Plac1-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Plac1-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-11952

品系全称

C57BL/6JCya-Plac1em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-56096-Plac1-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Plac1-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-11952) were purchased from Cyagen.
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cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
placental specific protein 1
基因别称
DXWsu72e,Epcs26,Oosp2l
染色体号
Chr X (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_019538 | Ensembl: ENSMUST00000114843
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 3
敲除长度
~2.2 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1926287Female and male mice null for this gene display postnatal lethality with placental abnormalities. Female mice heterozygous for this allele display an enlarged placenta with expansion of the junctional zone.
PLAC1(Placenta-specific 1)是一种X染色体连锁基因,其表达主要局限于胚胎发育过程中源自滋养层细胞的细胞。PLAC1定位于X染色体上的一个区域,该区域被认为对胎盘发育至关重要,尽管其在这一过程中的作用尚未明确。PLAC1在人类妊娠期间由分化滋养层细胞表达,并定位于合胞滋养层中的膜性结构,包括微绒毛质膜表面。最近的研究表明,PLAC1也由各种人类癌症细胞表达。PLAC1启动子区域的研究表明,其正常胎盘和癌细胞中的表达是由特定的转录因子相互作用驱动的。尽管对PLAC1在正常滋养层中的作用尚缺乏深入了解,但初步研究表明,癌症来源的PLAC1具有促进肿瘤生长和功能的潜力。此外,它似乎还能诱导特定的免疫反应,这可能会影响一些癌症患者的存活率,表明它可能为某些癌症的治疗提供一个治疗靶点。PLAC1还可能作为一个生物标志物,预测特定的妊娠并发症,如先兆子痫[1]。

PLAC1在人类胎盘中的表达贯穿整个妊娠期,并在滋养层细胞中特异性表达。PLAC1 mRNA在足月人类胎盘中被检测到,迁移为单一的1.7 kb转录本,但在其他胎儿或成人组织中没有检测到。PLAC1表达在整个妊娠过程中都可以观察到,而小鼠Plac1在12.5 dpc后显著减少。使用(35)S标记的核糖探针,PLAC1表达在妊娠的各个阶段(8-41周)都是滋养层细胞特异性的;在间质或蜕膜细胞中未观察到表达。使用BeWo绒毛膜癌细胞作为滋养层细胞模型,角化细胞生长因子(KGF)通过Northern分析和定量实时PCR刺激稳态PLAC1 mRNA表达约两倍。刺激仅在暴露24小时后观察到,这表明KGF的刺激作用是继发于滋养层细胞的生长或分化。暴露于胰岛素样生长因子II(IGF-II)后,mRNA水平没有变化。PLAC1在整个妊娠过程中滋养层细胞特异性表达,并受到KGF的调节,这与PLAC1在母胎界面发挥基础作用是一致的[2]。

PLAC1在鼠胎母界面上的表达模式及其在胎母界面中的作用尚不清楚。原位杂交(ISH)用于定位PLAC1 mRNA在鼠胎母界面上的位置。使用PLAC1 shRNA过表达慢病毒建立的滋养层干细胞(TS)分化模型,研究了PLAC1在着床中的作用。实时RT-PCR用于检测基因表达的变化。PLAC1仅在胚胎外锥(EPC)以及8.5和9.5 dpc的胚胎中表达。随后,PLAC1表达在13.5 dpc的海绵滋养层层中丰富,在迷宫层中适度,之后下降。有趣的是,PLAC1也由次级滋养层巨细胞和糖原滋养层细胞表达,但在初级滋养层巨细胞中不表达。PLAC1转录在TS分化过程中增加(P < 0.01),而PLAC1的敲低显著损害了TS分化。PLAC1在胎母界面和所有滋养层亚型中丰富表达,除了初级滋养层巨细胞。PLAC1敲低延迟了TS分化的进展,表明PLAC1对于正常滋养层细胞分化成各种滋养层亚群是必需的[3]。

PLAC1是最近发现的癌症-睾丸-胎盘(CTP)抗原之一,其正常组织表达有限,而在不同组织来源的广泛癌细胞中存在异常表达。重组人PLAC1的表达已经得到优化,然而,迄今为止还没有关于小鼠PLAC1生产和纯化的研究报道。在这项研究中,在小肠系统中优化了小鼠PLAC1的表达和纯化,并研究了所产生蛋白质对小鼠诱导体液反应的影响。产生了一种融合蛋白,包含小鼠PLAC1完整细胞外结构域、免疫刺激性肽、破伤风毒素P2P30和PADRE以及KDEL3信号(主要PLAC1),以及没有免疫刺激性肽的相同片段(对照PLAC1)。为了优化生产和纯化步骤,测试了不同的参数,包括菌株、培养温度、培养时间、IPTG浓度、培养基,以及不同的缓冲液用于纯化重组蛋白质。通过Western Blotting(WB)和ELISA分析确认了重组PLAC1蛋白的身份后,这些蛋白质被皮下注射到用弗氏佐剂免疫的小鼠中,并通过ELISA检测抗PLAC1抗体反应。主要和对照PLAC1的最优表达水平在BL21(DE3)和TB培养基中,在0.25 mM IPTG存在下,在15°C诱导24小时后获得。含有2%十二烷基硫酸钠的缓冲液产生了更高的产量和纯度。我们的结果表明,抗人重组PLAC1多克隆抗体在WB和ELISA分析中与主要和对照PLAC1重组蛋白都有特异性反应。两种蛋白质都能在小鼠中诱导体液反应;然而,与对照PLAC1相比,用主要PLAC1免疫的小鼠血清中的抗PLAC1抗体滴度显著更高。在这项研究中,报告了小鼠PLAC1生产和纯化的优化方案,并表明基因构建中插入免疫刺激性肽可以有效地增强对小鼠PLAC1的体液免疫反应,这可能增强对PLAC1的细胞免疫反应,导致更有效的抗肿瘤反应[4]。

胎儿生长受限(FGR)是指由各种不利因素引起的宫内生长潜能受损和不足,是导致胎儿或新生儿死亡和发病的严重围产期并发症。FGR有许多原因,其发病机制尚未完全明了。最近,越来越多的研究人员开始关注胎盘,这是胎儿和母亲之间唯一的联系。胎盘是一个重要的器官,在胎儿发育中发挥着关键作用。PLAC1是一种位于X染色体上的滋养层特异性基因,对胎盘发育至关重要。然而,PLAC1在胎儿生长受限中的生物学作用尚不清楚。在这项研究中,我们调查了PLAC1在FGR孕妇和正常妊娠胎盘中的表达变化,并探讨了PLAC1在滋养层细胞生长中的调节作用。Western blotting用于检测FGR和正常胎盘组织中PLAC1的表达。细胞计数试剂盒8(CCK-8)、划痕愈合和Transwell试验用于检测PLAC1敲低对滋养层细胞增殖、迁移和侵袭的影响。Western blotting用于检测低氧条件下PLAC1的表达,并通过CCK-8和流式细胞术检测低氧浓度下滋养层细胞的细胞活力和凋亡。与正常妊娠对照组的胎盘相比,FGR组胎盘中的PLAC1表达显著下调(p<0.05)。通过siRNA敲低PLAC1显著抑制了滋养层细胞的增殖、迁移和侵袭。在低氧处理后,PLAC1蛋白的表达显著降低(p<0.05)。PLAC1的过表达可以逆转滋养层细胞的细胞活力(p<0.05),并抑制低氧浓度下滋养层细胞的凋亡(p<0.05)。FGR中的PLAC1表达降低,并不能保护滋养层细胞免受低氧损伤,表明PLAC1可能是胎儿生长受限发生的重要调节因子[5]。

综上所述,PLAC1是一种X染色体连锁基因,其表达主要局限于胚胎发育过程中源自滋养层细胞的细胞。PLAC1在人类妊娠期间由分化滋养层细胞表达,并定位于合胞滋养层中的膜性结构,包括微绒毛质膜表面。PLAC1在人类胎盘中的表达贯穿整个妊娠期,并在滋养层细胞中特异性表达。PLAC1在鼠胎母界面上的表达模式及其在胎母界面中的作用尚不清楚。PLAC1是最近发现的癌症-睾丸-胎盘(CTP)抗原之一,其正常组织表达有限,而在不同组织来源的广泛癌细胞中存在异常表达。PLAC1在胎儿生长受限中的表达降低,并不能保护滋养层细胞免受低氧损伤,表明PLAC1可能是胎儿生长受限发生的重要调节因子。

参考文献:
1. Fant, Michael, Farina, Antonio, Nagaraja, Ramaiah, Schlessinger, David. . PLAC1 (Placenta-specific 1): a novel, X-linked gene with roles in reproductive and cancer biology. In Prenatal diagnosis, 30, 497-502. doi:10.1002/pd.2506. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20509147/
2. Fant, Michael, Weisoly, David L, Cocchia, Massimo, Lunt, Tiffany, Schlessinger, David. . PLAC1, a trophoblast-specific gene, is expressed throughout pregnancy in the human placenta and modulated by keratinocyte growth factor. In Molecular reproduction and development, 63, 430-6. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12412044/
3. Gu, Yanli, Wan, Junhui, Yao, Lv, Peng, Nan-Ni, Chang, Wen-Lin. 2017. Plac1 Expression Pattern at the Mouse Fetomaternal Interface and Involvement in Trophoblast Differentiation. In Cellular physiology and biochemistry : international journal of experimental cellular physiology, biochemistry, and pharmacology, 43, 2001-2009. doi:10.1159/000484154. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29055961/
4. Rahdan, Shaghayegh, Razavi, Seyed Alireza, Nazari, Mahboobeh, Ramezani, Amin, Zarnani, Amir-Hassan. . Optimization of Expression and Purification of Recombinant Mouse plac1. In Avicenna journal of medical biotechnology, 14, 61-69. doi:10.18502/ajmb.v14i1.8171. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35509359/
5. Sun, Dandan, Wu, Hanbing, Ping, Zepeng, Zhu, Hui, Ai, Ling. . PLAC1 Regulates the Occurrence of Fetal Growth Restriction by Inhibiting the Apoptosis of Trophoblast Cells. In Annals of clinical and laboratory science, 51, 182-189. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33941557/