Ankrd27-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Ankrd27-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-08708

品系全称

C57BL/6JCya-Ankrd27em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-245886-Ankrd27-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Ankrd27-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-08708) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
ankyrin repeat domain 27
基因别称
D330003H11Rik,Varp
染色体号
Chr 7 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_145633.3 | Ensembl: ENSMUST00000040844
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 14~15
敲除长度
~1156 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
ANKRD27,全称为Ankyrin repeat domain 27,是一种包含锚蛋白重复结构域的蛋白质编码基因。锚蛋白重复结构域是一种保守的蛋白质结构,常见于多种蛋白质中,这些蛋白质通常与细胞信号传导、细胞骨架组织以及蛋白质定位等生物学过程相关。ANKRD27基因位于人类染色体8上,其编码的蛋白质在细胞中发挥多种功能,包括参与转录调控、细胞周期进程、细胞增殖和分化等。

在基因表达研究中,选择合适的内参基因对于准确评估目标基因的表达水平至关重要。ANKRD27基因由于其表达稳定性,在多种组织和细胞类型中被用作内参基因。例如,在脊髓损伤研究中,ANKRD27与Ubc和Tbp一起被推荐作为实时荧光定量PCR(qRT-PCR)的内参基因,因为这些基因在脊髓损伤后的表达稳定性较高[1]。此外,在周围神经损伤的研究中,ANKRD27也被发现是稳定表达的内参基因之一,可用于标准化损伤后的RNA表达数据[7,8]。

ANKRD27基因的表达与多种疾病的发生和发展相关。例如,在泛癌研究中,ANKRD27的表达异常与免疫特性相关,包括免疫浸润、免疫检查点基因和免疫调节基因。在肝细胞癌(HCC)中,ANKRD27的高表达与患者的较差预后相关。通过降低ANKRD27的表达,可以抑制HCC细胞的生长、迁移和侵袭能力[2]。此外,ANKRD27的表达与对某些药物的敏感性相关,提示其在HCC治疗中的潜在作用。

在结直肠癌(CRC)的研究中,ANKRD27被确定为与患者总生存期显著相关的基因之一。这表明ANKRD27可能作为CRC预后的预测因子,并可能为CRC的治疗提供新的靶点[3]。

在传染性疾病方面,ANKRD27也与多种呼吸道病毒感染相关。例如,ANKRD27的表达与流感病毒、麻疹、风疹和腮腺炎的易感性相关[4]。这表明ANKRD27可能在呼吸道病毒感染的免疫应答中发挥重要作用。

此外,ANKRD27还与某些遗传性疾病相关。例如,在嗜酸性食管炎(EoE)的研究中,ANKRD27被认为是与EoE风险相关的基因之一[5]。在牛的繁殖性状研究中,ANKRD27也被确定为与牛的繁殖能力相关的基因之一[6]。

综上所述,ANKRD27基因是一个重要的基因,其表达与多种生物学过程和疾病相关。ANKRD27在基因表达研究中的稳定性使其成为理想的内参基因。此外,ANKRD27的表达异常与多种疾病的发生和发展相关,包括癌症、传染病和遗传性疾病。这些研究结果表明ANKRD27在疾病发生和免疫应答中发挥着重要作用,可能为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Liu, Wei, Yu, Jie, Wang, Yi-Fan, Shan, Qian-Qian, Wang, Ya-Xian. . Selection of suitable internal controls for gene expression normalization in rats with spinal cord injury. In Neural regeneration research, 17, 1387-1392. doi:10.4103/1673-5374.327350. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34782586/
2. Shen, Ningzhe, Fan, Congcong, Ying, Haosun, Zheng, Jianjian, Li, Yifei. 2025. Exploration of ANKRD27 as an immune-related prognostic factor in pan-cancer and hepatocellular carcinoma. In Frontiers in oncology, 14, 1511240. doi:10.3389/fonc.2024.1511240. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39834932/
3. Mohammed, Mohanad, Mboya, Innocent B, Mwambi, Henry, Elbashir, Murtada K, Omolo, Bernard. 2021. Predictors of colorectal cancer survival using cox regression and random survival forests models based on gene expression data. In PloS one, 16, e0261625. doi:10.1371/journal.pone.0261625. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34965262/
4. Zhu, Xiaobo, Zou, Yixin, Jia, Linna, Yang, Sheng, Huang, Peng. 2023. Using multi-tissue transcriptome-wide association study to identify candidate susceptibility genes for respiratory infectious diseases. In Frontiers in genetics, 14, 1164274. doi:10.3389/fgene.2023.1164274. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37020999/
5. Sleiman, Patrick M A, March, Michael, Hakonarson, Hakon. 2015. The genetic basis of eosinophilic esophagitis. In Best practice & research. Clinical gastroenterology, 29, 701-707. doi:10.1016/j.bpg.2015.09.003. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26552769/
6. Tahir, Muhammad S, Porto-Neto, Laercio R, Gondro, Cedric, Kour, Jagish, Fortes, Marina R S. 2021. Meta-Analysis of Heifer Traits Identified Reproductive Pathways in Bos indicus Cattle. In Genes, 12, . doi:10.3390/genes12050768. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34069992/
7. Gambarotta, Giovanna, Ronchi, Giulia, Friard, Olivier, Perroteau, Isabelle, Geuna, Stefano. 2014. Identification and validation of suitable housekeeping genes for normalizing quantitative real-time PCR assays in injured peripheral nerves. In PloS one, 9, e105601. doi:10.1371/journal.pone.0105601. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25144298/
8. Wang, Yaxian, Shan, Qianqian, Meng, Yali, Pan, Jiacheng, Yi, Sheng. 2017. Mrpl10 and Tbp Are Suitable Reference Genes for Peripheral Nerve Crush Injury. In International journal of molecular sciences, 18, . doi:10.3390/ijms18020263. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28134789/