Fgd2-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Fgd2-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-09549

品系全称

C57BL/6JCya-Fgd2em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-26382-Fgd2-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Fgd2-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-09549) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
FYVE, RhoGEF and PH domain containing 2
基因别称
Tcd-2,Tcd2,ZFYVE4,tcs-2,tcs2
染色体号
Chr 17 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_013710.4 | Ensembl: ENSMUST00000024810
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 7~8
敲除长度
~910 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Fgd2,也称为faciogenital dysplasia 2,是FGD基因家族中的一个重要成员。FGD基因家族编码一组关键的鸟苷酸交换因子(GEFs),这些因子通过特异性激活Cdc42来控制细胞骨架依赖性膜重排。Fgd2在多种细胞类型中表达,包括抗原呈递细胞,如B淋巴细胞、巨噬细胞和树突状细胞。在B淋巴细胞谱系中,Fgd2的水平随发育阶段而变化。在成熟的脾脏B细胞和未成熟的骨髓B细胞中,Fgd2的表达在通过B细胞抗原受体激活后受到抑制。Fgd2在细胞内的定位复杂,其浓度在膜褶皱和早期内涵体中发现。尽管Fgd2的内涵体定位依赖于保守的FYVE结构域,但其C端的pleckstrin同源结构域介导了其在膜褶皱中的募集。Fgd2的过表达促进了Cdc42的激活,并导致JNK1活性升高,这种升高是Cdc42依赖性的,而不是Rac1依赖性的。这些发现与Fgd2在免疫系统中专门呈递抗原的细胞中的白细胞信号传导和囊泡转运中的作用一致[4]。

Fgd2 cDNA编码一个727个氨基酸的蛋白质,预测分子量为82 kDa。Fgd2和FGD1在超过560个连续氨基酸残基上共享高度的序列同源性。Fgd2和FGD1都包含相邻的RhoGEF和PH结构域、一个第二个羧基末端PH结构域和一个独特的FYVE结构域。基因组PCR研究表明,Fgd2和FGD1之间在基因结构上存在一定程度的保守性。Fgd2转录本存在于多种不同的组织中,并在小鼠胚胎发生过程中出现,这表明它在胚胎发育中发挥作用。遗传连锁和辐射杂合子作图数据表明,Fgd2和人类FGD2同源基因分别定位于小鼠染色体17和人类染色体6p21.2的保守区域。所有FGD1基因家族成员都含有等价的信号结构域和保守的结构组织,这强烈表明这些信号结构域形成了FGD1家族RhoGEF蛋白的典型核心结构[1]。

Fgd2的Dbl同源结构域(DH)负责将GTP结合的GDP从Cdc42中交换出来,从而激活下游因子。为了研究Fgd2的DH结构域对Cdc42的鸟苷酸交换活性,构建了一个原核表达系统,用于在E. coli BL21(DE3)中表达人类Fgd2的DH结构域(FGD2-DH)。纯化的FGD2-DH表现出一个均一的单体,其估计分子量与理论分子量相对应,并被预测为α螺旋蛋白。FGD2-DH在体外表现出微弱的鸟苷酸交换活性,并且在戊二醛交联后与Cdc42的相互作用非常微弱[2]。

在几种家族性糖皮质激素缺乏症(FGD)的病例中,与FGD1相关的基因突变导致了X连锁发育障碍,影响了多种骨骼结构的形成。然而,对于大多数FGD病例(FGD2型),在编码肾上腺皮质激素受体(MC2R)基因的编码外显子中没有发现突变。通过基因组连锁分析,发现FGD2基因定位于染色体8q,并且至少有一个其他基因位于不同的区域,负责FGD在这些家族中的发生,这提供了该疾病遗传异质性的新证据[3]。

Fgd2的表达与黑色素瘤患者的生存密切相关。免疫评分较高的患者比评分较低的患者具有更好的总生存期。在482名黑色素瘤患者中,根据免疫细胞(免疫评分)、基质细胞(基质评分)和肿瘤纯度(估计评分),构建了每个患者的三个评分。通过GO和KEGG富集分析筛选出TME相关基因。在这些基因中,FGD2的表达与生存密切相关,并在包括的黑色素瘤患者中得到证实[6]。

在头颈鳞状细胞癌(HNSC)患者中,FGD2和FGD3 mRNA的高水平表达与良好的总生存期相关。这些发现表明,FGD2和FGD3 mRNA在HNSC中的表达水平与预后相关,可能被视为潜在的预后生物标志物[7]。

Fgd2在瘦和肥胖女性中的DNA甲基化存在差异。通过Illumina Infinium HumanMethylation450 BeadChip进行的白细胞全基因组关联研究(EWAS)表明,在肥胖女性中,与瘦女性相比,差异低甲基化过度表达。在调整模型中,EWAS揭示了10个与8个基因位点相关的差异甲基化CpG位点,包括COX6A1P2/FGD2、SBNO2、TEX41、RPS6KA2、IGHE/IGHG1/IGHD、DMAP1、SOCS3和SETBP1,以及染色体2上的一个增强子位点(2p25.1)。与TEX41、IGHE/IGHG1/IGHD、DMAP1和SETBP1相关的位点以前未被发现,而COX6A1P/FGD2、SBNO2、RPS6KA2和SOCS3以前已被确定,并且具有一致的作用方向。RPS6KA2、DMAP1和SETBP1在BMI不一致的单卵双胞胎队列中得到了复制[8]。

Fgd2是一种Rho鸟苷酸交换因子,在精子的运动中起着重要作用。通过基因靶向产生Fgd2的功能缺失等位基因,可以减少t表型的传递率,这直接证明了Fgd2作为Distorter的作用。Fgd2的发现揭示了第二个Rho G蛋白信号通路在TRD中的作用[5]。

Fgd2的遗传抑制可以减少冷冻保护剂毒性。使用转座子介导的突变来识别具有冷冻保护剂毒性抗性(CTR)的突变。通过选择对M22的毒性作用具有抵抗力的突变体,发现并表征了六个对M22具有抵抗力的突变体。这些突变体分别属于六个独立的生化途径,这些途径以前未与冷冻保护剂毒性相关。与这些突变相关的基因包括Gm14005、Myh9、Nrg2、Pura、Fgd2、Pim1、Opa1、Hes1、Hsbp1和Ywhag。这些突变的作用机制尚不清楚,但其中两个突变涉及MYC信号传导,这与CT有关。几种突变可能上调细胞应激防御途径。几个对M22有抵抗力的突变体也对二甲基亚砜(Me2SO)有抵抗力,许多突变体在用10%的Me2SO冷冻和融化后显示出显著的生存改善。这种克服CT的新方法比转录组分析等其他方法具有许多优势。该方法直接识别了明确影响CT的特定遗传位点。更普遍地说,这些结果首次直接证明了通过特定的分子干预可以减少哺乳动物细胞的CT。因此,这种方法为药物阻断CT开辟了新的可能性[9]。

综上所述,Fgd2是一种重要的Rho鸟苷酸交换因子,在细胞骨架依赖性膜重排、白细胞信号传导、囊泡转运、发育和疾病发生中发挥重要作用。Fgd2在多种疾病中发挥重要作用,包括家族性糖皮质激素缺乏症、黑色素瘤、头颈鳞状细胞癌和肥胖。此外,Fgd2的遗传抑制可以减少冷冻保护剂毒性。Fgd2的研究有助于深入理解Rho GTPase信号传导的生物学功能和疾病发生机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Pasteris, N G, Gorski, J L. . Isolation, characterization, and mapping of the mouse and human Fgd2 genes, faciogenital dysplasia (FGD1; Aarskog syndrome) gene homologues. In Genomics, 60, 57-66. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10458911/
2. Chuan, Junlan, He, Shiyu, Xie, Tian, Wang, Ganggang, Yang, Zhenglin. 2020. Characterization of guanine nucleotide exchange activity of DH domain of human FGD2. In Protein expression and purification, 176, 105693. doi:10.1016/j.pep.2020.105693. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32681954/
3. Génin, Emmanuelle, Huebner, Angela, Jaillard, Christine, Bégeot, Martine, Naville, Danielle. 2002. Linkage of one gene for familial glucocorticoid deficiency type 2 (FGD2) to chromosome 8q and further evidence of heterogeneity. In Human genetics, 111, 428-34. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12384787/
4. Huber, Christoph, Mårtensson, Annica, Bokoch, Gary M, Nemazee, David, Gavin, Amanda L. 2008. FGD2, a CDC42-specific exchange factor expressed by antigen-presenting cells, localizes to early endosomes and active membrane ruffles. In The Journal of biological chemistry, 283, 34002-12. doi:10.1074/jbc.M803957200. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18838382/
5. Bauer, Hermann, Véron, Nathalie, Willert, Jürgen, Herrmann, Bernhard G. . The t-complex-encoded guanine nucleotide exchange factor Fgd2 reveals that two opposing signaling pathways promote transmission ratio distortion in the mouse. In Genes & development, 21, 143-7. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/17234881/
6. Ning, Xuchao, Li, Renzhi, Zhang, Bin, Lyu, Xiajie, Chen, Zhenyu. 2021. Immune Score Indicator for the Survival of Melanoma Patients Based on Tumor Microenvironment. In International journal of general medicine, 14, 10397-10416. doi:10.2147/IJGM.S336105. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35002296/
7. Ma, Chao, Li, Haoyu, Li, Xian, Lu, Shuwen, He, Jianfeng. 2019. The prognostic value of faciogenital dysplasias as biomarkers in head and neck squamous cell carcinoma. In Biomarkers in medicine, 13, 1399-1415. doi:10.2217/bmm-2019-0273. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31596126/
8. Kvaløy, Kirsti, Page, Christian Magnus, Holmen, Turid Lingaas. 2018. Epigenome-wide methylation differences in a group of lean and obese women - A HUNT Study. In Scientific reports, 8, 16330. doi:10.1038/s41598-018-34003-8. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30397228/
9. Cypser, James R, Chick, Wallace S, Fahy, Gregory M, Schumacher, Garrett J, Johnson, Thomas E. 2018. Genetic suppression of cryoprotectant toxicity. In Cryobiology, 86, 95-102. doi:10.1016/j.cryobiol.2018.11.003. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30458175/