Mir140-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Mir140-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-11101

品系全称

C57BL/6JCya-Mir140em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-387158-Mir140-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Mir140-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-11101) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
microRNA 140
基因别称
Mirn140,mir-140,mmu-mir-140
染色体号
Chr 8 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NR_029553 | Ensembl: ENSMUST00000083505
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 1
敲除长度
~1.5 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:2676825Mice homozygous for a knock-out allele exhibit decreased stature, body weight, and long bone length, cranofacial defects, and osteoarthritis.
基因Mir140,也称为microRNA-140(miRNA-140,miR-140),是一种在软骨细胞中表达的微小非编码RNA。miRNA是一类在基因表达调控中发挥重要作用的分子,通过结合并抑制其目标mRNA的翻译或促进其降解来调节基因表达。Mir140在软骨细胞的功能、软骨发育和骨关节炎(OA)等疾病中扮演着关键角色。

多篇研究揭示了Mir140在软骨细胞中的作用及其在OA中的潜在治疗价值。例如,一项研究报道了一种新型治疗方法,通过工程化细胞外囊泡(exosomes)将Mir140特异性地递送到软骨细胞中,从而抑制软骨降解蛋白酶,减轻OA的进展[1]。另一项研究强调了Mir140在软骨稳态和软骨发育中的重要作用,指出其与miR-675等其他miRNA共同调节软骨的生理过程[2]。还有研究报道了Mir140在类风湿性关节炎(RA)和OA中的不同作用,其中Mir146a和Mir155主要与RA相关,而Mir140则主要与OA有关,包括软骨发育[3]。

Mir140的表达受多种因素调节,包括营养和生活方式。例如,饮食中的某些成分如多酚和黄酮类物质可以通过影响DNA甲基化和组蛋白修饰等表观遗传机制来调节Mir140的表达[4]。此外,营养不良和营养不足也会影响Mir140的表达,进而影响软骨的生长和发育[5]。

Mir140的表达异常与多种骨骼疾病相关,包括OA和骨骼发育异常。例如,Mir140的突变会导致骨骼发育异常,如软骨发育不全[6]。此外,OA患者的软骨组织中Mir140的表达水平显著降低,这可能与OA的发病机制有关[8]。

为了进一步了解Mir140的生理功能和疾病相关性,研究人员创建了两种小鼠模型,分别改变Mir140-5p和Mir140-3p的相对丰度。通过RNA测序分析,发现Mir140-5p的直接靶点包括Wnt11,而Mir140-3p的靶点则尚未明确[7]。

综上所述,基因Mir140在软骨细胞的功能、软骨发育和OA等疾病中发挥着重要作用。Mir140的表达受多种因素调节,包括营养、生活方式和表观遗传机制。Mir140的异常表达与多种骨骼疾病相关,包括OA和骨骼发育异常。未来需要进一步研究Mir140的生理功能和疾病相关性,为OA等骨骼疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Liang, Yujie, Xu, Xiao, Li, Xingfu, Wang, Daping, Xia, Jiang. 2020. Chondrocyte-Targeted MicroRNA Delivery by Engineered Exosomes toward a Cell-Free Osteoarthritis Therapy. In ACS applied materials & interfaces, 12, 36938-36947. doi:10.1021/acsami.0c10458. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32814390/
2. Gibson, Gary, Asahara, Hiroshi. 2013. microRNAs and cartilage. In Journal of orthopaedic research : official publication of the Orthopaedic Research Society, 31, 1333-44. doi:10.1002/jor.22397. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23754477/
3. Tanaka-Watanabe, Yoko, Asahara, Hiroshi. . [Joint and microRNA]. In Nihon Rinsho Men'eki Gakkai kaishi = Japanese journal of clinical immunology, 35, 447-54. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23291479/
4. Abdul, Qudeer Ahmed, Yu, Byung Pal, Chung, Hae Young, Jung, Hyun Ah, Choi, Jae Sue. 2017. Epigenetic modifications of gene expression by lifestyle and environment. In Archives of pharmacal research, 40, 1219-1237. doi:10.1007/s12272-017-0973-3. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29043603/
5. Young, Cameron, Caffrey, Melissa, Janton, Christopher, Kobayashi, Tatsuya. 2022. Reversing the miRNA -5p/-3p stoichiometry reveals physiological roles and targets of miR-140 miRNAs. In RNA (New York, N.Y.), 28, 854-864. doi:10.1261/rna.079013.121. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35332065/
6. Gat-Yablonski, Galia, Pando, Rakefet, Phillip, Moshe. 2013. Nutritional catch-up growth. In World review of nutrition and dietetics, 106, 83-9. doi:10.1159/000342607. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23428685/
7. Goel, Himanshu, Goel, Amy. 2024. MicroRNA and Rare Human Diseases. In Genes, 15, . doi:10.3390/genes15101243. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39457367/
8. Simon, Tommie C, Jeffries, Matlock A. . The Epigenomic Landscape in Osteoarthritis. In Current rheumatology reports, 19, 30. doi:10.1007/s11926-017-0661-9. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28456906/