Golga5-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Golga5-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-09992

品系全称

C57BL/6JCya-Golga5em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-27277-Golga5-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Golga5-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-09992) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
golgin A5
基因别称
Ret-II
染色体号
Chr 12 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_013747.4 | Ensembl: ENSMUST00000021609
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 3~5
敲除长度
~2875 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1351475Homozygous knockout does not result in an obvious phenotype and does not affect Golgi apparatus morphology.
Golga5,也称为Golgin A5,是一种位于高尔基体细胞质面的卷曲螺旋蛋白,属于Golgins蛋白家族。Golgins蛋白被认为在维持高尔基体的结构完整性中起作用,通过作为逆向囊泡运输的锚定因子。Golga5在细胞中发挥的关键作用包括维持高尔基体的结构,调节囊泡运输,以及参与细胞信号转导和细胞分化等过程。

研究表明,Golga5在小鼠胚胎发育和出生后存活中不是必需的。通过CRISPR/Cas9介导的基因组编辑技术,研究人员生成了Golga5敲除小鼠。尽管在培养细胞中敲低Golga5会影响高尔基体的组织结构和囊泡运输,但在Golga5敲除小鼠中,并没有发现对小鼠胚胎发育、出生后存活或生育能力的影响[2]。此外,Golga5的失活并没有加剧Golgb1敲除小鼠的发育缺陷,表明Golga5和Golgb1在维持高尔基体结构和功能方面具有不同的作用。

在辐射诱导的甲状腺癌发生过程中,Golga5基因也涉及其中。研究发现,在儿童辐射诱导的乳头状甲状腺癌(PTC)中,RET基因重排是主要的遗传异常。在这些RET基因重排中,RET基因的跨膜和细胞外结构域丢失,并被其他基因的5'端部分所取代。这些基因通常包含具有二聚化潜力的螺旋线圈结构域,导致RET酪氨酸激酶结构域在融合产物的3'端构成性激活。这些RET基因重排包括ELE1/RET、H4/RET、RIalpha/RET、GOLGA5/RET、HTIF/RET、RFG7/RET和RFG8/RET等[1]。每种融合都会导致RET酪氨酸激酶与其严格的生理调节分离,并且在通常不表达RET酪氨酸激酶的甲状腺细胞中由融合基因的5'部分异常激活。这些细胞表现出异位RET表达、克隆扩增和早期侵袭等特征。这些RET基因重排对于调节肿瘤发展至关重要,ELE1/RET重排导致肿瘤进展最快,与PTC的实体型相关,而H4/RET重排与PTC的乳头状或滤泡型相关。

此外,Golga5基因在牛中性粒细胞的内源控制基因表达中也被研究。研究发现,在牛围产期中性粒细胞中,Golga5基因的表达水平相对稳定,可以作为内源控制基因用于相对定量PCR分析[3]。

在持久和急性沙眼衣原体感染中,Golgi相关基因(golga5)的转录和表达以及高尔基体的结构也发生了变化。研究表明,持久感染导致高尔基体的碎片化较少,而急性感染导致高尔基体的碎片化。此外,Golgi体的碎片化可能与golga5基因转录的抑制有关[4]。

在前列腺癌中,Golga5基因也被研究。研究发现,染色域螺旋酶DNA结合蛋白家族成员CHD6与Golga5基因的启动子区域结合,并通过调节组蛋白修饰和染色质结构来维持管家基因的表达。这表明CHD6在前列腺癌中可能通过调节Golga5基因的表达来维持管家基因的表达程序[5]。

此外,Golga5基因还与其他蛋白质相互作用,如TPD52。通过酵母双杂交筛选,研究人员发现PLP2和RAB5C是TPD52的新结合伴侣,而GOLGA5和YIF1A也与TPD52和TPD52L1结合。这些发现为理解TPD52的功能提供了新的见解[6]。

在牙齿发育过程中,Golga5基因的表达也受到调控。研究发现,C-Jun N-末端激酶(JNK)信号通路的激活对于牙乳头细胞的极化形成至关重要。在牙乳头发育过程中,JNK信号通路的激活导致Prickle3、Golga2、Golga5和RhoA等极化相关基因的上调表达。这表明Golga5基因在牙乳头细胞的极化形成中发挥重要作用[7]。

在结直肠癌的肝或腹膜转移中,Golga5基因的表达也受到调控。研究发现,Golga5基因的表达水平在肝转移和腹膜转移中均有显著变化。此外,Golga5基因的表达水平与结直肠癌患者的预后相关,可以作为潜在的预后标志物[8]。

在非小细胞肺癌(NSCLC)中,Golga5基因的重排也与肿瘤的发生和发展相关。研究发现,Golga5基因的重排与非小细胞肺癌的发生和发展相关,并且与非小细胞肺癌患者的预后相关。此外,Golga5基因的重排还与其他驱动基因的共突变相关,如EGFR、KRAS和ALK等[9]。

在哮喘患者中,Golga5基因的表达也受到调控。研究发现,在哮喘患者中,Golga5基因的表达水平在甲酰胆碱激发试验后显著下调。这表明Golga5基因可能在哮喘的发病机制中发挥重要作用[10]。

综上所述,Golga5基因在多种生物学过程中发挥重要作用,包括维持高尔基体的结构、调节囊泡运输、参与细胞信号转导和细胞分化等。Golga5基因的表达受到多种因素的调控,如基因重排、信号通路激活和细胞类型等。此外,Golga5基因的表达水平与多种疾病的预后相关,可以作为潜在的预后标志物。Golga5基因的研究有助于深入理解其在细胞生物学和疾病发生中的作用机制,为疾病的诊断和治疗提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Rabes, H M. . Gene rearrangements in radiation-induced thyroid carcinogenesis. In Medical and pediatric oncology, 36, 574-82. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11340615/
2. McGee, Lynessa J, Jiang, Alex L, Lan, Yu. 2017. Golga5 is dispensable for mouse embryonic development and postnatal survival. In Genesis (New York, N.Y. : 2000), 55, . doi:10.1002/dvg.23039. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28509431/
3. Crookenden, M A, Walker, C G, Kuhn-Sherlock, B, Heiser, A, Roche, J R. 2017. Technical note: Evaluation of endogenous control gene expression in bovine neutrophils by reverse-transcription quantitative PCR using microfluidics gene expression arrays. In Journal of dairy science, 100, 6763-6771. doi:10.3168/jds.2016-12460. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28624280/
4. Zhu, Huiling, Li, Hongmei, Wang, Pu, Han, Jiande, Zhang, Qinfen. 2014. Persistent and acute chlamydial infections induce different structural changes in the Golgi apparatus. In International journal of medical microbiology : IJMM, 304, 577-85. doi:10.1016/j.ijmm.2014.03.002. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24780199/
5. Bu, Lina, Huang, Shaodong, Rao, Ziyan, He, Lin, Zhao, Dongyu. 2024. CHD6 eviction of promoter nucleosomes maintains housekeeping transcriptional program in prostate cancer. In Molecular therapy. Nucleic acids, 35, 102397. doi:10.1016/j.omtn.2024.102397. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39717618/
6. Shahheydari, Hamideh, Frost, Sarah, Smith, Brian J, Chen, Yuyan, Byrne, Jennifer A. 2014. Identification of PLP2 and RAB5C as novel TPD52 binding partners through yeast two-hybrid screening. In Molecular biology reports, 41, 4565-72. doi:10.1007/s11033-014-3327-y. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24604726/
7. Luo, Jiao, Tan, Xiujun, Ye, Ling, Wang, Chenglin. 2021. C-Jun N-terminal kinase (JNK) pathway activation is essential for dental papilla cells polarization. In PloS one, 16, e0233944. doi:10.1371/journal.pone.0233944. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33770099/
8. Varghese, Sheelu, Burness, Monika, Xu, Hui, Pingpank, James, Alexander, H Richard. 2007. Site-specific gene expression profiles and novel molecular prognostic factors in patients with lower gastrointestinal adenocarcinoma diffusely metastatic to liver or peritoneum. In Annals of surgical oncology, 14, 3460-71. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/17899288/
9. Feng, Junnan, Li, Yan, Wei, Bing, Ying, Jianming, Ma, Jie. . Clinicopathologic characteristics and diagnostic methods of RET rearrangement in Chinese non-small cell lung cancer patients. In Translational lung cancer research, 11, 617-631. doi:10.21037/tlcr-22-202. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35529790/
10. Tebbutt, Scott J, He, Jian-Qing, Singh, Amrit, Ruan, Jian, Carlsten, Chris. 2012. Transcriptional Changes of Blood Eosinophils After Methacholine Inhalation Challenge in Asthmatics. In Genomics insights, 5, 1-12. doi:10.4137/GEI.S9125. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26217105/