Or5p54-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Or5p54-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-09048

品系全称

C57BL/6JCya-Or5p54em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-258488-Or5p54-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Or5p54-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-09048) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
olfactory receptor family 5 subfamily P member 54
基因别称
MOR204-20,Olfr474
染色体号
Chr 7 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_146495 | Ensembl: ENSMUST00000054434
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 1
敲除长度
~1.4 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Or5p54是一个编码嗅觉受体的基因,嗅觉受体基因是一类广泛存在于生物界的基因家族,它们在嗅觉信号传导中起着至关重要的作用。Or5p54基因编码的蛋白质属于G蛋白偶联受体(GPCR)超家族,这个家族成员在细胞信号传导中扮演着重要角色。Or5p54基因的序列变化可能会影响其编码的蛋白质的活性,进而影响嗅觉信号的传导。此外,Or5p54基因的复制和丢失是动物基因组进化过程中的常见事件,这些动态过程可能导致不同物种之间基因数量的差异[1]。在基因复制后,通常两个副本的序列变化速率大致相等。然而,在某些情况下,序列变化的积累可能非常不均匀,一个副本会与它的同源基因产生显著的差异。这种“不对称进化”在串联基因复制后比全基因组复制后更为常见,并且可以产生全新的基因。不对称基因复制分化的普遍性一直被低估,部分原因是使用标准系统发育方法难以解决高度分化的基因的起源问题[1]。

基因复制和丢失在动物基因组进化中频繁发生,这两种动态过程的平衡导致了物种之间基因数量的显著差异。基因复制后,两个副本通常以大致相同的速率积累序列变化。然而,在某些情况下,序列变化的积累可能非常不均匀,一个副本会与它的同源基因产生显著的差异。这种“不对称进化”在串联基因复制后比全基因组复制后更为常见,并且可以产生全新的基因。不对称基因复制分化的普遍性一直被低估,部分原因是使用标准系统发育方法难以解决高度分化的基因的起源问题[1]。

乳腺癌是一种异质性疾病,其中大多数病例(约70%)被认为是散发性病例。家族性乳腺癌(约30%的患者),通常出现在乳腺癌发病率高的家族中,与许多高、中、低渗透率的易感基因相关。家族连锁研究已经确定了BRCA1、BRCA2、PTEN和TP53等高渗透率基因,这些基因负责遗传性综合征。此外,基于家族和人群的方法表明,参与DNA修复的基因,如CHEK2、ATM、BRIP1(FANCJ)、PALB2(FANCN)和RAD51C(FANCO),与中度的乳腺癌风险相关。乳腺癌的全基因组关联研究(GWAS)揭示了许多与乳腺癌风险略微增加或降低相关的常见低渗透率等位基因。目前,仅在临床实践中广泛使用高渗透率基因。随着下一代测序技术的发展,预计所有家族性乳腺癌基因都将被纳入遗传测试。然而,在将多基因面板测试完全整合到临床工作流程之前,还需要对中度和低风险变异体的临床管理进行额外研究。在这篇综述中,我们重点关注家族性乳腺癌风险的不同组成部分[2]。

基因工程电路的构建和分析为理解和预测细胞过程动力学提供了一个框架。这些发展标志着基因电路学科的兴起,该学科为预测和评估细胞过程动力学提供了一个框架。合成基因网络也将导致细胞控制的新逻辑形式,这可能对功能基因组学、纳米技术和基因与细胞疗法具有重要意义[3]。

理解基因型-表型关系是生物学中的核心目标。基因敲除产生完全的失活基因型,是探索基因功能的一种常用方法。基因敲除的最严重表型后果是致死性。具有致死性敲除表型的基因被称为必需基因。基于酵母的全基因组敲除分析表明,基因组中高达约四分之一的基因可能是必需的。与其他基因型-表型关系一样,基因必需性受背景效应的影响,并且可能因基因-基因相互作用而变化。特别是,对于某些必需基因,由敲除引起的致死性可以通过外基因抑制因子得到挽救。这种“必需性旁路”(BOE)基因-基因相互作用是一种未被充分研究的遗传抑制类型。最近的一项系统分析显示,令人惊讶的是,裂殖酵母Schizosaccharomyces pombe中近30%的必需基因的必需性可以通过BOE相互作用得到旁路[4]。

基因调控网络在细胞信号传导中起着至关重要的作用。这些网络通过基因和蛋白质之间的连接产生分子网络图,这些图类似于复杂的电气电路。为了系统地理解这些电路,需要开发一个描述电路的数学框架。从工程的角度来看,实现这一框架的自然途径是构建和分析构成网络的基础模块。最近在测序和基因工程方面的实验进展使得通过设计和实施易于数学建模和定量分析的合成基因网络来实现这一途径成为可能。这些发展标志着基因电路学科的兴起,该学科为预测和评估细胞过程动力学提供了一个框架。合成基因网络也将导致细胞控制的新逻辑形式,这可能对功能基因组学、纳米技术和基因与细胞疗法具有重要意义[5]。

基因片段是基因结构中的一部分,它们可能包含编码蛋白质的信息或调节基因表达的信息。基因片段的研究对于理解基因结构和功能具有重要意义[6]。

植物抗病性基因在植物免疫系统中起着关键作用。这些基因可以识别病原体相关分子模式(PAMPs)或病原体效应蛋白,并触发植物的抗病反应。抗病性基因的研究对于开发抗病植物和防治植物病害具有重要意义[7]。

主要组织相容性复合体(MHC)基因的表达调控在免疫系统中起着重要作用。MHC基因编码的蛋白质在抗原呈递和免疫应答中发挥着关键作用。对MHC基因表达调控机制的研究有助于深入理解免疫系统的功能和疾病的发生机制[8]。

基因的定义是生物学中的一个基本概念。基因是遗传信息的单位,负责编码蛋白质或RNA分子。基因的定义对于理解遗传和发育过程具有重要意义[9]。

在角质形成细胞中进行基因转移对于研究基因功能和调节具有重要意义。基因转移技术可以用于研究基因表达和调节,以及开发新的治疗方法和药物。对于研究皮肤和粘膜生物学的研究人员来说,基因转移技术在体外培养的角质形成细胞中的应用具有独特的优势[10]。

综上所述,Or5p54是一个编码嗅觉受体的基因,它在嗅觉信号传导中起着重要作用。Or5p54基因的复制和丢失是动物基因组进化过程中的常见事件,这些动态过程可能导致不同物种之间基因数量的差异。基因复制后,两个副本通常以大致相同的速率积累序列变化。然而,在某些情况下,序列变化的积累可能非常不均匀,一个副本会与它的同源基因产生显著的差异。这种“不对称进化”在串联基因复制后比全基因组复制后更为常见,并且可以产生全新的基因。不对称基因复制分化的普遍性一直被低估,部分原因是使用标准系统发育方法难以解决高度分化的基因的起源问题[1]。乳腺癌是一种异质性疾病,其中大多数病例(约70%)被认为是散发性病例。家族性乳腺癌(约30%的患者),通常出现在乳腺癌发病率高的家族中,与许多高、中、低渗透率的易感基因相关。家族连锁研究已经确定了BRCA1、BRCA2、PTEN和TP53等高渗透率基因,这些基因负责遗传性综合征。此外,基于家族和人群的方法表明,参与DNA修复的基因,如CHEK2、ATM、BRIP1(FANCJ)、PALB2(FANCN)和RAD51C(FANCO),与中度的乳腺癌风险相关。乳腺癌的全基因组关联研究(GWAS)揭示了许多与乳腺癌风险略微增加或降低相关的常见低渗透率等位基因。目前,仅在临床实践中广泛使用高渗透率基因。随着下一代测序技术的发展,预计所有家族性乳腺癌基因都将被纳入遗传测试。然而,在将多基因面板测试完全整合到临床工作流程之前,还需要对中度和低风险变异体的临床管理进行额外研究。在这篇综述中,我们重点关注家族性乳腺癌风险的不同组成部分[2]。

参考文献:
1. Holland, Peter W H, Marlétaz, Ferdinand, Maeso, Ignacio, Dunwell, Thomas L, Paps, Jordi. . New genes from old: asymmetric divergence of gene duplicates and the evolution of development. In Philosophical transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological sciences, 372, . doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27994121/
2. Filippini, Sandra E, Vega, Ana. 2013. Breast cancer genes: beyond BRCA1 and BRCA2. In Frontiers in bioscience (Landmark edition), 18, 1358-72. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23747889/
3. Hasty, Jeff, McMillen, David, Collins, J J. . Engineered gene circuits. In Nature, 420, 224-30. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12432407/
4. Du, Li-Lin. 2020. Resurrection from lethal knockouts: Bypass of gene essentiality. In Biochemical and biophysical research communications, 528, 405-412. doi:10.1016/j.bbrc.2020.05.207. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32507598/
5. Davidson, Eric, Levin, Michael. 2005. Gene regulatory networks. In Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 102, 4935. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15809445/
6. Mateles, R I. . Gene fragments. In Bio/technology (Nature Publishing Company), 10, 456. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/1368495/
7. Hammond-Kosack, K E, Jones, J D. . Resistance gene-dependent plant defense responses. In The Plant cell, 8, 1773-91. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8914325/
8. Ting, J P, Baldwin, A S. . Regulation of MHC gene expression. In Current opinion in immunology, 5, 8-16. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8452678/
9. Epp, C D. . Definition of a gene. In Nature, 389, 537. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9335484/
10. Fenjves, E S. . Approaches to gene transfer in keratinocytes. In The Journal of investigative dermatology, 103, 70S-75S. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/7963688/