Aldh8a1-flox 基因敲除小鼠

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产品名称

Aldh8a1-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-07917

品系全称

C57BL/6JCya-Aldh8a1em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-237320-Aldh8a1-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Aldh8a1-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-07917) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
aldehyde dehydrogenase 8 family, member A1
基因别称
Raldh4
染色体号
Chr 10 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_178713 | Ensembl: ENSMUST00000042699
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 2~3
敲除长度
~2.1 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Aldh8a1,也称为醛脱氢酶8A1,是一种重要的醛脱氢酶。醛脱氢酶是一类酶,负责将醛类化合物转化为相应的酸,参与多种生物化学反应。Aldh8a1在多种生理和病理过程中发挥作用,包括乙醇代谢、细胞分化、发育和疾病发生。

在乙醇代谢中,Aldh8a1参与将乙醛转化为乙酸的过程。乙醛是乙醇代谢的中间产物,具有细胞毒性,可能导致氧化应激和细胞损伤。Aldh8a1的表达和活性与个体对酒精的代谢能力和对酒精性肝病的易感性相关。研究发现,Aldh8a1的表达受到microRNA hsa-miR-1301-3p的调控。hsa-miR-1301-3p可以抑制Aldh8a1的表达,从而影响乙醇代谢过程[2]。

Aldh8a1在细胞分化和发育中也发挥重要作用。研究发现,Aldh8a1在肾脏发育过程中表达,并参与调节维生素A代谢途径。维生素A代谢途径在肾脏发育和功能维持中发挥重要作用。Aldh8a1的表达模式在肾脏发育过程中发生变化,与不同的细胞类型和器官阶段相关[7]。

Aldh8a1在多种疾病中也发挥重要作用。研究发现,Aldh8a1在肝细胞癌(HCC)中表达下调,并且与预后不良相关。Aldh8a1的表达下调与肿瘤抑制和免疫抑制相关。Aldh8a1通过抑制调节性T细胞(Tregs)的分化来抑制HCC的发生和发展。此外,Aldh8a1的表达也与Hodgkin淋巴瘤(HL)的易感性相关。Aldh8a1的表达下调与HL的易感性增加相关,可能通过影响细胞凋亡和免疫反应来发挥作用[1,3]。

Aldh8a1在肝脏疾病中也发挥重要作用。研究发现,Aldh8a1在非酒精性脂肪性肝病(NASH)和肝硬化中表达下调。Aldh8a1的表达下调与肝脏疾病的进展和严重程度相关。Aldh8a1的表达下调可能与肝脏疾病的病理生理过程相关,包括炎症、免疫反应和细胞损伤[4]。

Aldh8a1在鱼类的抗氧化机制中也发挥重要作用。研究发现,Aldh8a1在鱼类肝脏中表达,并参与调节抗氧化酶的表达和活性。Aldh8a1的表达受到膳食成分的调节,如植物提取物。Aldh8a1的表达上调可能与抗氧化酶的表达增加相关,从而增强鱼类的抗氧化能力[5]。

Aldh8a1在鸡的肝毒性中也发挥重要作用。研究发现,Aldh8a1在鸡胚胎原代肝细胞中表达,并且与黄曲霉毒素B1(AFB1)诱导的肝毒性相关。Aldh8a1的表达上调与AFB1诱导的肝毒性相关,可能通过影响细胞凋亡和免疫反应来发挥作用[6]。

综上所述,Aldh8a1是一种重要的醛脱氢酶,参与乙醇代谢、细胞分化、发育和疾病发生。Aldh8a1在多种疾病中发挥重要作用,包括肝细胞癌、Hodgkin淋巴瘤、肝脏疾病和鸡的肝毒性。Aldh8a1的研究有助于深入理解醛脱氢酶的生物学功能和疾病发生机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Liu, Zhi-Yong, Lin, Xia-Hui, Guo, Hong-Ying, Dong, Ling, Zhu, Ji-Min. 2024. Multi-Omics profiling identifies aldehyde dehydrogenase 2 as a critical mediator in the crosstalk between Treg-mediated immunosuppression microenvironment and hepatocellular carcinoma. In International journal of biological sciences, 20, 2763-2778. doi:10.7150/ijbs.93075. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38725845/
2. Wang, Xubing, Zhao, Yanjie, Luo, Jiao, Zheng, Yuxin, Yu, Dianke. 2020. MicroRNA hsa-miR-1301-3p Regulates Human ADH6, ALDH5A1 and ALDH8A1 in the Ethanol-Acetaldehyde-Acetate Metabolic Pathway. In Molecular pharmacology, 98, 120-129. doi:10.1124/mol.120.119693. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32499331/
3. An, Yeeun, Lee, Chaeyoung. 2023. Identification and Interpretation of eQTL and eGenes for Hodgkin Lymphoma Susceptibility. In Genes, 14, . doi:10.3390/genes14061142. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37372322/
4. Grinberg, Marianna, Stöber, Regina M, Edlund, Karolina, Rahnenführer, Jörg, Hengstler, Jan G. 2014. Toxicogenomics directory of chemically exposed human hepatocytes. In Archives of toxicology, 88, 2261-87. doi:10.1007/s00204-014-1400-x. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25399406/
5. Song, Changyou, Liu, Bo, Xie, Jun, Xu, Pao, Lin, Yan. 2017. Comparative proteomic analysis of liver antioxidant mechanisms in Megalobrama amblycephala stimulated with dietary emodin. In Scientific reports, 7, 40356. doi:10.1038/srep40356. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28084435/
6. Yang, Bing, Li, Xiaofeng. 2023. Unveiling the hub genes associated with aflatoxin B1-induced hepatotoxicity in chicken. In Environmental research, 239, 117294. doi:10.1016/j.envres.2023.117294. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37832762/
7. Marlier, Arnaud, Gilbert, Thierry. . Expression of retinoic acid-synthesizing and -metabolizing enzymes during nephrogenesis in the rat. In Gene expression patterns : GEP, 5, 179-85. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15567713/