Or2ag19-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Or2ag19-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-09118

品系全称

C57BL/6JCya-Or2ag19em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-258589-Or2ag19-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Or2ag19-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-09118) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
olfactory receptor family 2 subfamily AG member 19
基因别称
MOR283-7,Olfr703
染色体号
Chr 7 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_146596 | Ensembl: ENSMUST00000098142
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 1
敲除长度
~1.5 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Or2ag19,也称为olfactory receptor 2AG19,是位于人类第11号染色体上的一种嗅觉受体基因。嗅觉受体基因是一类编码嗅觉受体的基因,这些受体负责感知和识别气味分子。Or2ag19基因的表达产物是一种嗅觉受体蛋白,这种蛋白能够结合特定的气味分子,从而激活嗅觉信号传导通路。嗅觉信号传导通路是嗅觉系统中的关键环节,它将气味分子的信息传递到大脑,使我们能够感知不同的气味。

Or2ag19基因在嗅觉系统的功能中发挥重要作用。嗅觉受体基因的表达和功能受到多种因素的调控,包括基因复制、基因丢失和基因序列变异等。基因复制和基因丢失是动物基因组进化的常见事件,它们之间的平衡对物种之间基因数量的差异有着重要的影响。基因复制后,两个子基因通常以相似的速度积累序列变化。然而,在某些情况下,序列变化的积累是不对称的,其中一个基因与其同源基因相比发生了显著的差异。这种现象称为“非对称进化”,在串联基因复制后比全基因组复制后更为常见,并且可以产生具有显著新功能的基因[1]。

嗅觉受体基因的非对称进化在蛾类、软体动物和哺乳动物中都有报道。这些非对称进化的嗅觉受体基因被招募到新的发育功能中,从而为物种的嗅觉感知提供了多样性。非对称进化的普遍性常常被低估,部分原因是使用标准系统发育方法难以解析高度分化的基因的起源。

除了嗅觉受体基因的非对称进化,还有其他与嗅觉相关的基因和机制在嗅觉系统中发挥作用。例如,基因调控网络在嗅觉信号传导中起着重要作用。基因调控网络是由基因和蛋白质组成的复杂网络,它们通过相互作用和调控来控制基因的表达和功能。在嗅觉系统中,基因调控网络可以调节嗅觉受体的表达和功能,从而影响嗅觉感知的敏感性和特异性。此外,基因片段和基因工程等技术在嗅觉研究中也有应用。基因片段是指基因的一部分,它们可以用于研究基因的功能和调控。基因工程可以用于设计和构建合成基因网络,从而模拟和调控嗅觉信号传导过程。

综上所述,Or2ag19是一种重要的嗅觉受体基因,它编码的嗅觉受体蛋白参与嗅觉信号的传导。嗅觉受体基因的非对称进化为物种的嗅觉感知提供了多样性。除了嗅觉受体基因,基因调控网络、基因片段和基因工程等技术和机制也在嗅觉系统中发挥作用。进一步研究Or2ag19和其他相关基因和机制有助于深入理解嗅觉系统的功能和进化机制,为嗅觉相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略[1][2][3][4][5][6][7][8]。

参考文献:
1. Holland, Peter W H, Marlétaz, Ferdinand, Maeso, Ignacio, Dunwell, Thomas L, Paps, Jordi. . New genes from old: asymmetric divergence of gene duplicates and the evolution of development. In Philosophical transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological sciences, 372, . doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27994121/
2. Filippini, Sandra E, Vega, Ana. 2013. Breast cancer genes: beyond BRCA1 and BRCA2. In Frontiers in bioscience (Landmark edition), 18, 1358-72. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23747889/
3. Hasty, Jeff, McMillen, David, Collins, J J. . Engineered gene circuits. In Nature, 420, 224-30. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12432407/
4. Du, Li-Lin. 2020. Resurrection from lethal knockouts: Bypass of gene essentiality. In Biochemical and biophysical research communications, 528, 405-412. doi:10.1016/j.bbrc.2020.05.207. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32507598/
5. Davidson, Eric, Levin, Michael. 2005. Gene regulatory networks. In Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 102, 4935. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15809445/
6. Mateles, R I. . Gene fragments. In Bio/technology (Nature Publishing Company), 10, 456. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/1368495/
7. Hammond-Kosack, K E, Jones, J D. . Resistance gene-dependent plant defense responses. In The Plant cell, 8, 1773-91. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8914325/
8. Ting, J P, Baldwin, A S. . Regulation of MHC gene expression. In Current opinion in immunology, 5, 8-16. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8452678/