Sh3d19-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Sh3d19-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-09907

品系全称

C57BL/6JCya-Sh3d19em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-27059-Sh3d19-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Sh3d19-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-09907) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
SH3 domain protein D19
基因别称
Kryn
染色体号
Chr 3 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001082414.3 | Ensembl: ENSMUST00000238545
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 9
敲除长度
~613 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Sh3d19,也称为Src同源域3结构域蛋白19,是一种包含五个Src同源域的适配蛋白。Src同源域(SH3)是介导蛋白质-蛋白质相互作用的模块,广泛存在于多种信号转导途径中。Sh3d19通过其SH3结构域与多种蛋白质相互作用,参与调节细胞内信号转导和细胞功能。Sh3d19的表达具有组织特异性,其在不同组织和细胞类型中的表达模式可能与其功能相关。

在哺乳动物皮肤中,Sh3d19的表达与毛发生长周期相关。研究发现,Sh3d19在生长期小鼠毛囊的髓质细胞中特异性表达,其表达水平与毛发生长周期同步[2]。这表明Sh3d19可能在毛囊发育和毛发生长过程中发挥重要作用。此外,Sh3d19在急性髓系白血病(AML)患者中作为RUNX1基因的易位伙伴基因被发现[3]。RUNX1基因编码的转录因子在AML的发生发展中起着重要作用,而Sh3d19与RUNX1基因的易位可能导致RUNX1基因功能的改变,从而影响AML的发生和发展。此外,Sh3d19在乳牛氮代谢和氮排泄中也发挥重要作用。研究发现,Sh3d19基因的遗传变异与乳牛牛奶尿素氮浓度相关,提示Sh3d19可能参与调控乳牛的氮代谢和氮排泄[4]。

Sh3d19在猪卵母细胞的体外成熟过程中也发挥重要作用。研究发现,Sh3d19在猪卵母细胞体外成熟过程中表达下调,这表明Sh3d19可能参与调控卵母细胞的转录和蛋白质代谢过程[5]。此外,Sh3d19在斑马鱼牙齿发育中也发挥重要作用。研究发现,Sh3d19在斑马鱼牙齿发育过程中的牙上皮细胞中表达,其表达水平与牙齿发育的起始和形态发生阶段相关[6]。

Sh3d19在肌肉萎缩中也发挥重要作用。研究发现,在去神经支配的肌肉萎缩模型中,Sh3d19在Ⅱb型肌核中的表达显著上调,这表明Sh3d19可能参与调控肌肉萎缩的发生和发展[1]。此外,Sh3d19在细胞间的通讯中也发挥重要作用。研究发现,去神经支配后,肌纤维与肌肉 resident 细胞之间的通讯减弱,这可能与Sh3d19的表达改变有关。

综上所述,Sh3d19是一种包含五个Src同源域的适配蛋白,在多种生物学过程中发挥重要作用。Sh3d19在毛囊发育、毛发生长、急性髓系白血病、乳牛氮代谢和氮排泄、猪卵母细胞的体外成熟、斑马鱼牙齿发育以及肌肉萎缩等过程中均发挥重要作用。Sh3d19的研究有助于深入理解其在不同生物学过程中的功能和作用机制,为相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Lin, Hongchun, Ma, Xinxin, Sun, Yuxiang, Thomas, Sandhya Sara, Hu, Zhaoyong. 2022. Decoding the transcriptome of denervated muscle at single-nucleus resolution. In Journal of cachexia, sarcopenia and muscle, 13, 2102-2117. doi:10.1002/jcsm.13023. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35726356/
2. Shimomura, Yutaka, Aoki, Noriaki, Ito, Kaoru, Ito, Masaaki. . Gene expression of Sh3d19, a novel adaptor protein with five Src homology 3 domains, in anagen mouse hair follicles. In Journal of dermatological science, 31, 43-51. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12615363/
3. Nguyen, TuDung T, Ma, Lisa N, Slovak, Marilyn L, Cherry, Athena M, Arber, Daniel A. . Identification of novel Runx1 (AML1) translocation partner genes SH3D19, YTHDf2, and ZNF687 in acute myeloid leukemia. In Genes, chromosomes & cancer, 45, 918-32. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16858696/
4. Honerlagen, Hanne, Reyer, Henry, Oster, Michael, Reinsch, Norbert, Wimmers, Klaus. 2021. Identification of Genomic Regions Influencing N-Metabolism and N-Excretion in Lactating Holstein- Friesians. In Frontiers in genetics, 12, 699550. doi:10.3389/fgene.2021.699550. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34335696/
5. Brązert, Maciej, Kranc, Wiesława, Nawrocki, Mariusz J, Nowicki, Michał, Kempisty, Bartosz. 2020. New markers for regulation of transcription and macromolecule metabolic process in porcine oocytes during in vitro maturation. In Molecular medicine reports, 21, 1537-1551. doi:10.3892/mmr.2020.10963. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32016446/
6. Laurenti, Patrick, Thaëron, Christelle, Allizard, Françoise, Huysseune, Ann, Sire, Jean-Yves. . Cellular expression of eve1 suggests its requirement for the differentiation of the ameloblasts and for the initiation and morphogenesis of the first tooth in the zebrafish (Danio rerio). In Developmental dynamics : an official publication of the American Association of Anatomists, 230, 727-33. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15254906/