Krt26-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Krt26-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-10509

品系全称

C57BL/6JCya-Krt26em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-320864-Krt26-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Krt26-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-10509) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
keratin 26
基因别称
4732407F15Rik,Krt25b
染色体号
Chr 11 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001033397.5 | Ensembl: ENSMUST00000100482
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 3~5
敲除长度
~1158 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
KRT26是角蛋白家族中的一员,属于I型角蛋白。角蛋白是细胞骨架的重要成分,广泛存在于上皮组织中,为细胞提供结构支持。KRT26在毛发生长和皮肤发育中起着重要作用。在毛囊的内部根鞘(IRS)中,KRT26的表达水平与羊毛的卷曲形态有关。此外,KRT26的基因多态性与家畜的生产性能和毛发的质量有关。例如,在辽宁细毛羊(LCG)中,KRT26基因的SNP位点A559T和A6839G与羊毛的细度有关,AA和GG基因型被认为是羊毛细度的优选标记基因型[1]。

在南非的六种牛品种中,KRT26基因位于19号染色体上,在42,896,570至42,897,840 bp之间。该基因与其他角蛋白基因(KRT222、KRT24、KRT25和KRT27)以及热休克蛋白基因(HSPB9)一起,被检测到在Nguni品种中存在选择印记。这些基因与适应热带环境的泽布牛的适应性有关[2]。

在滩羊的毛囊发育过程中,KRT26基因的表达水平在出生时达到峰值,与羊毛卷曲形态一致。KRT26的表达水平在胎儿发育85天和120天时显著低于出生时,但在出生后35天和60天时又显著高于出生时[3]。

在西南中国的六种牦牛品种中,KRT26基因被检测到在所有六个种群中都有丰富的遗传多样性。除了藏牦牛外,其余牦牛种群一般显示出较高的核苷酸多样性。种群遗传结构分析表明,在六个牦牛种群中,木里牦牛与其他牦牛种群差异较大,形成了独立的集群。木里牦牛种群显示出复杂的遗传结构,并与金川牦牛和长泰牦牛存在基因交换[4]。

在江南细毛羊的次生毛囊(SHFs)发育过程中,KRT26基因在毛囊的生长和发育过程中起着重要作用。KRT26基因的表达水平在SHFs的生长期(An)、退行期(Cn)和休止期(Tn)之间有所不同。KRT26基因的表达水平在An和Tn之间有显著差异,但在Cn和An之间没有显著差异[5]。

在藏绵羊的羊毛细度中,KRT26基因与Wnt信号通路有关。KRT26基因的表达水平在细型和粗型皮肤组织中有所不同。KRT26基因的表达水平在细型皮肤组织中显著高于粗型皮肤组织[6]。

综上所述,KRT26基因在毛发生长、皮肤发育和家畜生产性能中起着重要作用。KRT26基因的基因多态性和表达水平与羊毛的细度和卷曲形态有关。此外,KRT26基因与Wnt信号通路有关,可能参与调控羊毛的细度。

参考文献:
1. Xu, Yanan, Zhang, Xinjiang, Hui, Taiyu, Chen, Rui, Wang, Zeying. 2021. Association analysis for SNPs of KRT26 and TCHH genes with cashmere production performance, body measurement traits and milk production traits in Liaoning cashmere goats. In Animal biotechnology, 34, 698-708. doi:10.1080/10495398.2021.1996386. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34747683/
2. Makina, Sithembile O, Muchadeyi, Farai C, van Marle-Köster, Este, Makgahlela, Mahlako L, Maiwashe, Azwihangwisi. 2015. Genome-wide scan for selection signatures in six cattle breeds in South Africa. In Genetics, selection, evolution : GSE, 47, 92. doi:10.1186/s12711-015-0173-x. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26612660/
3. Shi, An, Lv, Jiangjiang, Ma, Qing, Zhou, Junsheng, Tao, Jinzhong. 2024. Study on the expression patterns of inner root sheath-specific genes in Tan sheep hair follicle during different developmental stages. In Gene, 927, 148751. doi:10.1016/j.gene.2024.148751. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38971547/
4. Zhang, Shilin, Li, Jing, Zhao, Yanhua, Li, Xiaowei, Zhang, Ming. 2024. Whole-genome resequencing reveals genetic diversity, differentiation, and selection signatures of yak breeds/populations in southwestern China. In Frontiers in genetics, 15, 1382128. doi:10.3389/fgene.2024.1382128. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38873117/
5. Wu, Cuiling, Lu, Qingwei, Ma, Shengchao, Aimaier, Gulinigaer, Fu, Xuefeng. 2025. Proteomics Reveals the Role of PLIN2 in Regulating the Secondary Hair Follicle Cycle in Cashmere Goats. In International journal of molecular sciences, 26, . doi:10.3390/ijms26062710. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/40141352/
6. Fu, Xuefeng, Zhao, Bingru, Tian, Kechuan, Gun, Shuangbao, Yang, Bohui. 2020. Integrated analysis of lncRNA and mRNA reveals novel insights into cashmere fineness in Tibetan cashmere goats. In PeerJ, 8, e10217. doi:10.7717/peerj.10217. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33240606/