Adig-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Adig-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-08749

品系全称

C57BL/6JCya-Adigem1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-246747-Adig-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Adig-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-08749) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
adipogenin
基因别称
SMAF-1,Smaf1
染色体号
Chr 2 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_145635.2 | Ensembl: ENSMUST00000059889
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 1
敲除长度
~387 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:2675492Mice homozygous for a knock-out allele exhibit reduced high fat diet-induced fat and weight gain, decreased fat mass-adjusted leptin levels, and reduced leptin secretion in adipose explants.
Adig,也称为adipogenin或Small Adipocyte Factor 1 (Smaf1),是一种在脂肪细胞中高度表达的基因。Adig基因编码一个约80个氨基酸的小蛋白质,该蛋白质在脂肪细胞分化过程中迅速诱导表达,并且与脂肪细胞的表型密切相关。Adig的表达受到多种因素的调控,包括胰岛素、葡萄糖和过氧化物酶体增殖物激活受体γ (PPARγ) 等。Adig在脂肪细胞中发挥多种功能,包括调节脂肪积累、脂解和胰岛素信号传导等。此外,Adig的表达也与肥胖、胰岛素抵抗和脂肪肝等代谢性疾病的发生和发展密切相关。

在多个体外脂肪细胞分化模型中,包括白色和棕色脂肪生成、细胞系和原代培养,Adig/Smaf1基因的表达水平已经被通过qPCR分析进行了研究[1]。此外,Adig/Smaf1转录本在多种小鼠组织中的表达水平也得到了研究,包括白色和棕色脂肪组织。在禁食和重新喂食小鼠中,Adig/Smaf1转录本在白色和棕色脂肪组织中的表达也得到了报告,并且还提供了在遗传性肥胖ob/ob小鼠中Adig/Smaf1转录本表达的数据。此外,siRNA介导的Srebp1c基因敲低对3T3-L1脂肪细胞中Adig/Smaf1转录本水平的影响也得到了研究。Luciferase报告基因分析提供了Adig/Smaf1基因5'侧翼区域约2 kb片段的调控数据,该区域由PPARγ/RXRα调节[1]。

Adig基因的表达受到过氧化物酶体增殖物激活受体γ (PPARγ) 的调控。在肝脏脂肪变性过程中,PPARγ和Adig在脂质代谢中发挥重要作用。研究发现,在多种脂肪肝小鼠模型中,Adig表达水平显著升高。尽管在2型糖尿病ob/ob小鼠的脂肪肝中,肝脏Adig表达水平较高,并且被PPARγ激动剂治疗上调,但在肝脏特异性Pparg敲除小鼠中,肝脏Adig表达水平显著降低。此外,在瘦素受体突变db/db小鼠和酒精喂养小鼠等其他脂肪肝小鼠模型中,也观察到肝脏Adig表达水平升高。Adig还在白色和棕色脂肪组织、骨骼肌肉和心脏中高度表达[2]。

Adig基因的转录活性受到PPARγ的阳性调控。报告基因和电泳迁移率变动分析显示,PPARγ通过直接结合到启动子区域的功能性PPARγ反应元件上,上调Adig的转录活性。这些结果表明,Adig是肝脏脂肪变性过程中PPARγ的一个新靶基因[2]。

Adig基因的过表达可以促进脂肪积累。研究发现,在牛肌卫星细胞中,腺病毒介导的Adig过表达可以上调PPARγ的表达水平,并且油红O染色显示比对照组更大的脂滴。此外,当感染Adig腺病毒时,Hh信号通路的关键成分下调,尽管同时使用Hh信号通路抑制剂并不能进一步降低其表达水平。此外,Adig的生物信息学分析也进行了其结构和功能的研究[3]。

Adig基因的表达受到多种因素的调控,包括胰岛素、葡萄糖和PPARγ等。Adig在脂肪细胞中发挥多种功能,包括调节脂肪积累、脂解和胰岛素信号传导等。Adig的表达与肥胖、胰岛素抵抗和脂肪肝等代谢性疾病的发生和发展密切相关。Adig基因的研究有助于深入理解脂肪细胞分化和代谢的分子机制,为肥胖和相关代谢性疾病的防治提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Ren, Gang, Cairl, Nicholas, Kim, Ji Young, Smas, Cynthia M. 2016. Data on regulation of the gene for the adipocyte-enriched micropeptide Adig/Smaf1 by qPCR analysis and luciferase reporter assay. In Data in brief, 9, 635-641. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27766294/
2. Aibara, Daisuke, Sakaguchi, Ai, Matsusue, Kimihiko. 2023. Transcriptional regulation of adipogenin expression in liver steatosis by hepatic peroxisome proliferator-activated receptor gamma. In Genes to cells : devoted to molecular & cellular mechanisms, 28, 585-594. doi:10.1111/gtc.13052. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37249025/
3. Liu, Yang, Jiang, Bijie, Fu, Changzhen, Hao, Ruijie. 2016. Cloning and characterization of adipogenin and its overexpression enhances fat accumulation of bovine myosatellite cells. In Gene, 601, 27-35. doi:10.1016/j.gene.2016.11.040. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27914980/