Sfrp5-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Sfrp5-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-11830

品系全称

C57BL/6JCya-Sfrp5em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-54612-Sfrp5-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Sfrp5-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-11830) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型
Wnt信号通路

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
secreted frizzled-related sequence protein 5
基因别称
SARP3
染色体号
Chr 19 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_018780 | Ensembl: ENSMUST00000018966
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 1
敲除长度
~1.6 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1860298Mice homozygous for a null mutation are viable and fertile with no developmental abnormalities.
Sfrp5,也称为Secreted frizzled-related protein 5,是一种分泌性的蛋白,属于Frizzled相关蛋白家族,这个家族的蛋白在Wnt信号通路的调控中发挥着重要作用。Sfrp5通过结合Wnt蛋白或Wnt受体,从而抑制Wnt信号通路的活性,影响细胞分化、发育和代谢等生物学过程。

Sfrp5在多种组织中都有表达,尤其是在脂肪组织中。研究表明,Sfrp5在脂肪细胞的分化和成熟过程中表达增加,但其表达调控机制尚不明确。一项研究表明,过氧化物酶体增殖物激活受体γ(PPARγ)能够转录调控Sfrp5的表达。在3T3-L1脂肪细胞中,PPARγ腺病毒转染能够增强Sfrp5的表达。通过生物信息学分析和Luciferase报告基因实验,发现PPARγ在Sfrp5启动子区域有三个潜在的结合位点,并且PPARγ能够通过这些位点调控Sfrp5启动子的活性。此外,染色质免疫沉淀和电泳迁移率变动分析实验进一步证实,PPARγ能够特异性地结合到Sfrp5启动子区域,从而调控Sfrp5的表达[1]。

Sfrp5在白斑病的发生发展中起着重要作用。白斑病是一种自身免疫性疾病,其特征是皮肤色素缺失。研究表明,Sfrp5在白斑病患者皮肤病变区域过度表达。与正常表皮黑色素细胞相比,白斑病黑色素细胞中Sfrp5的表达增加。进一步研究发现,Sfrp5能够通过抑制Wnt/β-catenin信号通路,下调微眼相关转录因子(MITF)及其靶蛋白的表达,从而抑制黑色素合成。相反,沉默Sfrp5的表达能够增加黑色素合成并激活Wnt信号通路。此外,Sfrp5过表达还能够下调T细胞因子/淋巴细胞增强因子(TCF/LEF)的转录活性。进一步的研究表明,Sfrp5对黑色素合成的抑制作用可以被β-catenin激动剂SKL2001逆转。在裸鼠模型中,Sfrp5过表达也能够抑制黑色素合成。因此,Sfrp5在白斑病的发生发展中起着重要作用,并且可能成为白斑病治疗的潜在靶点[2]。

Sfrp5的基因多态性与肥胖的发生发展有关。研究发现,Sfrp5基因的核苷酸变异与儿童和青少年的肥胖没有关联。在622名肥胖儿童和青少年以及503名正常体重对照个体中,对Sfrp5基因的完整编码区域进行了突变分析。共发现了15个序列变异,其中10个变异导致非同义氨基酸改变。5个变异之前没有被报道过。其中,一个变异(c.-3G>A)被发现与肥胖表型有趋势性的关联。此外,一些变异(D103N、A113V、K212N和H317L)可能影响Sfrp5蛋白的功能。然而,功能研究仍然需要进一步探讨Sfrp5基因变异对蛋白功能的影响,以及其在人类单基因肥胖中的作用[3]。

Sfrp5在类风湿性关节炎(RA)中也发挥着重要作用。RA是一种自身免疫性疾病,其特征是关节炎症和破坏。研究发现,Sfrp5能够增强Wnt5a诱导的炎症反应。在RA的纤维样滑膜细胞(td-FLS)和其潜在的祖细胞(fd-FLS和纤维细胞)中,Wnt5a和一系列Wnt5a受体/共受体表达相似。Wnt5a能够刺激RA td-FLS中炎症分子的表达,尤其是IL1β、IL8和IL6。在Sfrp5的存在下,Wnt5a诱导的炎症反应增强。此外,Wnt5a单独或与Sfrp5联合使用,能够抑制TCF4的基因表达和LRP5的蛋白水平。因此,Sfrp5在RA的炎症反应中起着重要作用[4]。

Sfrp5在肥胖的发生发展中起着重要作用。研究表明,Sfrp5在肥胖人群的脂肪组织中表达增加。在白色和棕色脂肪细胞的分化过程中,Sfrp5的表达逐渐增加,在成熟脂肪细胞中表达水平较高。然而,外源过表达Sfrp5并没有直接调节脂肪细胞的分化。此外,Sfrp5并没有抑制前脂肪细胞中的经典WNT/β-catenin信号通路。在肥胖患者和正常体重个体中,循环SFRP5水平没有显著差异。因此,Sfrp5可能是一个成熟脂肪细胞的标记基因[5]。

Sfrp5的甲基化与白血病细胞的多药耐药性(MDR)有关。研究发现,Sfrp5基因的甲基化能够激活Wnt/β-catenin信号通路,从而上调mdr1基因及其产物P-糖蛋白(P-gp)的表达,导致MDR的发生。在急性白血病患者和人类白血病细胞系中,SFRP5基因的甲基化被发现。在SFRP5基因甲基化的细胞中,SFRP5蛋白表达缺失。使用去甲基化剂处理后,SFRP5表达恢复,mdr1和P-gp的表达下调。因此,SFRP5的甲基化可能与白血病细胞的多药耐药性有关[6]。

Sfrp5和Mest基因是健康脂肪组织的生物标志物。研究发现,Sfrp5和Mest基因的表达与脂肪组织的扩张密切相关。在两种遗传性肥胖模型中,Sfrp5和Mest基因的表达与脂肪组织扩张平行增加,但在脂肪组织达到平台期后表达逐渐下降。此外,脂肪细胞大小和脂肪质量的分析表明,Sfrp5和Mest基因的表达减少对脂肪组织的年龄更为敏感。因此,Sfrp5和Mest基因可以作为健康脂肪组织的生物标志物[7]。

Sfrp5在藏鸡的肌内脂肪沉积中也起着重要作用。研究发现,藏鸡SFRP5基因的全长序列被克隆。在154天大的藏鸡的各种组织中,SFRP5基因的表达被检测到。SFRP5基因在所有检测组织中都有表达,但在脂肪组织中表达水平较高。随着藏鸡的生长,SFRP5在胸肌中的表达逐渐下降,但在大腿肌肉和脂肪组织中表达水平波动。相关性分析表明,SFRP5在胸肌、大腿肌肉和脂肪组织中的表达与肌内脂肪含量相关。因此,藏鸡SFRP5基因可能参与肌内脂肪沉积的调节[8]。

Sfrp5的DNA高甲基化与硫酸吲哚诱导的肾纤维化有关。研究发现,硫酸吲哚的血清水平与慢性肾脏病(CKD)患者的肾纤维化程度呈正相关。在CKD患者中,硫酸吲哚水平与肾脏中β-catenin的表达呈正相关。在单侧肾切除小鼠中,硫酸吲哚注射能够诱导肾纤维化,并伴随着Wnt/β-catenin信号通路的激活。在体外研究中,硫酸吲哚能够通过下调SFRP5的表达,从而激活Wnt/β-catenin信号通路。此外,硫酸吲哚还能够通过激活ROS/ERK1/2信号通路,增加DNA甲基转移酶的表达,从而增加SFRP5启动子区域的DNA甲基化水平。因此,硫酸吲哚通过诱导SFRP5的DNA高甲基化,进而激活Wnt/β-catenin信号通路,导致肾纤维化的发生[9]。

综上所述,Sfrp5是一种重要的分泌性蛋白,在Wnt信号通路的调控中发挥着重要作用。Sfrp5在多种疾病中发挥重要作用,包括白斑病、类风湿性关节炎、肥胖和白血病等。此外,Sfrp5的甲基化与肾纤维化的发生发展有关。Sfrp5的研究有助于深入理解Wnt信号通路的调控机制,以及其在疾病发生发展中的作用,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Zeng, Jun, Hu, Jiongyu, Lian, Yu, Jiang, Youzhao, Chen, Bing. 2017. SFRP5 is a target gene transcriptionally regulated by PPARγ in 3T3-L1 adipocytes. In Gene, 641, 190-195. doi:10.1016/j.gene.2017.10.066. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29066306/
2. Zou, Dao-Pei, Chen, Yang-Mei, Zhang, Ling-Zhao, Gao, Tian-Wen, Chen, Jin. 2020. SFRP5 inhibits melanin synthesis of melanocytes in vitiligo by suppressing the Wnt/β-catenin signaling. In Genes & diseases, 8, 677-688. doi:10.1016/j.gendis.2020.06.003. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34291139/
3. Van Camp, Jasmijn K, Beckers, Sigri, Zegers, Doreen, Van Gaal, Luc F, Van Hul, Wim. 2016. Nucleotide variation of sFRP5 gene is not associated with obesity in children and adolescents. In Molecular biology reports, 43, 1041-7. doi:10.1007/s11033-016-4050-7. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27497818/
4. Mahmoud, Dorra Elhaj, Kaabachi, Wajih, Sassi, Nadia, Cheour, Elhem, Laadhar, Lilia. 2021. SFRP5 Enhances Wnt5a Induced-Inflammation in Rheumatoid Arthritis Fibroblast-Like Synoviocytes. In Frontiers in immunology, 12, 663683. doi:10.3389/fimmu.2021.663683. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34211463/
5. Wang, Rui, Hong, Jie, Liu, Ruixin, Wang, Weiqing, Ning, Guang. 2014. SFRP5 acts as a mature adipocyte marker but not as a regulator in adipogenesis. In Journal of molecular endocrinology, 53, 405-15. doi:10.1530/JME-14-0037. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25324487/
6. Wang, H, Wang, X, Hu, R, Zhang, J, Liu, Z. 2014. Methylation of SFRP5 is related to multidrug resistance in leukemia cells. In Cancer gene therapy, 21, 83-9. doi:10.1038/cgt.2013.87. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24434572/
7. Jura, Magdalena, Jarosławska, Julia, Chu, Dinh Toi, Kozak, Leslie P. 2015. Mest and Sfrp5 are biomarkers for healthy adipose tissue. In Biochimie, 124, 124-133. doi:10.1016/j.biochi.2015.05.006. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26001362/
8. Li, Qian, Zuo, Lu-Lu, Lin, Ya-Qiu, Xiong, Xian-Rong, Wang, Yong. . Cloning and Expression of SFRP5 in Tibetan Chicken and its Relationship with IMF Deposition. In Animal biotechnology, 27, 231-7. doi:10.1080/10495398.2016.1178138. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27565866/
9. Yu, Yanlin, Guan, Xu, Nie, Ling, Zhang, Jingbo, Zhao, Jinghong. 2017. DNA hypermethylation of sFRP5 contributes to indoxyl sulfate-induced renal fibrosis. In Journal of molecular medicine (Berlin, Germany), 95, 601-613. doi:10.1007/s00109-017-1538-0. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28508124/