Or51b6b-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Or51b6b-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-09503

品系全称

C57BL/6JCya-Or51b6bem1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-259126-Or51b6b-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Or51b6b-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-09503) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
olfactory receptor family 51 subfamily B member 6B
基因别称
MOR1-4,Olfr623
染色体号
Chr 7 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_147122 | Ensembl: ENSMUST00000068531
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 1
敲除长度
~1.6 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
基因Or51b6b,全称为olfactory receptor family 51, subfamily B, member 6b,是一种位于人类嗅觉受体基因家族中的基因。嗅觉受体基因家族是人体中最大的基因家族之一,它们编码了嗅觉受体蛋白,这些蛋白位于鼻腔嗅觉上皮的嗅觉受体细胞上,负责检测和识别各种气味分子。Or51b6b是嗅觉受体基因家族中的一部分,其编码的蛋白可能参与了特定气味分子的识别过程。

在嗅觉受体基因家族中,基因复制和丢失是常见的进化事件。在复制后的基因中,通常会以大致相同的速率积累序列变化。然而,在某些情况下,序列变化的积累是不均匀的,一个副本会从其同源基因中显著分化。这种现象被称为“不对称进化”,在串联基因复制后比在全基因组复制后更为常见,可以产生全新的基因。例如,在鳞翅目、软体动物和哺乳动物的复制同源基因中,已经发现了不对称进化的例子,每个例子都产生了新的同源基因,并招募到新的发育角色[1]。

此外,在家族性乳腺癌中,已经发现了一些高、中和低渗透性易感基因。例如,BRCA1、BRCA2、PTEN和TP53等基因与遗传性综合征有关。此外,还有许多基因与DNA修复有关,例如CHEK2、ATM、BRIP1 (FANCJ)、PALB2 (FANCN)和RAD51C (FANCO),它们与乳腺癌的风险有关[2]。

基因工程领域的发展为研究基因功能提供了新的手段。通过构建和实现合成基因网络,可以模拟和定量分析细胞过程,为基因和细胞治疗等领域提供新的逻辑形式[3]。此外,基因敲除技术可以用于探索基因功能,但基因敲除导致的致死性表型需要通过基因间的相互作用来克服。例如,在裂殖酵母中,约30%的致死基因可以通过基因间相互作用来挽救[4]。

基因调控网络在细胞过程中发挥着重要作用。通过研究基因之间的相互作用,可以深入了解基因表达和细胞过程的调控机制[5]。此外,基因片段的研究可以提供对基因结构和功能的深入理解[6]。在植物中,抗性基因的依赖性防御反应对于植物的抗病性至关重要[7]。MHC基因的表达调控对于免疫系统功能的维持也至关重要[8]。

综上所述,基因Or51b6b作为嗅觉受体基因家族的一部分,可能参与了特定气味分子的识别过程。通过基因复制和不对称进化,嗅觉受体基因家族产生了新的基因,并招募到新的发育角色。此外,基因工程技术和基因敲除技术为研究基因功能提供了新的手段。基因调控网络和基因片段的研究有助于深入了解基因表达和细胞过程的调控机制。

参考文献:
1. Holland, Peter W H, Marlétaz, Ferdinand, Maeso, Ignacio, Dunwell, Thomas L, Paps, Jordi. . New genes from old: asymmetric divergence of gene duplicates and the evolution of development. In Philosophical transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological sciences, 372, . doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27994121/
2. Filippini, Sandra E, Vega, Ana. 2013. Breast cancer genes: beyond BRCA1 and BRCA2. In Frontiers in bioscience (Landmark edition), 18, 1358-72. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23747889/
3. Hasty, Jeff, McMillen, David, Collins, J J. . Engineered gene circuits. In Nature, 420, 224-30. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12432407/
4. Du, Li-Lin. 2020. Resurrection from lethal knockouts: Bypass of gene essentiality. In Biochemical and biophysical research communications, 528, 405-412. doi:10.1016/j.bbrc.2020.05.207. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32507598/
5. Davidson, Eric, Levin, Michael. 2005. Gene regulatory networks. In Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 102, 4935. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15809445/
6. Mateles, R I. . Gene fragments. In Bio/technology (Nature Publishing Company), 10, 456. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/1368495/
7. Hammond-Kosack, K E, Jones, J D. . Resistance gene-dependent plant defense responses. In The Plant cell, 8, 1773-91. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8914325/
8. Ting, J P, Baldwin, A S. . Regulation of MHC gene expression. In Current opinion in immunology, 5, 8-16. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8452678/