Mir126a-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Mir126a-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-11100

品系全称

C57BL/6JCya-Mir126aem1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-387145-Mir126a-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Mir126a-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-11100) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
microRNA 126a
基因别称
Mir126,Mirn126,mir-126a,mmu-mir-126,mmu-mir-126a
染色体号
Chr 2 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NR_029541 | Ensembl: ENSMUST00000083606
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 1
敲除长度
~0.3 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
microRNA-126a(miR-126a)是一种内皮细胞特异性且高度保守的内源性小非编码RNA分子。miR-126a参与血管完整性和血管生成,在多种生物学过程中发挥作用,包括细胞分化、发育、代谢和疾病发生。

miR-126a在多种疾病中发挥重要作用,包括动脉粥样硬化、糖尿病心肌病、结直肠癌和Wilms瘤。在动脉粥样硬化中,miR-126a通过NF-κB/IL-6信号通路介导巨噬细胞的炎症反应,促进动脉粥样硬化斑块的形成[1]。在糖尿病心肌病中,miR-126a通过下调lncRNA TINCR抑制焦亡和糖尿病心肌病的发生[2]。在结直肠癌中,miR-126a通过m6A修饰抑制SOX4 mRNA的表达,从而抑制肿瘤的转移[3]。此外,miR-126a的基因多态性与中国儿童Wilms瘤的易感性降低相关[4]。

高风险神经母细胞瘤(NB)患者中,miR-126a表达显著上调,与不良预后有强相关性。miR-126a通过m6A-YTHDF1依赖机制抑制YWHAH表达,激活PI3K/AKT信号通路,促进NB细胞活性[5]。miR-126a通过促进PRC2和KDM5B在二价结构域上的结合,影响组蛋白修饰,进而调控二价结构基因的表达[6]。

miR-126a不仅在RNA修饰中发挥作用,还具有独立的染色质调控功能。miR-126a可以与H3K27me3结合,招募KDM6B诱导H3K27me3的去甲基化,从而影响基因表达和干细胞的多能性维持[7]。此外,miR-126a还可以通过下调lncRNA XIST的表达抑制结直肠癌的增殖和转移[8]。

综上所述,miR-126a是一种重要的非编码RNA分子,参与调控RNA的稳定性和功能,影响基因表达和生物学过程。miR-126a在多种疾病中发挥重要作用,包括动脉粥样硬化、糖尿病心肌病、结直肠癌和Wilms瘤。此外,miR-126a还具有独立的染色质调控功能,影响基因表达和干细胞的多能性维持。miR-126a的研究有助于深入理解RNA表观遗传修饰的生物学功能和疾病发生机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Cavalcante, Marcelo B, Saccon, Tatiana D, Nunes, Allancer D C, Schneider, Augusto, Masternak, Michal M. 2020. Dasatinib plus quercetin prevents uterine age-related dysfunction and fibrosis in mice. In Aging, 12, 2711-2722. doi:10.18632/aging.102772. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31955151/
2. Zhang, Bin, Nguyen, Le Xuan Truong, Li, Ling, Kuo, Ya-Huei, Marcucci, Guido. 2018. Bone marrow niche trafficking of miR-126 controls the self-renewal of leukemia stem cells in chronic myelogenous leukemia. In Nature medicine, 24, 450-462. doi:10.1038/nm.4499. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29505034/
3. Egeland, Nina G, Lunde, Siri, Jonsdottir, Kristin, Janssen, Emiel A M, Søiland, Håvard. 2015. The Role of MicroRNAs as Predictors of Response to Tamoxifen Treatment in Breast Cancer Patients. In International journal of molecular sciences, 16, 24243-75. doi:10.3390/ijms161024243. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26473850/
4. Rahmani, Soheila, Vakhshiteh, Faezeh, Hodjat, Mahshid, Baeeri, Maryam, Abdollahi, Mohammad. 2020. Gene-Environmental Interplay in Bisphenol A Subchronic Animal Exposure: New Insights into the Epigenetic Regulation of Pancreatic Islets. In Chemical research in toxicology, 33, 2338-2350. doi:10.1021/acs.chemrestox.0c00109. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32701268/
5. Lou, Chuang, Li, Tao. 2020. Long non-coding RNA SENCR alleviates endothelial-to-mesenchymal transition via targeting miR-126a. In Archives of medical science : AMS, 19, 180-188. doi:10.5114/aoms.2020.97991. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36817675/
6. He, Xinjun, Yan, Yi-Lin, DeLaurier, April, Postlethwait, John H. 2011. Observation of miRNA gene expression in zebrafish embryos by in situ hybridization to microRNA primary transcripts. In Zebrafish, 8, 1-8. doi:10.1089/zeb.2010.0680. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21288128/
7. Zou, Jun, Li, Wen-Qing, Li, Qing, Liu, Ting Xi, Jing, Qing. 2010. Two functional microRNA-126s repress a novel target gene p21-activated kinase 1 to regulate vascular integrity in zebrafish. In Circulation research, 108, 201-9. doi:10.1161/CIRCRESAHA.110.225045. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21148433/
8. Yan, Yi, Wang, Shichao, Wang, Rui, Hou, Chenjiao, Zhang, Lisheng. 2020. Transcriptional regulation of microRNA-126a by farnesoid X receptor in vitro and in vivo. In Biotechnology letters, 42, 1327-1336. doi:10.1007/s10529-020-02864-7. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32221722/