Oacyl-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Oacyl-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-10355

品系全称

C57BL/6JCya-Oacylem1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-319888-Oacyl-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Oacyl-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-10355) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
O-acyltransferase like
基因别称
5330437I02Rik,Acyl3
染色体号
Chr 18 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_177028 | Ensembl: ENSMUST00000115097
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 5
敲除长度
~0.7 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
基因Oacyl,也称为Ghrelin O-acyl transferase (GOAT),是一种重要的酶,负责将中链脂肪酸酰基转移到生长激素释放肽(Ghrelin)的特定氨基酸残基上,从而生成活性形式的酰基Ghrelin (AG)。酰基化过程对于Ghrelin的功能至关重要,因为它允许Ghrelin与经典的生长激素分泌素受体(GHSR)-1a结合并激活,进而发挥其生理功能。GOAT在多种组织中表达,包括下丘脑-垂体-性腺轴、胰岛、肾上腺轴以及胃肠道、骨骼和味觉系统等。GOAT的活性受到膳食脂质的影响,并且与能量稳态和葡萄糖代谢的调节密切相关[1]。研究表明,GOAT在调节能量稳态和葡萄糖代谢方面发挥着重要作用,通过调节酰基Ghrelin (AG)的产生。GOAT的活性受到膳食脂质的影响,并且在饥饿期间可能发挥重要作用。此外,GOAT的特异性抑制剂可能具有治疗代谢性疾病如肥胖和2型糖尿病的潜力[1]。

在过去的十年中,许多关于Ghrelin基因、其受体基因以及Ghrelin的酰基化酶GOAT的遗传变异已被研究和鉴定。这些变异与饱腹感、进食行为、肥胖、代谢综合征、葡萄糖稳态和2型糖尿病的控制有关。然而,这些变异的影响通常较小或无统计学意义,并且研究之间往往存在相互矛盾的结论。最近的研究表明,常见的基因变异对Ghrelin轴的影响可能较小或无统计学意义。为了更准确地理解Ghrelin基因变异的作用,可能需要采用系统生物学的方法来研究整个Ghrelin轴的网络[2]。

Ghrelin是一种由28个氨基酸组成的肽激素,在体内和体表均有产生。Ghrelin通过Ghrelin O-acyl transferase (GOAT)酶的调节作用,通过生长激素分泌素受体发挥作用,并参与多种生理过程。这些生理过程使Ghrelin信号通路成为许多候选基因和全基因组研究关注的焦点,旨在确定人类异质性的遗传基础。研究表明,Ghrelin、其受体和GOAT的遗传变异性与肥胖、身材、2型糖尿病、心血管疾病、进食障碍和寻求奖励行为等疾病相关[3]。

在肥胖患者中,胃Ghrelin细胞的分布和活性存在争议。一项研究发现,在49例肥胖患者的胃样本中,Ghrelin细胞密度与瘦弱对照组没有显著差异。然而,Ghrelin和GOAT的mRNA表达水平以及酰基化和未酰基化Ghrelin的蛋白水平在肥胖患者中显著增加。此外,Ghrelin基因表达与血糖值、体重指数和GOAT之间存在正相关。这些结果表明,胃Ghrelin过度产生可能在2型糖尿病的发病机制中发挥作用[4]。

在植物中,膜结合O-酰基转移酶(MBOAT)家族由编码各种酰基转移酶基因成员组成,这些酰基转移酶在植物酰基脂质代谢中发挥着重要作用。研究发现,从14种具有完整基因组的植物中鉴定了136个植物MBOAT序列。系统发育关系分析表明,植物MBOAT基因模型分为四个主要组,其中两组可能编码二酰甘油酰基转移酶1(DGAT1)和溶血磷脂酰基转移酶(LPLAT)的酶,每组中最多的植物物种中存在1-3个旁系同源基因。此外,还发现一组与酿酒酵母甘油摄取蛋白(GUP)同源的基因序列,在植物中保守,每个最多种植物物种中只有一份拷贝。序列和系统发育分析表明,所有四个组的基因都编码具有酰基转移酶活性的酶。这些研究为植物MBOAT基因家族的全面了解提供了基础,并有助于揭示不同MBOAT基因在植物中的酶功能[5]。

肝细胞脂肪变性是指肝脏中脂肪积累的过程,其易感性在不同物种之间可能存在差异。研究发现,在Muscovy和Pekin鸭之间,肝细胞脂肪变性的易感性存在差异。为了研究这种差异,研究者分析了Pekin和Muscovy鸭肝脏中参与脂质和碳水化合物代谢的基因的表达水平。结果表明,饮食对主要参与脂肪酸和甘油三酯合成以及糖酵解的基因的表达有积极影响,而对参与β-氧化的基因的表达有负面影响。此外,还观察到Muscovy和Pekin鸭在stearoyl-CoA去饱和酶1和二酰甘油O-酰基转移酶2的表达水平上存在明显的物种差异。这些结果表明,特定基因的表达差异可能导致Muscovy和Pekin鸭之间脂质代谢和脂肪变性能力的差异,并可能为人类肝细胞脂肪变性的易感性提供新的见解[6]。

酰基化修饰是Ghrelin的独特特征,它通过在Ghrelin保守的丝氨酸-3上形成易受酯酶影响的酯键来完成。这种酯键的存在使得酰基Ghrelin容易转化为未酰基化的形式,如果未能充分抑制,这种转化可能导致实验结果的偏差。研究者们描述了样品处理和质谱分析技术,用于准确和同时定量酰基化和未酰基化的Ghrelin。这些技术被用于(1)表征循环和组织特异性的酰基化和未酰基化Ghrelin形式,(2)优化细胞系统以产生酰基Ghrelin并寻找负责Ghrelin酰基化的酶,以及(3)证明GOAT是Ghrelin的酰基转移酶[7]。

Ghrelin是一种在胃中产生的独特的脂肪酸修饰肽激素,在能量稳态和胃肠运动中发挥着重要作用。然而,Ghrelin酰基修饰的中链脂肪酸来源尚不清楚。研究发现,无脂肪饮食和肠道菌群的去除并没有降低胃中酰基Ghrelin的产生或血浆中酰基Ghrelin的水平。此外,通过逆转录聚合酶链反应分析发现,与脂肪酸合成、代谢和转运相关的基因在胰腺来源的Ghrelin瘤(PG-1)细胞中表达。使用不可逆的肉碱棕榈酰转移酶-1(CPT-1)抑制剂处理PG-1细胞显著降低了酰化Ghrelin的水平,但没有影响Ghrelin或Ghrelin O-酰基转移酶(GOAT)的mRNA水平。这些结果表明,用于Ghrelin酰基修饰的中链脂肪酸是由Ghrelin产生细胞自身通过β-氧化长链脂肪酸提供的[8]。

综上所述,Ghrelin O-acyl transferase (GOAT)是一种重要的酶,负责将酰基转移到Ghrelin的特定氨基酸残基上,从而生成活性形式的酰基Ghrelin (AG)。GOAT的活性受到膳食脂质的影响,并且与能量稳态和葡萄糖代谢的调节密切相关。GOAT在多种组织中表达,并参与多种生理过程。酰基化修饰是Ghrelin的独特特征,它通过在Ghrelin保守的丝氨酸-3上形成易受酯酶影响的酯键来完成。酰基Ghrelin的酰基来源可能是由Ghrelin产生细胞自身通过β-氧化长链脂肪酸提供的。GOAT的研究有助于深入理解Ghrelin的生物学功能和疾病发生机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Al Massadi, O, Tschöp, M H, Tong, J. 2011. Ghrelin acylation and metabolic control. In Peptides, 32, 2301-8. doi:10.1016/j.peptides.2011.08.020. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21893140/
2. Perret, Jason, De Vriese, Carine, Delporte, Christine. . Polymorphisms for ghrelin with consequences on satiety and metabolic alterations. In Current opinion in clinical nutrition and metabolic care, 17, 306-11. doi:10.1097/MCO.0000000000000072. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24870813/
3. Liu, Boyang, Garcia, Edwin A, Korbonits, Márta. 2011. Genetic studies on the ghrelin, growth hormone secretagogue receptor (GHSR) and ghrelin O-acyl transferase (GOAT) genes. In Peptides, 32, 2191-207. doi:10.1016/j.peptides.2011.09.006. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21930173/
4. Castorina, Sergio, Barresi, Vincenza, Luca, Tonia, Condorelli, Daniele Filippo, Cinti, Saverio. 2020. Gastric ghrelin cells in obese patients are hyperactive. In International journal of obesity (2005), 45, 184-194. doi:10.1038/s41366-020-00711-3. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33230309/
5. Wang, Peng, Wang, Zhunian, Dou, Yongchao, Wang, Maoyuan, Tian, Xinmin. 2013. Genome-wide identification and analysis of membrane-bound O-acyltransferase (MBOAT) gene family in plants. In Planta, 238, 907-22. doi:10.1007/s00425-013-1939-4. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23928653/
6. Hérault, F, Saez, G, Robert, E, Baéza, E, Diot, C. 2009. Liver gene expression in relation to hepatic steatosis and lipid secretion in two duck species. In Animal genetics, 41, 12-20. doi:10.1111/j.1365-2052.2009.01959.x. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19781035/
7. Gutierrez, Jesus A, Willency, Jill A, Knierman, Michael D, Higgs, Richard E, Hale, John E. . From ghrelin to ghrelin's O-acyl transferase. In Methods in enzymology, 514, 129-46. doi:10.1016/B978-0-12-381272-8.00009-X. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22975051/
8. Ikenoya, Chika, Takemi, Shota, Kaminoda, Arisa, Sakai, Takafumi, Sakata, Ichiro. 2018. β-Oxidation in ghrelin-producing cells is important for ghrelin acyl-modification. In Scientific reports, 8, 9176. doi:10.1038/s41598-018-27458-2. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29907775/