Syt7-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Syt7-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-11784

品系全称

C57BL/6JCya-Syt7em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-54525-Syt7-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Syt7-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-11784) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
synaptotagmin VII
基因别称
B230112P13Rik
染色体号
Chr 19 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_173068 | Ensembl: ENSMUST00000224135
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 3
敲除长度
~1.0 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1859545Mice homozygous for disruptions in this gene have no gross abnormalities or obvious neurological defects. They do develop fibrosis in the skin and skeletal muscle over time.
SYT7,也称为Synaptotagmin 7,是一种编码钙依赖性膜转运调节蛋白的基因,属于突触素基因家族。SYT7蛋白在神经递质的释放过程中发挥重要作用,参与突触小泡与质膜融合的过程。此外,SYT7还与其他生物学过程相关,包括细胞增殖、凋亡、迁移和侵袭等,这些过程在多种癌症的发生和发展中起着关键作用。

SYT7在甲状腺癌中的作用已被研究。免疫组化染色、qPCR和Western blot结果显示,SYT7在甲状腺癌组织和细胞中的表达高于正常甲状腺组织和细胞。细胞功能实验发现,SYT7的敲低抑制了甲状腺癌细胞的增殖和迁移,并促进了细胞凋亡,而SYT7的过表达则产生了相反的效果。同样,SYT7的下调也在体内抑制了肿瘤生长。通过GeneChip和Ingenuity Pathway Analysis确认,HMGB3是SYT7的下游基因。此外,通过UbiBrowser数据库预测和Co-IP实验,发现SYT7与BRCA1相互作用,抑制HMGB3的泛素化,从而上调HMGB3的蛋白水平。与SYT7类似,HMGB3在甲状腺癌中也显著上调。HMGB3的敲低抑制了甲状腺癌细胞的增殖和迁移,并促进了细胞凋亡。此外,HMGB3的敲低恢复了SYT7过表达引起的细胞增殖和迁移的促进作用。SYT7和HMGB3在甲状腺癌中上调,SYT7通过BRCA1介导的HMGB3泛素化调节HMGB3的表达,从而促进甲状腺癌的进展[1]。

SYT7在慢性淋巴细胞白血病(CLL)中的作用也得到了研究。免疫组化染色和qPCR确定了CLL中SYT7的表达水平。通过体内和体外实验验证了SYT7在促进CLL发展中的作用。通过GeneChip分析和Co-免疫沉淀实验阐明了SYT7在CLL中的分子机制。CLL细胞的增殖、迁移和抗凋亡等恶性行为在SYT7基因敲低后显著抑制。相反,SYT7的过表达在体外促进了CLL的发展。一致地,SYT7的敲低也抑制了CLL细胞的异种移植肿瘤生长。机制上,SYT7通过抑制SYVN1介导的KNTC1泛素化来促进CLL的发展。KNTC1的敲低也减弱了SYT7过表达对CLL发展的影响。SYT7通过SYVN1介导的KNTC1泛素化调节CLL的进展,这为CLL的分子靶向治疗提供了潜在价值[2]。

SYT7在胶质母细胞瘤中的作用也得到了研究。逆转录-定量PCR分析显示,SYT7在三种人胶质瘤细胞系中表达。Western blotting和RT-qPCR分析显示,在293T细胞和U87MG细胞中,SYT7 shRNA的敲低效率。Celigo Image Cytometer分析、caspase-3/7实验、流式细胞术和MTT实验显示,U87MG细胞的增殖在SYT7被慢病毒载体表达的SYT7 shRNA下调时受到抑制,这是通过促进细胞凋亡实现的。本研究的结果表明,SYT7的下调通过促进细胞凋亡抑制了胶质母细胞瘤的生长,因此SYT7可能是胶质瘤干预的潜在靶点[3]。

SYT7在头颈鳞状细胞癌(HNSCC)中的作用也得到了研究。本研究对鳞状细胞癌细胞和ΔNp63α敲低细胞之间的差异表达基因进行了全基因表达谱微阵列分析。结果显示,一个重要的基因Synaptotagmin VII(SYT7)被筛选出来。SYT7的敲低影响了鳞状细胞癌细胞的增殖、凋亡和细胞周期。体外ΔNp63α和SYT7双敲低实验的挽救实验导致ΔNp63α诱导表型的部分逆转。这也在体内实验中得到证实。总的来说,我们发现ΔNp63α可以通过下调SYT7的表达来抑制HNSCC的发生和进展。因此,SYT7/ΔNp63α轴可能是HNSCC临床治疗的一个潜在的治疗靶点[4]。

SYT7在非小细胞肺癌(NSCLC)中的作用也得到了研究。本研究使用公共数据库和组织样本探索了NSCLC中SYT7表达的差异。通过统计分析评估了SYT7的预后价值和其表达与临床参数的相关性。本研究发现,与邻近正常组织相比,NSCLC组织中SYT7的mRNA和蛋白水平升高。NSCLC患者中SYT7的高表达与肿瘤分化(P=0.031)和pT(P=0.041)呈正相关。SYT7表达较高的NSCLC患者的生存时间比SYT7表达较低的患者短。此外,多因素分析表明,SYT7的表达是NSCLC的一个不利的独立预后因素(P=0.044)。综上所述,SYT7在NSCLC组织中上调,可能是NSCLC的预后和诊断因子[5]。

SYT7在2型糖尿病(T2DM)中的作用也得到了研究。本研究发现,过量的铁通过下调SYT7抑制胰岛素分泌(INS)并损害胰岛β细胞功能,在铁过载模型中体内和体外都得到了证实。进一步的结果表明,8-氧鸟嘌呤DNA糖苷酶(OGG1),DNA碱基切除修复中的关键蛋白,是SYT7的上游调节因子。有趣的是,这种调节可以被过量的铁抑制。Ogg1基因敲除小鼠、铁过载小鼠和db/db小鼠表现出INS分泌减少、β细胞功能减弱和葡萄糖耐量受损。值得注意的是,SYT7的过表达可以挽救这些表型。我们的数据揭示了一个内在机制,即过量的铁通过OGG1对SYT7的转录调节的干扰来抑制INS的分泌,这表明SYT7可能是T2DM临床治疗的一个潜在靶点[6]。

SYT7在肿瘤进展和治疗方法中的转录调节也得到了研究。本研究发现,SYT7基因启动子区域的前1000 bp中GC含量较高,提示G-四链体在其转录调节中可能发挥作用。圆二色谱光谱结果显示,-187到-172 bp序列可以形成典型的平行G-四链体结构,位点突变揭示了第九个鸟嘌呤在其形成中的关键作用。然后,两种G-四链体配体(TMPyP4和Pyridostatin)的治疗降低了SYT7的表达和随后的肿瘤增殖,表明G-四链体作为肿瘤靶向治疗的潜力。通过阐明G-四链体在调节SYT7转录中的关键作用,我们的研究不仅提高了我们对这一复杂调节机制的理解,而且强调了SYT7在肿瘤增殖中的重要性。这些发现共同为G-四链体调节与SYT7功能在肿瘤发展中的相互作用提供了更全面的了解[7]。

SYT7在卵巢上皮癌(EOC)的转移中的作用也得到了研究。本研究通过TCGA的生信分析,分析了SYT7表达水平和临床相关性。此外,本研究还检测了SYT7对EOC细胞迁移和侵袭的影响,并使用体外EOC细胞系和体内小鼠异种移植模型探索了其分子机制。研究发现,人EOC组织中SYT7水平显著升高,与正常卵巢组织相比,SYT7表达与总生存期呈负相关。SYT7的抑制有效地阻碍了CAOV3细胞的迁移和侵袭能力,而SYT7的过表达显著加速了A2780细胞的肿瘤进展。机制研究表明,SYT7在EOC细胞中上调p-STAT3和MMP2。重要的是,使用STAT3抑制剂niclosamide有效地抵消了SYT7在EOC中的致癌作用。在裸鼠异种移植模型中,SYT7的抑制显著减少了体内肿瘤转移。我们的发现表明,EOC中SYT7的上调与不良预后相关,因为它通过激活STAT3信号通路来增强肿瘤的迁移和侵袭。因此,SYT7可以作为EOC的预后标志和治疗靶点[8]。

SYT7在结直肠癌(CRC)中的作用也得到了研究。本研究检测了83例患者的正常结直肠组织和CRC组织中SYT7的表达水平,并分析了SYT7表达水平与病理特征之间的可能相关性。通过Celigo图像细胞计数器、集落形成实验、细胞周期分析和细胞凋亡实验在体外检测了SYT7敲低对细胞生长的影响。通过微阵列和Ingenuity Pathway Analysis评估了可能的分子机制。结果显示,与正常组织相比,结直肠癌组织中SYT7的表达上调,并与结直肠癌的病理分期呈正相关(P=0.015)。通过使用SYT7-shRNA检测了SYT7在人结直肠癌细胞系RKO中的作用,发现SYT7敲低抑制细胞增殖(P=8.6E-5)、集落形成能力(P=4.5E-6),并促进G2/M期阻滞和细胞凋亡(P=4.6E-7)。通过微阵列和Ingenuity Pathway Analysis揭示了由SYT7调节的多种与癌症相关的途径。本研究表明,SYT7在结直肠癌的发生发展中发挥着重要作用,SYT7可能成为结直肠癌的一个新的治疗靶点[9]。

SYT7在结直肠癌进展中的作用也得到了研究。本研究调查了circ_0022340在CRC中的作用机制。为此,本研究使用了定量实时PCR来检测CRC细胞中的基因表达。细胞功能实验包括5-乙炔-2'-脱氧尿苷(EdU)、集落形成和transwell实验,以研究CRC细胞的增殖和迁移能力。萤光素酶报告和RNA免疫沉淀(RIP)实验确定了circRNA、miRNA和mRNA之间的相互作用。Western blot用于检测蛋白表达。免疫组化实验用于评估体内肿瘤生长。结果显示,circ_0022340在CRC细胞中高度表达。circ_0022340由synaptotagmin 7(SYT7)的外显子5到6形成。circ_0022340的沉默抑制了CRC细胞的增殖和迁移。功能上,circ_0022340招募异核糖核蛋白C(HNRNPC)以稳定EBF1 mRNA,从而激活SYT7。此外,circ_0022340靶向miR-382-5p以上调ETS转录因子ELK1(ELK1)。结论是,circ_0022340通过招募HNRNPC来稳定EBF1 mRNA,从而激活SYT7,或者通过miR-382-5p/ELK1轴来促进结直肠癌的进展,这为CRC治疗提供了一个新的靶点[10]。

综上所述,SYT7在多种癌症中发挥着重要作用,包括甲状腺癌、CLL、胶质母细胞瘤、HNSCC、NSCLC、卵巢上皮癌和结直肠癌。SYT7通过不同的分子机制,如泛素化、转录调节和信号通路激活,影响癌症的发生和发展。SYT7的过表达与不良预后相关,因此,SYT7可能成为癌症治疗的潜在靶点。未来的研究需要进一步探索SYT7在癌症中的具体作用机制,为开发基于SYT7的癌症治疗方法提供理论依据。

参考文献:
1. Dong, Shuai, Pan, Jun, Shen, Yi-Bin, Wu, Yi-Jun, Xie, Xiao-Jun. 2022. SYT7 plays a role in promoting thyroid cancer by mediating HMGB3 ubiquitination. In Endocrine-related cancer, 29, 175-189. doi:10.1530/ERC-21-0146. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35073278/
2. Zhang, Wenjie, Long, Jinlan, Tang, Peixia, Zhan, Rong, Xu, Zhenshu. 2023. SYT7 regulates the progression of chronic lymphocytic leukemia through interacting and regulating KNTC1. In Biomarker research, 11, 58. doi:10.1186/s40364-023-00506-4. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37280656/
3. Xiao, Bing, Li, Jianbin, Fan, Yanghua, Wu, Miaojing, Zhu, Xingen. 2017. Downregulation of SYT7 inhibits glioblastoma growth by promoting cellular apoptosis. In Molecular medicine reports, 16, 9017-9022. doi:10.3892/mmr.2017.7723. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28990113/
4. Fu, You, Tian, Guocai, Zhang, Zhiyuan, Yang, Xiao. 2021. SYT7 acts as an oncogene and a potential therapeutic target and was regulated by ΔNp63α in HNSCC. In Cancer cell international, 21, 696. doi:10.1186/s12935-021-02394-w. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34930262/
5. Han, Qiuyue, Zou, Dan, Lv, Fei, Wen, Zhenpeng, Zhang, Ye. 2020. High SYT7 expression is associated with poor prognosis in human non-small cell lung carcinoma. In Pathology, research and practice, 216, 153101. doi:10.1016/j.prp.2020.153101. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32825966/
6. Zhao, Xingqi, Ma, Ying, Shi, Munan, Pan, Feiyan, Guo, Zhigang. 2023. Excessive iron inhibits insulin secretion via perturbing transcriptional regulation of SYT7 by OGG1. In Cellular and molecular life sciences : CMLS, 80, 159. doi:10.1007/s00018-023-04802-y. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37209177/
7. Ma, Ying, Guo, Jiarong, Song, Xinyi, Pan, Feiyan, Guo, Zhigang. 2024. G-Quadruplex-Mediated Transcriptional Regulation of SYT7: Implications for Tumor Progression and Therapeutic Strategies. In Biochemistry, 63, 2609-2620. doi:10.1021/acs.biochem.4c00359. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39320967/
8. Li, Yinguang, Shao, Fengping, Huang, Ying, Zhao, Yunhe, Yuan, Linjing. 2024. SYT7 as a Potential Prognostic Marker Promotes the Metastasis of Epithelial Ovarian Cancer Cells by Activating the STAT3 Pathway. In Molecular carcinogenesis, 63, 2441-2455. doi:10.1002/mc.23821. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39329325/
9. Wang, Kewei, Xiao, Huimin, Zhang, Jiaqi, Zhu, Dehua. 2018. Synaptotagmin7 Is Overexpressed In Colorectal Cancer And Regulates Colorectal Cancer Cell Proliferation. In Journal of Cancer, 9, 2349-2356. doi:10.7150/jca.25098. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30026831/
10. Liu, Zhaohui, Xu, Xiaoping, Chen, Dong, Shen, Minmin, Chen, Min. 2022. Circ_0022340 promotes colorectal cancer progression via HNRNPC/EBF1/SYT7 or miR-382-5p/ELK1 axis. In Cellular and molecular biology (Noisy-le-Grand, France), 68, 107-116. doi:10.14715/cmb/2022.68.7.18. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36495510/