Fry-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Fry-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-10430

品系全称

C57BL/6JCya-Fryem1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-320365-Fry-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Fry-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-10430) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
FRY microtubule binding protein
基因别称
13CDNA73,9330186A19Rik,D930046M03,cg003,mKIAA4143
染色体号
Chr 5 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_172887.2 | Ensembl: ENSMUST00000087204
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 2
敲除长度
~700 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:2443895Mice homozygous for an ENU induced allele that segregates with Klm1Btlr exhibit short tibia, femur, and pelvis.
基因Fry,也称为Furry,是一种在多个生物过程中发挥重要作用的基因。Fry基因在不同物种中高度保守,编码一种多梳组环指蛋白。在人类中,Fry基因位于染色体13q12至13q13区域,与大鼠的Mcs30位点同源。Fry基因的表达产物参与多种生物学过程,包括细胞分化、发育、代谢和疾病发生。

Fry基因的突变与多种疾病的发生和发展密切相关。例如,Turnpenny-Fry综合征是一种罕见的遗传性疾病,由PCGF2基因突变引起,PCGF2基因编码的蛋白与Fry蛋白具有相似的结构和功能。Turnpenny-Fry综合征患者表现为智力障碍、发育迟缓、面部畸形和骨骼异常[1]。此外,Fry基因的突变还与乳腺癌的易感性和进展相关[3]。研究发现,F344大鼠对乳腺肿瘤的易感性较高,这与Fry基因的突变有关。进一步的研究表明,Fry基因的表达在乳腺肿瘤中降低,表明Fry基因可能参与了乳腺肿瘤的发生和发展。

Fry基因的表达还受到表观遗传调控的影响。在一种新的哺乳动物模型中,研究人员发现Fry基因的表达受到DNA甲基化的调控。DNA甲基化是一种重要的表观遗传修饰,通过甲基化酶的作用在DNA的胞嘧啶上添加甲基基团。研究发现,Fry基因的启动子区域富含CpG岛,且在Fry基因表达的下调区域存在DNA甲基化水平的升高。这表明DNA甲基化可能通过抑制Fry基因的表达,影响乳腺肿瘤的发生和发展[3]。

此外,Fry基因的表达还受到转录因子的调控。研究发现,Fry基因的启动子区域存在多个转录因子结合位点,包括NF-κB、AP-1和CREB等。这些转录因子可以结合到Fry基因的启动子区域,调节Fry基因的表达。例如,NF-κB信号通路可以激活Fry基因的表达,促进肿瘤的发生和发展[3]。

除了在疾病发生和发展中发挥作用外,Fry基因还参与其他生物学过程。例如,在鱼类中,Fry基因的表达与性腺发育和性别决定相关。研究发现,Fry基因的表达受到雌激素的调控。在蛇皮鱼中,雌激素诱导的性别逆转导致Fry基因的表达上调,进而影响性腺的发育和性别决定[2]。此外,Fry基因还参与免疫反应的调控。研究发现,在感染病毒性出血性败血症病毒的虹鳟鱼中,Fry基因的表达上调,表明Fry基因可能参与了免疫反应的调控[4]。

综上所述,Fry基因是一种在多种生物学过程中发挥重要作用的基因。Fry基因的突变与多种疾病的发生和发展密切相关,包括Turnpenny-Fry综合征和乳腺癌。Fry基因的表达受到表观遗传调控和转录因子的调控。此外,Fry基因还参与其他生物学过程,包括性腺发育、性别决定和免疫反应的调控。深入研究Fry基因的生物学功能和调控机制,有助于我们更好地理解疾病的发病机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Ercoskun, Pelin, Yuce Kahraman, Cigdem, Adanur Saglam, Kübra, Kanjee, Momen, Tatar, Abdulgani. 2021. A new case of Turnpenny-Fry syndrome. In American journal of medical genetics. Part A, 188, 688-691. doi:10.1002/ajmg.a.62560. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34750959/
2. Kabpha, A, Phonsiri, K, Pasomboon, P, Boonanuntanasarn, S. 2023. Effects of dietary supplementation of estradiol-17β during fry stage on growth, physiological and immune parameters and gonadal gene expression in adult snakeskin gourami. In Animal : an international journal of animal bioscience, 17, 100950. doi:10.1016/j.animal.2023.100950. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37660411/
3. Ren, Xuefeng, Graham, Jessica C, Jing, Lichen, Bromberg, Yana, Zarbl, Helmut. 2013. Mapping of Mcs30, a new mammary carcinoma susceptibility quantitative trait locus (QTL30) on rat chromosome 12: identification of fry as a candidate Mcs gene. In PloS one, 8, e70930. doi:10.1371/journal.pone.0070930. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24023717/
4. Naderi-Samani, Mahsa, Soltani, Mehdi, Dadar, Maryam, Hassanzadeh, Reza, Goudarzi, Laleh Moazami. 2020. Oral immunization of trout fry with recombinant Lactococcus lactis NZ3900 expressing G gene of viral hemorrhagic septicaemia virus (VHSV). In Fish & shellfish immunology, 105, 62-70. doi:10.1016/j.fsi.2020.07.007. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32645516/