Arhgap20-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Arhgap20-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-08636

品系全称

C57BL/6JCya-Arhgap20em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-244867-Arhgap20-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Arhgap20-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-08636) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
Rho GTPase activating protein 20
基因别称
6530403F17Rik,A530023E23Rik,RARhoGAP,mKIAA1391
染色体号
Chr 9 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_175535.4 | Ensembl: ENSMUST00000065496
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 6
敲除长度
~585 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Arhgap20,全称为Rho GTPase activating protein 20,是一种编码Rho GTPase激活蛋白的基因,位于人类染色体11q22.3-q23.1区域。Rho GTPases是一类重要的信号转导蛋白,在细胞骨架重组、细胞迁移、细胞分裂、细胞粘附和细胞凋亡等过程中发挥关键作用。Arhgap20编码的蛋白质通过调节Rho GTPases的活性,进而影响上述细胞过程。

Arhgap20的表达和功能在多种癌症中具有重要意义。研究表明,Arhgap20在肝细胞癌(HCC)中的表达水平与肿瘤的侵袭和转移能力呈负相关。Liu等人发现,与正常对照组相比,Arhgap20在临床HCC肿瘤中的表达水平显著下调[1]。此外,Arhgap20的表达抑制了HCC的迁移和侵袭,这与PI3K-AKT信号通路的抑制有关。PI3K-AKT信号通路在肿瘤的发生和发展中起着重要作用,而Arhgap20的上调可以抑制该通路的活性,从而抑制HCC的进展。

除了在HCC中的作用,Arhgap20在慢性淋巴细胞白血病(CLL)中也表现出重要的生物学功能。Herold等人发现,在CLL患者中,与没有明显遗传病变或12号染色体三倍体的病例相比,11q22-23缺失的病例中Arhgap20的表达水平显著升高[2]。这一发现表明,Arhgap20的表达水平可能与CLL的预后相关。

此外,Arhgap20的基因突变和表达异常与B细胞慢性淋巴细胞白血病(B-CLL)的发生发展密切相关。Kalla等人报道,B-CLL患者中的染色体区域11q22-q23的缺失与较差的生存率相关。研究发现,t(X;11)(q13;q23)染色体易位可以破坏ARHGAP20基因,导致其表达异常[3]。这种基因表达异常可能通过影响Rho GTPases的活性,进而影响细胞的生长、分化和凋亡,从而导致B-CLL的发生。

Arhgap20还与其他癌症的发生发展相关。例如,Li等人发现,在结直肠癌中,Arhgap20的表达水平与肿瘤微环境(TME)和预后相关[4]。低免疫评分的结直肠癌患者预后较差,而Arhgap20的表达水平与低免疫评分呈正相关。这表明Arhgap20可能在结直肠癌的免疫微环境中发挥重要作用,并影响肿瘤的进展和预后。

Arhgap20还与绵羊的繁殖性能相关。Esmaeili-Fard等人发现,ARHGAP20基因与绵羊的繁殖性能相关,包括出生时的后代体重、出生时窝平均体重、出生时窝总重量、断奶时的后代体重、断奶时窝平均体重和断奶时窝总重量[5]。这表明Arhgap20可能通过影响胎盘的发育、母体的免疫反应和哺乳期的营养供应等方面,进而影响绵羊的繁殖性能。

综上所述,Arhgap20在多种癌症和绵羊的繁殖性能中发挥着重要作用。Arhgap20通过调节Rho GTPases的活性,影响细胞的生长、分化和凋亡,进而影响肿瘤的发生和发展。此外,Arhgap20还与肿瘤微环境和免疫反应相关,可能通过影响免疫细胞的功能和肿瘤微环境的组成,进而影响肿瘤的进展和预后。深入研究Arhgap20的生物学功能和作用机制,有助于揭示肿瘤发生发展的分子机制,为肿瘤的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Liu, Gao, Li, Jia, Zhang, Cai-Yun, Huang, Dong-Yang, Xu, Ji-Wei. 2021. ARHGAP20 Expression Inhibited HCC Progression by Regulating the PI3K-AKT Signaling Pathway. In Journal of hepatocellular carcinoma, 8, 271-284. doi:10.2147/JHC.S298554. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33907697/
2. Herold, Tobias, Jurinovic, Vindi, Mulaw, Medhanie, Buske, Christian, Bohlander, Stefan K. 2011. Expression analysis of genes located in the minimally deleted regions of 13q14 and 11q22-23 in chronic lymphocytic leukemia-unexpected expression pattern of the RHO GTPase activator ARHGAP20. In Genes, chromosomes & cancer, 50, 546-58. doi:10.1002/gcc.20879. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21500311/
3. Kalla, Claudia, Nentwich, Hagen, Schlotter, Magdalena, Stilgenbauer, Stephan, Lichter, Peter. . Translocation t(X;11)(q13;q23) in B-cell chronic lymphocytic leukemia disrupts two novel genes. In Genes, chromosomes & cancer, 42, 128-43. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15543602/
4. Li, Chao, Liu, Tao, Liu, Yi, Zhang, Jiantao, Zuo, Didi. 2021. Prognostic value of tumour microenvironment-related genes by TCGA database in rectal cancer. In Journal of cellular and molecular medicine, 25, 5811-5822. doi:10.1111/jcmm.16547. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33949771/
5. Esmaeili-Fard, Seyed Mehdi, Gholizadeh, Mohsen, Hafezian, Seyed Hasan, Abdollahi-Arpanahi, Rostam. 2021. Genes and Pathways Affecting Sheep Productivity Traits: Genetic Parameters, Genome-Wide Association Mapping, and Pathway Enrichment Analysis. In Frontiers in genetics, 12, 710613. doi:10.3389/fgene.2021.710613. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34394196/