Suz12-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Suz12-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-11534

品系全称

C57BL/6JCya-Suz12em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-52615-Suz12-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Suz12-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-11534) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
SUZ12 polycomb repressive complex 2 subunit
基因别称
2610028O16Rik,D11Ertd530e,mKIAA0160
染色体号
Chr 11 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_199196 | Ensembl: ENSMUST00000017692
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 2~3
敲除长度
~2.0 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1261758Homozygous null mice die during early postimplantation stages with failure of embryonic and extraembyronic tissues and organogenesis. Mice heterozygous for a knock-out allele exhibit abnormal brain and spinal cord development with varying penetrance.
基因Suz12,也称为Suppressor of Zeste 12,是一种编码多梳抑制复合物2(Polycomb Repressive Complex 2,PRC2)亚基的基因。PRC2是一种关键的表观遗传调节因子,通过组蛋白H3赖氨酸27(H3K27)的三甲基化(H3K27me3)来维持基因沉默和调控细胞分化。Suz12作为PRC2的核心亚基之一,对于PRC2的功能至关重要,其异常表达和突变与多种疾病的发生和发展密切相关。

在Imagawa-Matsumoto综合征(IMMAS)中,Suz12基因的杂合变异导致过生长和多发性畸形。IMMAS的临床表现包括过生长、智力障碍、脊柱侧凸和皮肤松弛等,与Weaver综合征和Cohen-Gibson综合征的临床表现有显著重叠。这些综合征的发病机制与PRC2复合物的功能异常有关,其中EZH2和EED基因分别编码PRC2的其他亚基,其突变分别导致Weaver综合征和Cohen-Gibson综合征。然而,IMMAS的表型与其他两种综合征相比,过生长和智力障碍等症状较少出现。这些发现加深了我们对IMMAS和其他与PRC2相关的过生长综合征的临床和遗传特征的理解[1]。

在子宫内膜间质肉瘤(Endometrial Stromal Sarcomas,ESSs)中,JAZF1/SUZ12基因融合是一种常见的遗传改变,尤其在良性子宫内膜间质结节(ESNs)和低级别子宫内膜间质肉瘤(LG-ESSs)中。JAZF1/SUZ12基因融合是ESSs的细胞遗传学特征之一,其存在可以成为诊断和区分不同ESS亚型的工具。这种基因融合在ESNs中的发生率为约75%,在LG-ESSs中约为50%,在高级别子宫内膜间质肉瘤(HG-ESSs)中约为15%。JAZF1/SUZ12基因融合导致PRC2功能的失调,影响组蛋白修饰和基因表达,进而可能参与肿瘤的发生和发展[2]。

在低级别子宫内膜间质肉瘤中,JAZF1-SUZ12融合蛋白通过影响PRC2的组成、基因组定位、组蛋白修饰和基因表达,以及细胞分化过程,从而可能在肿瘤发生中发挥重要作用。JAZF1-SUZ12融合蛋白缺乏Suz12的N端,这导致它与特定PRC2辅助因子的相互作用被阻断,减少了PRC2靶基因的占据,并降低了H3K27me3的水平。同时,JAZF1-SUZ12融合蛋白增加了H4Kac在PRC2靶基因上的水平,并在细胞分化过程中促进了PRC2对JAZF1结合位点的招募。这些发现揭示了JAZF1-SUZ12融合蛋白在表观遗传调控和细胞分化中的缺陷,这可能为其在肿瘤发生中的作用提供了基础[3]。

在人类子宫内膜间质细胞中,JAZF1-SUZ12融合蛋白上调了PRC2靶基因的表达,这些基因在蜕膜化过程中通常被激活,同时抑制了与免疫清除相关的基因的表达。这些基因表达的改变在LG-ESS中也有观察到。这表明JAZF1-SUZ12融合蛋白可能导致细胞表型的改变,从而促进肿瘤的发生和发展[3]。

RNA驱动的基因融合是一种新的基因调控机制,它可能通过RNA介导的基因组重组来影响基因表达和细胞功能。在人类子宫内膜间质细胞中,设计的嵌合RNA的表达可以诱导JAZF1-SUZ12基因融合的形成。这一过程由嵌合RNA的序列决定,并受到雌激素或孕激素的抑制。此外,反义嵌合RNA比正义嵌合RNA更有效地驱动JAZF1-SUZ12基因融合。这一发现为RNA在基因组稳定性和肿瘤发生中的作用提供了新的见解[4]。

在食管鳞状细胞癌(ESCC)中,表观遗传调控的异常在肿瘤的发生和发展中发挥重要作用。研究发现,ESCC基因组中的98%的CpG位点呈现低甲基化状态。低甲基化区域富集于具有异染色质结合标记(H3K9me3、H3K27me3)的区域,而高甲基化区域富集于多梳抑制复合物(EZH2/SUZ12)识别的区域。在启动子、增强子、基因体以及多梳抑制复合物占据和CTCF结合位点的甲基化改变与癌症特异性基因表达异常相关。此外,非经典WNT/β-catenin/MMP信号通路的激活和YY1/lncRNA ESCCAL-1/核糖体蛋白网络的改变被认为是潜在的ESCC驱动基因。这些发现揭示了表观遗传调控在癌症发生中的多方面作用,并为生物标志物和靶点发现提供了新的资源[5]。

Suz12基因的选择性剪接可以产生两种不同的亚型:SUZ12-S和SUZ12-L。这两种亚型在几乎所有组织和发育阶段中都存在,并且具有不同的功能和组蛋白修饰机制。SUZ12-S亚型驱动PRC2.1的形成,并促进PRC2的二聚化。SUZ12-S亚型对于通过启动子近端H3K27me3沉积来抑制靶基因的表达是必要且充分的,而SUZ12-L亚型则维持H3K27的全球甲基化水平。这些发现揭示了PRC2组装和高级别相互作用在哺乳动物中的生理调节机制,对H3K27甲基化和基因沉默具有影响[6]。

在早期T细胞前体急性淋巴细胞白血病(ETP ALL)中,Suz12基因的突变与其他组蛋白修饰基因的突变共同构成ETP ALL的遗传基础。ETP ALL的病例中,Suz12基因的突变与EZH2、EED等基因的突变共同发生,这些基因的突变导致PRC2复合物的功能异常,进而影响细胞分化和白血病的发生。这些发现提示,ETP ALL可能需要针对PRC2复合物的治疗策略[7]。

在肺腺癌(LAD)中,长链非编码RNA(lncRNA)MARCKSL1-2通过招募Suz12来抑制组蛋白去乙酰化酶1(HDAC1)的表达,并上调miR-200b的表达,从而逆转了多西他赛(DTX)耐药性。MARCKSL1-2通过增强HDAC1启动子上的H3K27me3沉积来降低HDAC1的表达,并通过阻断HDAC1对miR-200b启动子上的组蛋白乙酰化修饰的抑制作用来上调miR-200b的表达。这些发现表明,MARCKSL1-2和Suz12在LAD的化疗耐药性中发挥重要作用,可能成为新的治疗靶点[8]。

在骨髓增生异常综合征(CMNs)中,Suz12基因的突变与其他基因的突变共同构成CMNs的遗传基础。Suz12基因的突变与其他组蛋白修饰基因的突变共同发生,这些基因的突变导致PRC2复合物的功能异常,进而影响细胞分化和骨髓增生异常的发生。这些发现提示,Suz12基因可能成为CMNs的诊断和治疗靶点[9]。

长链非编码RNA(lncRNA)HOTAIR作为一种模块化支架,可以结合至少两种不同的组蛋白修饰复合物。HOTAIR的5'区域结合PRC2复合物,而3'区域结合LSD1/CoREST/REST复合物。HOTAIR的这种结合能力使其能够介导PRC2和LSD1的组装,并协调这两种复合物对染色质的靶向作用,从而实现组蛋白H3K27甲基化和H3K4去甲基化的耦合。这些发现表明,lncRNA可能作为支架来组装特定的组蛋白修饰酶,从而确定目标基因上的组蛋白修饰模式[10]。

综上所述,基因Suz12编码PRC2复合物的核心亚基,在表观遗传调控和细胞分化中发挥重要作用。Suz12的突变和异常表达与多种疾病的发生和发展密切相关,包括IMMAS、ESSs、ESCC、ETP ALL和LAD等。Suz12的功能失调可能通过影响组蛋白修饰和基因表达来促进肿瘤的发生和发展。此外,Suz12的选择性剪接和与其他基因的相互作用也可能影响其功能和疾病发生。因此,深入研究Suz12的功能和调控机制对于理解疾病的发生机制和开发新的治疗策略具有重要意义。

参考文献:
1. Imagawa, Eri, Seyama, Rie, Aoi, Hiromi, Kim, Chong Ae, Matsumoto, Naomichi. 2023. Imagawa-Matsumoto syndrome: SUZ12-related overgrowth disorder. In Clinical genetics, 103, 383-391. doi:10.1111/cge.14296. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36645289/
2. Hrzenjak, Andelko. 2016. JAZF1/SUZ12 gene fusion in endometrial stromal sarcomas. In Orphanet journal of rare diseases, 11, 15. doi:10.1186/s13023-016-0400-8. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26879382/
3. Tavares, Manuel, Khandelwal, Garima, Muter, Joanne, Brosens, Jan J, Jenner, Richard G. . JAZF1-SUZ12 dysregulates PRC2 function and gene expression during cell differentiation. In Cell reports, 39, 110889. doi:10.1016/j.celrep.2022.110889. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35649353/
4. Gupta, Sachin Kumar, Jea, Jocelyn Duen-Ya, Yen, Laising. 2021. RNA-driven JAZF1-SUZ12 gene fusion in human endometrial stromal cells. In PLoS genetics, 17, e1009985. doi:10.1371/journal.pgen.1009985. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34928964/
5. Cao, Wei, Lee, Hayan, Wu, Wei, Snyder, Michael, Bivona, Trever G. 2020. Multi-faceted epigenetic dysregulation of gene expression promotes esophageal squamous cell carcinoma. In Nature communications, 11, 3675. doi:10.1038/s41467-020-17227-z. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32699215/
6. Arecco, Niccolò, Mocavini, Ivano, Blanco, Enrique, Irimia, Manuel, Di Croce, Luciano. 2024. Alternative splicing decouples local from global PRC2 activity. In Molecular cell, 84, 1049-1061.e8. doi:10.1016/j.molcel.2024.02.011. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38452766/
7. Zhang, Jinghui, Ding, Li, Holmfeldt, Linda, Downing, James R, Mullighan, Charles G. 2012. The genetic basis of early T-cell precursor acute lymphoblastic leukaemia. In Nature, 481, 157-63. doi:10.1038/nature10725. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22237106/
8. Jiang, Min, Qi, Feng, Zhang, Kai, Chen, Jing, Chen, Dongqin. 2022. MARCKSL1-2 reverses docetaxel-resistance of lung adenocarcinoma cells by recruiting SUZ12 to suppress HDAC1 and elevate miR-200b. In Molecular cancer, 21, 150. doi:10.1186/s12943-022-01605-w. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35864549/
9. Zhao, Fang, Bosler, David S, Cook, James R. . Designing Myeloid Gene Panels. In Archives of pathology & laboratory medicine, 146, 1004-1011. doi:10.5858/arpa.2021-0124-OA. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34784413/
10. Tsai, Miao-Chih, Manor, Ohad, Wan, Yue, Segal, Eran, Chang, Howard Y. 2010. Long noncoding RNA as modular scaffold of histone modification complexes. In Science (New York, N.Y.), 329, 689-93. doi:10.1126/science.1192002. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20616235/