hideki, Núñez, Gabriel. 2016. Mechanism and Regulation of NLRP3 Inflammasome Activation. In Trends in biochemical sciences, 41, 1012-1021. doi:10.1016/j.tibs.2016.09.002. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27669650/
3. Zhou, Xinyi, Yang, Xiaoyu, Huang, Shenzhen, Shao, Bin, Yuan, Quan. 2024. Inhibition of METTL3 Alleviates NLRP3 Inflammasome Activation via Increasing Ubiquitination of NEK7. In Advanced science (Weinheim, Baden-Wurttemberg, Germany), 11, e2308786. doi:10.1002/advs.202308786. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38696610/
4. He, Hongbin, Jiang, Hua, Chen, Yun, Jiang, Wei, Zhou, Rongbin. 2018. Oridonin is a covalent NLRP3 inhibitor with strong anti-inflammasome activity. In Nature communications, 9, 2550. doi:10.1038/s41467-018-04947-6. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29959312/
5. Liu, Ganglei, Chen, Xueliang, Wang, Qianqian, Yuan, Lianwen. 2020. NEK7: a potential therapy target for NLRP3-related diseases. In Bioscience trends, 14, 74-82. doi:10.5582/bst.2020.01029. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32295992/
6. Schmacke, Niklas A, O'Duill, Fionan, Gaidt, Moritz M, Leonhardt, Heinrich, Hornung, Veit. 2022. IKKβ primes inflammasome formation by recruiting NLRP3 to the trans-Golgi network. In Immunity, 55, 2271-2284.e7. doi:10.1016/j.immuni.2022.10.021. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36384135/
7. Wang, Xia, Zhao, Yan, Wang, Dan, Liu, Ruiqing, Shen, Yanna. 2023. ALK-JNK signaling promotes NLRP3 inflammasome activation and pyroptosis via NEK7 during Streptococcus pneumoniae infection. In Molecular immunology, 157, 78-90. doi:10.1016/j.molimm.2023.03.016. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37001294/