Foxi2-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Foxi2-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-09863

品系全称

C57BL/6JCya-Foxi2em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-270004-Foxi2-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Foxi2-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-09863) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
forkhead box I2
基因别称
B130055A05Rik
染色体号
Chr 7 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_183193.3 | Ensembl: ENSMUST00000060356
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 1~2
敲除长度
~1678 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:3028075Mice homozygous for a null allele are viable and fertile with no gross abnormalities.
Foxi2,也称为forkhead box I2,是叉头框转录因子家族的一员,参与调控多种生物学过程,包括胚胎发育、细胞命运决定和基因表达等。Foxi2在多种生物体中都有表达,包括哺乳动物、两栖动物和鱼类等。

在哺乳动物中,Foxi2的表达主要局限于上皮结构和特定导管,以及发育中的前脑和神经视网膜。研究表明,Foxi2在细胞命运决定中发挥重要作用,其高度受限的表达模式提示其在控制细胞身份方面可能具有潜在的作用[3]。此外,Foxi2还在脊椎动物中的胚层特化过程中发挥重要作用,与Sox3共同作为关键的胚层特异性调节因子,共同调控数百个胚层特异性基因的表达[2]。

在两栖动物中,Foxi2的表达主要出现在早期胚胎发育阶段。例如,在非洲爪蟾(Xenopus laevis)中,Foxi2的表达主要出现在神经外胚层,并在神经管的背侧区域以及视网膜和鳃弓中表达[1]。此外,Foxi2还作为母系转录因子,在早期胚胎发育阶段激活Foxi1e的表达,从而在早期外胚层的表达中发挥重要作用[6]。

在鱼类中,Foxi2的表达也主要出现在早期胚胎发育阶段。例如,在斑马鱼中,Foxi2的表达主要出现在早期胚胎的躯干中胚层和后期胚胎的视网膜和鳃弓中[5]。此外,Foxi2还与Sox3一起,在斑马鱼中作为关键的胚层特异性调节因子,共同调控胚层特异性基因的表达[2]。

除了在胚胎发育中的作用,Foxi2还与多种疾病的发生和发展有关。例如,研究表明,Foxi2的表达与胰腺导管腺癌的预后相关,Foxi2的表达水平与患者的生存率呈正相关[4]。此外,Foxi2的表达还与口腔癌的发生有关,Foxi2的甲基化水平与口腔癌的风险相关[7]。

综上所述,Foxi2是一种重要的叉头框转录因子,在胚胎发育、细胞命运决定和基因表达等方面发挥重要作用。Foxi2的表达与多种疾病的发生和发展有关,包括胰腺导管腺癌和口腔癌等。深入研究Foxi2的功能和调控机制,有助于我们更好地理解其在生物学过程中的作用,并为相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Pohl, Barbara S, Rössner, Antje, Knöchel, Walter. . The Fox gene family in Xenopus laevis:FoxI2, FoxM1 and FoxP1 in early development. In The International journal of developmental biology, 49, 53-8. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15744668/
2. Hendrickson, Clark L, Blitz, Ira L, Hussein, Amina, Kofron, Matthew J, Cho, Ken W Y. 2025. Foxi2 and Sox3 are master regulators controlling ectoderm germ layer specification. In bioRxiv : the preprint server for biology, , . doi:10.1101/2025.01.09.632114. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39829826/
3. Wijchers, Patrick J E C, Hoekman, Marco F M, Burbach, J Peter H, Smidt, Marten P. 2005. Cloning and analysis of the murine Foxi2 transcription factor. In Biochimica et biophysica acta, 1731, 133-8. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16289364/
4. Zhang, Zihan, Zhu, Rui, Sun, Wentian, Wang, Jun, Liu, Jin. 2021. Analysis of Methylation-driven Genes in Pancreatic Ductal Adenocarcinoma for Predicting Prognosis. In Journal of Cancer, 12, 6507-6518. doi:10.7150/jca.53208. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34659542/
5. Solomon, Keely S, Logsdon, John M, Fritz, Andreas. . Expression and phylogenetic analyses of three zebrafish FoxI class genes. In Developmental dynamics : an official publication of the American Association of Anatomists, 228, 301-7. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/14579370/
6. Cha, Sang-Wook, McAdams, Meredith, Kormish, Jay, Wylie, Christopher, Kofron, Matthew. 2012. Foxi2 is an animally localized maternal mRNA in Xenopus, and an activator of the zygotic ectoderm activator Foxi1e. In PloS one, 7, e41782. doi:10.1371/journal.pone.0041782. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22848601/
7. Foy, Jean-Philippe, Pickering, Curtis R, Papadimitrakopoulou, Vassiliki A, Mao, Li, Saintigny, Pierre. 2015. New DNA methylation markers and global DNA hypomethylation are associated with oral cancer development. In Cancer prevention research (Philadelphia, Pa.), 8, 1027-35. doi:10.1158/1940-6207.CAPR-14-0179. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26342026/