Ifnlr1-flox 基因敲除小鼠

下单100%中奖,最高可得千元京东卡
复苏/繁育服务
产品名称

Ifnlr1-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-08469

品系全称

C57BL/6JCya-Ifnlr1em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-242700-Ifnlr1-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Ifnlr1-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-08469) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型
JAK-STAT信号通路

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
interferon lambda receptor 1
基因别称
CRF2-12,Il28ra
染色体号
Chr 4 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_174851 | Ensembl: ENSMUST00000074408
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 3
敲除长度
~0.9 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:2429859Homozygous null mice are viable and normal with respect to viral infection, however antiviral response evoked by TLRs are significantly reduced.

发表文献

The Journal of Experimental Medicine
2026-07-05
Interferon-λ drives renal fibrosis by coordinating epithelial–fibroblast crosstalk
1
Ifnlr1基因,即干扰素λ受体1(Interferon lambda receptor 1),编码一种Ⅱ型细胞因子受体,与白细胞介素IL-28A、IL-29B和IL-29结合,统称为Ⅲ型干扰素(IFN-λs)。IFN-λs通过JAK-STAT信号通路发挥抗病毒效应,参与感染预防和治疗。研究表明,Ifnlr1在多种病毒感染中发挥重要作用,如猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)、流感病毒和乙型肝炎病毒(HBV)等。

研究表明,Ifnlr1在猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)感染中具有重要作用。猪Ifnlr1基因在Dapulian猪的肝脏、大肠、小肠、肾脏和肺组织中表达显著高于Landrace猪。Ifnlr1过表达抑制了PRRSV在猪肺泡巨噬细胞(PAMs)中的复制,上调了抗病毒基因和IFN刺激基因的表达。此外,Ifnlr1过表达抑制了PAMs的增殖,上调了p-STAT1的表达。相比之下,Ifnlr1表达下调促进了PAMs的增殖。在Ifnlr1过表达细胞中,G0/G1期比例增加,而在Ifnlr1表达下调细胞中观察到相反的变化。抑制JAK/STAT信号通路后,Ifnlr1过表达细胞中G2/M期比例显著增加。这些结果表明,Ifnlr1过表达通过激活JAK/STAT通路抑制了PRRSV感染PAMs的增殖,表明Ifnlr1基因在PRRSV感染PAMs中具有重要的调控作用,具有开发新型PRRSV治疗策略的潜在价值[1]。

此外,Ifnlr1基因多态性与乳腺癌(BC)的发生风险和临床病理特征相关。研究发现,Ifnlr1基因的AA基因型和A等位基因与乳腺癌发生风险降低相关。年龄、吸烟习惯和体重指数(BMI)增加乳腺癌发生的风险。此外,Ifnlr1基因的AA基因型与孕酮受体因子相关[2]。

Ifnlr1基因在自身免疫性疾病中也发挥重要作用。研究发现,Ifnlr1缺陷小鼠在TLR7诱导的狼疮模型中表现出免疫细胞激活和器官损伤显著降低,而自身抗体产生未受影响。单细胞RNA测序显示,只有小鼠中性粒细胞和人B细胞直接对IFN-λs有反应。IFN-λs激活角质形成细胞和系膜细胞产生趋化因子,诱导免疫细胞募集和促进组织炎症。这些数据揭示了SLE的免疫生物学,并确定了Ⅲ型IFNs作为该疾病组织特异性病理学的重要因素[3]。

Ifnlr1基因多态性与HCV感染和慢性HCV患者的生化特征相关。研究发现,rs7532146位点的CT和TT基因型在HCV患者中的频率高于对照组,而AA基因型与HCV感染风险增加相关。此外,rs4489498位点的TT基因型与HCV患者的ALT水平降低相关,而CC基因型与HCV病毒载量增加相关[4]。

STAT3通过抑制过度的干扰素信号来调节抗病毒免疫。研究发现,STAT3 Y705位点磷酸化在感染早期对几种病毒(包括流感病毒)具有独立于IL-6的激活,依赖于RIG-I/MAVS/Syk轴,对抗病毒免疫至关重要。STAT3 Y705F/+基因敲入小鼠表现出对流感病毒感染的抗病毒反应显著抑制,表现为抗病毒基因表达受损、严重的肺组织损伤和生存率低。STAT3 Y705位点磷酸化通过抑制IFN的过度产生来抑制流感病毒的致病性。阻断磷酸化显著增强了Ⅰ型和Ⅲ型IFN的表达,增强了流感病毒在小鼠中的致病性。IFNAR1或IFNLR1基因敲除在STAT3 Y705F/+小鼠中保护动物免受肺损伤并降低病毒载量。这些结果表明,STAT3通过Y705位点磷酸化激活对抗病毒免疫的建立至关重要,通过抑制病毒感染引起的过度IFN信号[5]。

Ifnlr1基因表达与肿瘤免疫逃逸相关。研究发现,组蛋白H3K36甲基转移酶NSD1的失活导致DNA低甲基化和免疫浸润减少。NSD1缺失的肿瘤表现出免疫排斥和IFN反应降低,尽管逆转座子表达增加。机制上,NSD1丢失导致先天免疫基因(包括Ⅲ型干扰素受体IFNLR1)沉默,通过H3K36二甲基化(H3K36me2)的耗竭和H3K27三甲基化(H3K27me3)的增加。EZH2抑制恢复了免疫浸润并抑制了Nsd1突变肿瘤的生长。这项工作揭示了一种可药物作用的染色质交叉对话,调节病毒模拟反应并使DNA低甲基化肿瘤免受免疫逃逸[6]。

Ifnlr1基因的表达形式对干扰素λ信号传导具有影响。研究发现,IFNLR1转录变体在体内表达,并预测编码不同的蛋白质亚型,其功能尚未完全确定。IFNLR1亚型1具有最高的相对转录表达,编码全长功能性形式,支持经典的IFNL信号传导。IFNLR1亚型2和3具有较低的相对表达,并预测编码信号缺陷蛋白。研究发现,IFNLR1亚型1的最小过表达显着增加了IFNL3依赖的抗病毒和促炎基因的表达,而IFNLR1亚型1的高水平表达不能进一步增强这一表型。IFNLR1亚型2的低水平表达导致IFNL3处理后抗病毒基因的部分诱导,但在IFNLR1亚型2表达水平较高时,这一表型基本被消除。IFNLR1亚型3的表达在IFNL3处理后部分增强了抗病毒基因的表达。此外,IFNLR1亚型1的过表达显着降低了细胞对Ⅰ型IFN IFNA2的敏感性。这些结果表明,经典和非经典IFNLR1亚型对介导细胞对干扰素的反应具有独特的影响,并提供了对体内可能通路调节的见解[7]。

Ifnlr1基因的表达形式对IFNL信号传导和HBV复制具有影响。研究发现,IFNLR1转录变体在肝细胞中检测到,其功能尚不清楚:一种全长和信号传导能力的形式(亚型1),一种缺乏部分细胞内JAK1结合结构域的形式(亚型2),以及一种分泌形式(亚型3),后两种预测为信号缺陷。研究发现,IFNLR1亚型1的最低过表达显着增强了IFNL处理后ISG的表达,诱导了新的促炎基因表达,并增强了HBV复制的抑制,而没有对细胞活力产生不利影响。相比之下,IFNLR1亚型2或3的过表达部分增强了IFNL诱导的ISG表达,但没有支持促炎基因表达,并且对HBV复制的影响最小。IFNLR1亚型以不同的方式影响IFNL诱导的基因表达和HBV复制[8]。

Ifnlr1基因在听觉功能障碍中的免疫反应中发挥作用。研究发现,ifnlr1突变斑马鱼幼虫与对照组相比,有262个差异表达基因(DEGs)上调,而146个DEGs下调。六条通路被显著富集,包括类固醇生物合成途径、脂肪细胞因子信号通路、细胞因子-细胞因子受体相互作用通路、p53信号通路、AGE-RAGE信号通路在糖尿病并发症中,以及萜类骨架生物合成途径。其中,三条通路(类固醇生物合成途径、细胞因子-细胞因子受体相互作用通路和p53信号通路)与免疫相关。这些结果为进一步研究Ifnlr1相关听力丧失的发病机制奠定了基础[9]。

Ifnlr1基因在流感病毒的抗病毒反应中发挥关键作用。研究发现,人类肺巨噬细胞中观察到IFNLR1表达增加,并且对IFNλ配体有明显的干扰素刺激基因(ISG)表达增加。人类单核细胞表达最低的IFNLR1,而用巨噬细胞集落刺激因子(M-CSF)或粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子(GM-CSF)分化为巨噬细胞增加了IFNLR1 mRNA、IFNLR1蛋白表达和对IFNλ结合的细胞反应。相比之下,在小鼠中,用M-CSF或GM-CSF刺激的巨噬细胞在相关配体IFNL2或IFNL3刺激下无法产生ISGs,这表明巨噬细胞中的IFNLR1信号传导具有种属特异性。研究发现,IFNλ信号轴在人类肺巨噬细胞中活跃,并且IFNλ信号传导在抵抗流感感染中发挥关键作用[10]。

综上所述,Ifnlr1基因在多种病毒感染中发挥重要作用,包括猪繁殖与呼吸综合征病毒、流感病毒和乙型肝炎病毒。Ifnlr1基因的表达形式和基因多态性与多种疾病相关,包括乳腺癌和HCV感染。此外,Ifnlr1基因在自身免疫性疾病和听觉功能障碍中发挥重要作用。这些研究表明,Ifnlr1基因在免疫反应和疾病发生中具有重要作用,为开发新型治疗策略提供了新的思路和策略。

参考文献:
1. Qin, Ming, Chen, Wei, Li, Zhixin, Zhao, Jing, Zeng, Yongqing. . Role of IFNLR1 gene in PRRSV infection of PAM cells. In Journal of veterinary science, 22, e39. doi:10.4142/jvs.2021.22.e39. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34056880/
2. Hausmann, Leili Daiane, de Almeida, Bibiana Sgorla, de Souza, Ilíada Rainha, de Toledo E Silva, Guilherme, Muniz, Yara Costa Netto. 2021. Association of TNFRSF1A and IFNLR1 Gene Polymorphisms with the Risk of Developing Breast Cancer and Clinical Pathologic Features. In Biochemical genetics, 59, 1233-1246. doi:10.1007/s10528-021-10060-z. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33751344/
3. Goel, Rishi R, Wang, Xinghao, O'Neil, Liam J, Carmona-Rivera, Carmelo, Kaplan, Mariana J. 2020. Interferon lambda promotes immune dysregulation and tissue inflammation in TLR7-induced lupus. In Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 117, 5409-5419. doi:10.1073/pnas.1916897117. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32094169/
4. Zhang, A-Mei, Wang, Yiqian, Xia, Xueshan, Song, Yuzhu. 2019. Genetic Polymorphisms of the IFNLR1 Gene Correlate with HCV Infection and Biochemical Features of Chronic HCV Patients in Yunnan, China. In Immunological investigations, 49, 453-461. doi:10.1080/08820139.2019.1642914. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31366248/
5. Liu, Shasha, Liu, Siya, Yu, Ziding, Wang, Song, Chen, Ji-Long. 2023. STAT3 regulates antiviral immunity by suppressing excessive interferon signaling. In Cell reports, 42, 112806. doi:10.1016/j.celrep.2023.112806. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37440406/
6. Li, Yinglu, Goldberg, Elizabeth M, Chen, Xiao, Mendelsohn, Cathy Lee, Lu, Chao. 2022. Histone methylation antagonism drives tumor immune evasion in squamous cell carcinomas. In Molecular cell, 82, 3901-3918.e7. doi:10.1016/j.molcel.2022.09.007. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36206767/
7. Evans, John Grayson, Novotny, Laura A, Meissner, Eric G. 2023. Influence of Canonical and Non-Canonical IFNLR1 Isoform Expression on Interferon Lambda Signaling. In Viruses, 15, . doi:10.3390/v15030632. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36992341/
8. Novotny, Laura A, Evans, J Grayson, Guo, Haitao, Kappler, Christiana S, Meissner, Eric G. 2023. Interferon lambda receptor-1 isoforms differentially influence gene expression and HBV replication in stem cell-derived hepatocytes. In Antiviral research, 221, 105779. doi:10.1016/j.antiviral.2023.105779. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38070830/
9. Wang, Wei-Qian, Qiu, Shi-Wei, Huang, Sha-Sha, Gao, Xue, Dai, Pu. 2021. Transcriptome analysis of the early stage ifnlr1-mutant zebrafish indicates the immune response to auditory dysfunction. In Gene expression patterns : GEP, 43, 119229. doi:10.1016/j.gep.2021.119229. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34968768/
10. Mallampalli, Rama K, Adair, Jessica, Elhance, Ajit, Tsai, MuChun, Londino, James D. 2021. Interferon Lambda Signaling in Macrophages Is Necessary for the Antiviral Response to Influenza. In Frontiers in immunology, 12, 735576. doi:10.3389/fimmu.2021.735576. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34899695/

发表文献

点击查看发表文献 >>