Ctdsp2-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Ctdsp2-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-11514

品系全称

C57BL/6JCya-Ctdsp2em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-52468-Ctdsp2-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Ctdsp2-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-11514) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
CTD small phosphatase 2
基因别称
D10Ertd73e,OS-4,OS4,SCP2
染色体号
Chr 10 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001113470.1 | Ensembl: ENSMUST00000105256
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 2
敲除长度
~646 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
CTDSP2(C-terminal domain small phosphatase 2),也称为CTDSP2,是一种小型C末端结构域磷酸酶。CTDSP2属于SCP磷酸酶家族,该家族成员包括CTDSP1、CTDSP2和CTDSPL。SCP磷酸酶具有去磷酸化蛋白质分子中的丝氨酸和苏氨酸残基的能力。CTDSP2在多种生物学过程中发挥作用,包括调节RNA聚合酶II在转录起始向延伸过渡时的活性、调节神经元特异性基因的表达以及激活细胞周期关键蛋白pRb等[3]。

CTDSP2在细胞周期进展中发挥重要作用。CTDSP2作为FOXO(叉头框O)转录因子的靶基因,通过调节Ras和p21(Cip1/Waf1)的表达来控制细胞周期进程[1]。CTDSP2的表达可以诱导细胞周期停滞,这与它对细胞周期相关基因的广泛调节作用有关,其中最显著的是CDK(细胞周期蛋白依赖性激酶)抑制剂p21(Cip1/Waf1)。CTDSP2通过增加Ras的活性来诱导p21(Cip1/Waf1)的表达,而Ras可以通过p53依赖性和p53非依赖性途径诱导p21(Cip1/Waf1)的表达[1]。

此外,CTDSP2在神经发生中也发挥重要作用。microRNA miR-26b位于CTDSP2基因的内含子中,它通过抑制CTDSP2的翻译来调节神经元的分化[2,5]。在神经干细胞(NSCs)中,miR-26b的生物合成在预成熟水平受到抑制,因此它对CTDSP2的表达没有影响。然而,在神经发生过程中,成熟的miR-26b被激活,它通过抑制CTDSP2蛋白的表达来促进神经元的分化[5]。

CTDSP2的异常表达与多种疾病的发生发展有关。CTDSP2的敲除可以导致斑马鱼颅面发育异常,这主要通过与p53信号通路的激活有关[4]。此外,CTDSP2的异常表达还与癌症的发生发展有关。CTDSP1和CTDSPL在肾细胞癌中表现出肿瘤抑制活性,而CTDSP2的表达与肾细胞癌的预后不良相关[6]。在脂肪肉瘤中,CTDSP1/2-DNM3OS融合基因的检测表明CTDSP2在肿瘤的发生发展中可能发挥作用[7]。

CTDSP2在细胞周期进展、神经发生和疾病发生发展中发挥重要作用。CTDSP2的表达受到多种因素的调控,包括FOXO转录因子、microRNA和Ras信号通路等。CTDSP2的异常表达与多种疾病的发生发展有关,包括颅面发育异常和癌症等。深入研究CTDSP2的生物学功能和调控机制,有助于我们更好地理解疾病的发生发展机制,并为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Kloet, David E A, Polderman, Paulien E, Eijkelenboom, Astrid, Holstege, Frank C, Burgering, Boudewijn M T. 2015. FOXO target gene CTDSP2 regulates cell cycle progression through Ras and p21(Cip1/Waf1). In The Biochemical journal, 469, 289-98. doi:10.1042/BJ20140831. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25990325/
2. Han, Jinju, Denli, Ahmet M, Gage, Fred H. . The enemy within: intronic miR-26b represses its host gene, ctdsp2, to regulate neurogenesis. In Genes & development, 26, 6-10. doi:10.1101/gad.184416.111. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22215805/
3. Puzanov, G A, Senchenko, V N. . [SCP Phosphatases and Oncogenesis]. In Molekuliarnaia biologiia, 55, 531-542. doi:10.31857/S0026898421040091. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34432772/
4. Xia, Xin, Song, Wenjie, Zhang, Fuyu, Zhang, Bo, Chen, Xiaowei. 2025. ctdsp2 Knockout Induces Zebrafish Craniofacial Dysplasia via p53 Signaling Activation. In International journal of molecular sciences, 26, . doi:10.3390/ijms26031297. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39941065/
5. Dill, Holger, Linder, Bastian, Fehr, Alexander, Fischer, Utz. . Intronic miR-26b controls neuronal differentiation by repressing its host transcript, ctdsp2. In Genes & development, 26, 25-30. doi:10.1101/gad.177774.111. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22215807/
6. Krasnov, George S, Puzanov, Grigory A, Dashinimaev, Erdem B, Senchenko, Vera N, Yegorov, Yegor E. 2023. Tumor Suppressor Properties of Small C-Terminal Domain Phosphatases in Clear Cell Renal Cell Carcinoma. In International journal of molecular sciences, 24, . doi:10.3390/ijms241612986. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37629167/
7. Hirata, Makoto, Asano, Naofumi, Katayama, Kotoe, Ichikawa, Hitoshi, Matsuda, Koichi. 2019. Integrated exome and RNA sequencing of dedifferentiated liposarcoma. In Nature communications, 10, 5683. doi:10.1038/s41467-019-13286-z. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31831742/