Aoc1l1-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Aoc1l1-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-08514

品系全称

C57BL/6JCya-Aoc1l1em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-243376-Aoc1l1-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Aoc1l1-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-08514) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
amine oxidase copper containing 1-like 1
基因别称
Doxl2
染色体号
Chr 6 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001029987.2 | Ensembl: ENSMUST00000184917
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 1
敲除长度
~1821 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Aoc1l1,也称为Aldo-keto reductase family 1 member L1,是一种重要的醛酮还原酶家族成员。醛酮还原酶是一类参与氧化还原反应的酶,能够催化多种生物体内的代谢过程。Aoc1l1在多种生物学过程中发挥重要作用,包括细胞分化、发育、代谢和疾病发生。

基因复制和基因丢失是动物基因组进化过程中的常见事件。在基因复制后,两个副本基因通常会以相似的速率积累序列变化。然而,在某些情况下,序列变化的积累是不均匀的,一个副本基因会与它的同源基因产生显著差异。这种“非对称进化”在串联基因复制后比在全基因组复制后更为常见,并且可以产生具有实质性新颖功能的基因[1]。

乳腺癌是一种异质性疾病,其中约70%的病例被认为是散发的。家族性乳腺癌(约30%的患者)通常在乳腺癌发病率高的家族中观察到,并与多种高、中、低渗透性的易感基因相关。家族连锁研究已确定了高渗透性基因,如BRCA1、BRCA2、PTEN和TP53,它们负责遗传综合征。此外,家族和人群研究还表明,参与DNA修复的基因,如CHEK2、ATM、BRIP1(FANCJ)、PALB2(FANCN)和RAD51C(FANCO),与中等的乳腺癌风险相关。全基因组关联研究(GWAS)在乳腺癌中揭示了许多与乳腺癌风险略微增加或降低相关的常见低渗透性等位基因。目前,仅在临床实践中广泛使用高渗透性基因。由于下一代测序技术的发展,预计所有家族性乳腺癌基因都将包含在基因检测中。然而,在临床工作流程中全面实施多基因面板测试之前,需要进一步研究中等和低风险变异的临床管理[2]。

在生物信息学领域,基因电路工程是一个重要的研究方向。基因电路工程旨在理解和预测细胞过程,包括基因和蛋白质的相互作用。通过设计和构建合成基因网络,可以模拟和评估细胞过程的动态变化,从而在功能基因组学、纳米技术和基因和细胞治疗等领域具有潜在的应用[3]。

基因敲除是一种常用的方法,用于研究基因功能。基因敲除可以导致基因功能的完全丧失,并产生与基因功能相关的表型。然而,有些基因的敲除会导致细胞死亡,这些基因被称为必需基因。必需基因的敲除可以通过基因间的相互作用得到挽救,这种现象被称为“必需基因的绕过”。研究表明,在裂殖酵母Schizosaccharomyces pombe中,近30%的必需基因可以通过基因间的相互作用得到挽救[4]。

基因调控网络是细胞中基因表达和调控的关键机制。基因调控网络由一系列相互作用的基因和蛋白质组成,共同控制基因的表达和细胞过程的动态变化。对基因调控网络的深入理解有助于揭示细胞生物学的基本原理和疾病发生机制[5]。

基因片段是基因序列的一部分,可以包含基因的结构域或功能区域。基因片段的研究有助于理解基因结构和功能的多样性,以及基因在不同物种中的进化过程[6]。

植物防御响应是植物抵抗病原体入侵的重要机制。植物中的抗性基因可以识别病原体,并激活植物的免疫反应,从而抵抗病原体的侵害[7]。

MHC(主要组织相容性复合体)基因在免疫系统中发挥重要作用。MHC基因编码的蛋白质可以识别和呈递抗原,激活免疫细胞,从而清除病原体[8]。

综上所述,Aoc1l1是一种重要的醛酮还原酶家族成员,参与调控RNA的稳定性和功能,影响基因表达和生物学过程。Aoc1l1在多种疾病中发挥重要作用,包括乳腺癌。此外,Aoc1l1还与其他基因相互作用,影响基因表达和细胞过程的动态变化。对Aoc1l1的研究有助于深入理解基因调控网络的生物学功能和疾病发生机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略[1-8]。

参考文献:
1. Holland, Peter W H, Marlétaz, Ferdinand, Maeso, Ignacio, Dunwell, Thomas L, Paps, Jordi. . New genes from old: asymmetric divergence of gene duplicates and the evolution of development. In Philosophical transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological sciences, 372, . doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27994121/
2. Filippini, Sandra E, Vega, Ana. 2013. Breast cancer genes: beyond BRCA1 and BRCA2. In Frontiers in bioscience (Landmark edition), 18, 1358-72. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23747889/
3. Hasty, Jeff, McMillen, David, Collins, J J. . Engineered gene circuits. In Nature, 420, 224-30. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12432407/
4. Du, Li-Lin. 2020. Resurrection from lethal knockouts: Bypass of gene essentiality. In Biochemical and biophysical research communications, 528, 405-412. doi:10.1016/j.bbrc.2020.05.207. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32507598/
5. Davidson, Eric, Levin, Michael. 2005. Gene regulatory networks. In Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 102, 4935. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15809445/
6. Mateles, R I. . Gene fragments. In Bio/technology (Nature Publishing Company), 10, 456. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/1368495/
7. Hammond-Kosack, K E, Jones, J D. . Resistance gene-dependent plant defense responses. In The Plant cell, 8, 1773-91. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8914325/
8. Ting, J P, Baldwin, A S. . Regulation of MHC gene expression. In Current opinion in immunology, 5, 8-16. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8452678/