Kdm4d-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Kdm4d-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-08623

品系全称

C57BL/6JCya-Kdm4dem1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-244694-Kdm4d-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Kdm4d-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-08623) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
lysine (K)-specific demethylase 4D
基因别称
4932416A15,Jmjd2d
染色体号
Chr 9 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_173433 | Ensembl: ENSMUST00000058796
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 2
敲除长度
~3.1 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:3606484Mice homozygous for a knock-out allele exhibit accumulation of histone 3 methylation in spermatids, a transient increase in testes size, wider tubules, occasional male germ cell apoptosis, and decreased body weight. However, fertility is normal.
Kdm4d是一种重要的组蛋白去甲基化酶,属于JMJD家族。它能够催化组蛋白H3K9me3的去甲基化,从而影响基因表达和细胞功能。Kdm4d在多种生物学过程中发挥作用,包括细胞分化、发育、代谢和疾病发生。

在心脏缺血再灌注损伤(IRI)的研究中,Kdm4d被发现可以抑制心脏功能障碍和病理重塑。在一项研究中,研究人员通过成像质谱细胞术分析小鼠左心室在IRI后细胞表型和群落的空间分布和动态变化。他们发现,H3K9me3在IRI中期内皮细胞中显著增加,通过沉默其甲基转移酶Suv39h1或过表达其去甲基化酶Kdm4d,可以减轻IRI引起的心脏功能障碍和病理重塑。在体外,H3K9me3结合在缺氧条件下显著增加,抑制了内皮细胞的功能,而抑制H3K9me3可以挽救这种功能[1]。

在肝癌的研究中,Kdm4d被发现可以增强CD8+ T细胞介导的抗肿瘤免疫,并提高抗PD-1疗法的疗效。在一项研究中,研究人员发现MMP9在CTNNB1突变肝癌中显著上调,抑制CD8+ T细胞的浸润和细胞毒性。机制上,CTNNB1突变下调Sirtuin 2(SIRT2),导致β-catenin/KDM4D复合物形成,从而促进MMP9的转录激活。MMP9的分泌介导了CD8+ T细胞中slingshot蛋白磷酸酶1(SSH1)的脱落,导致C-X-C趋化因子受体3(CXCR3)介导的G蛋白偶联受体信号传导的抑制。此外,MMP9的阻断重塑了肿瘤免疫微环境,并增强了抗PD-1疗法在肝癌中的敏感性[2]。

在牙髓再生的研究中,Kdm4d被发现可以增强牙髓干细胞(SCAPs)的成骨/牙本质发生分化和迁移。在一项研究中,研究人员发现Kdm4d可以增强SCAPs的成骨/牙本质发生分化和迁移,并促进其趋化性。Kdm4d的敲低导致CNR1启动子区域H3K9me2和H3K9me3水平升高。Kdm4d与RPS5结合,RPS5也促进了SCAPs的成骨/牙本质发生分化和迁移。这些结果表明,Kdm4d可以通过与RPS5结合来增强SCAPs的成骨/牙本质发生分化和迁移,为基于SCAPs的牙组织再生提供了一种治疗线索[3]。

在生殖系统的研究中,Kdm4d被发现与精子的运动能力和生育能力有关。在一项研究中,研究人员发现Kdm4d突变小鼠的精子运动能力受损,导致亚生育能力。Kdm4d的缺失与圆精子中H3K9me3的分布改变有关,表明Kdm4d介导的H3K9me3水平的调节对于产生运动精子是必需的。这些结果表明,KDM4D表达或其活性的改变可能是人类不孕症的风险因素[4]。

在炎症的研究中,Kdm4d被发现可以通过抑制OPTN介导的自噬降解来表观遗传地调节炎症。在一项研究中,研究人员发现TRIM14-USP14-BRCC3复合物可以抑制OPTN介导的KDM4D的自噬降解,从而促进炎症反应。TRIM14缺乏的树突状细胞显著降低了KDM4D介导的促炎细胞因子白细胞介素12(Il12)和Il23的表达,并保护小鼠免受自身免疫性炎症的影响[5]。

在胃肠道间质瘤(GIST)的研究中,Kdm4d被发现可以促进肿瘤的进展。在一项研究中,研究人员发现KDM4D在GIST组织中显著上调,并通过直接与HIF1β基因启动子相互作用,促进肿瘤血管生成和GIST进展。KDM4D通过H3K9me3和H3K36me3的去甲基化在启动子区域转录激活HIF1β表达。这些结果表明,KDM4D/HIF1β/VEGFA信号通路在GIST进展中起着重要作用,并可能成为GIST患者的潜在治疗靶点[6]。

在猪的睾丸形态研究中,Kdm4d被发现与睾丸形态特征有关。在一项研究中,研究人员发现KDM4D基因中的一个新的错义突变(g.1078A>G)与大型白猪和兰德瑞斯猪的睾丸长周长(TLC)、睾丸短径(TSG)和睾丸重量(TW)显著相关。AA/AG基因型对睾丸形态特征有积极影响。这表明,这个新的错义突变可以作为提高猪睾丸形态特征的分子标记[7]。

在肾癌的研究中,Kdm4d被发现可以促进肿瘤的进展和血管生成。在一项研究中,研究人员发现KDM4D在肾透明细胞癌(ccRCC)中高表达,与Fuhrman分级晚期和总体生存率较低相关。KDM4D可以通过与血管生成相关的基因相互作用来促进ccRCC的发展。KDM4D直接与JAG1启动子相互作用,通过上调VEGFR-3和拮抗Notch信号通路来促进肿瘤血管生成。这些结果表明,KDM4D可能是ccRCC患者的潜在预后标志物和治疗靶点[8]。

在心脏再生的研究中,Kdm4d被发现可以与Hippo-Yap1通路协同促进心肌细胞(CM)细胞周期的重新进入。在一项研究中,研究人员发现激活Yap1可以优先增加S期CM,而KDM4D优先增加G2/M标志物。KDM4D和miR-199进一步增加了NRVM的总细胞数。Hippo信号通路的抑制导致S期的重新激活,当与KDM4D过表达相结合时,还可以观察到细胞周期的进一步重新进入。KDM4D优先诱导细胞周期调节基因的表达,而miR-199和si-Sav1优先上调G1/S期相关的基因。KDM4D/Myc显著增加了CM细胞周期,但对心脏功能没有影响。KDM4D对CM细胞周期活性的影响与Hippo-Yap1通路相加,并似乎优先调节不同的细胞周期调节因子。这为治疗心脏病的心脏再生策略提供了重要意义[9]。

综上所述,Kdm4d是一种重要的组蛋白去甲基化酶,在多种生物学过程中发挥作用,包括心脏缺血再灌注损伤、肝癌、牙髓再生、生殖系统、炎症、胃肠道间质瘤、肾癌和心脏再生。Kdm4d的研究有助于深入理解组蛋白去甲基化酶的生物学功能和疾病发生机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Yao, Luyan, He, Funan, Zhao, Quanyi, Zhou, Bingying, Wang, Li. 2023. Spatial Multiplexed Protein Profiling of Cardiac Ischemia-Reperfusion Injury. In Circulation research, 133, 86-103. doi:10.1161/CIRCRESAHA.123.322620. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37249015/
2. Cai, Ning, Cheng, Kun, Ma, Yue, Chen, Jinhong, Zhang, Wanguang. 2024. Targeting MMP9 in CTNNB1 mutant hepatocellular carcinoma restores CD8+ T cell-mediated antitumour immunity and improves anti-PD-1 efficacy. In Gut, 73, 985-999. doi:10.1136/gutjnl-2023-331342. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38123979/
3. Liang, Hanbing, Li, Qian, Wang, Ning, Jin, Luyuan, Zhang, Chen. 2023. KDM4D enhances osteo/dentinogenic differentiation and migration of SCAPs via binding to RPS5. In Oral diseases, 29, 2827-2836. doi:10.1111/odi.14479. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36579641/
4. Xu, Zhuoran, Fujimoto, Yuka, Sakamoto, Mizuki, Ikawa, Masahito, Ishiuchi, Takashi. 2024. Kdm4d mutant mice show impaired sperm motility and subfertility. In The Journal of reproduction and development, 70, 320-326. doi:10.1262/jrd.2024-039. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39034148/
5. Liu, Di, Jin, Shouheng, Cui, Jun. 2022. The TRIM14-USP14-BRCC3 complex epigenetically regulates inflammation through inhibiting OPTN-mediated autophagic degradation of KDM4D. In Autophagy, 18, 2001-2002. doi:10.1080/15548627.2022.2055286. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35311471/
6. Hu, Fuqing, Li, Haijie, Liu, Lu, Hu, Junbo, Yang, Xi. 2018. Histone demethylase KDM4D promotes gastrointestinal stromal tumor progression through HIF1β/VEGFA signalling. In Molecular cancer, 17, 107. doi:10.1186/s12943-018-0861-6. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30060750/
7. Liu, Di, Zhao, Zhiyao, She, Yuanchu, Ma, Ling, Cui, Jun. . TRIM14 inhibits OPTN-mediated autophagic degradation of KDM4D to epigenetically regulate inflammation. In Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 119, . doi:10.1073/pnas.2113454119. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35145029/
8. Zhou, Tong, Wei, Hancheng, Li, Dairui, Lv, Xiaoyan, Pan, Chuanying. 2019. A novel missense mutation within the domain of lysine demethylase 4D (KDM4D) gene is strongly associated with testis morphology traits in pigs. In Animal biotechnology, 31, 52-58. doi:10.1080/10495398.2018.1531880. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30614375/
9. Yan, Hao, Zhu, Liangsong, Zhang, Jin, Lin, Zongming. 2021. Histone demethylase KDM4D inhibition suppresses renal cancer progression and angiogenesis through JAG1 signaling. In Cell death discovery, 7, 284. doi:10.1038/s41420-021-00682-y. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34667158/